В чем преимущество Luo Han Fruit Extract Mogroside?

Сирайтиягросвенория(Swingle) C. Jeffrey is a traditional Chinese medicinal herb with great potential as a natural product resource. Mogroside is the main active ingredient in Siraitia grosvenorii, and has a wide range of biological properties. Могросайд Vis a component of Siraitia grosvenorii fruit with a high content and sweetness. Its content is about 1%, and its sweetness is 350 times that of sucrose. It is the main sweetening ingredient [1]. Luo Han Guo sweet glycoside belongs to the cucurbitane glycosides type of compound, which is safe, has a good taste, no peculiar smell; high sweetness; good thermal stability; light color; easy to use; unaffected by pH (pH between 2 and 10) when used. The FDA (US Food and Drug Administration) approved Mogroside for use in food in 1995, and China also approved it as a food additive at the 17th meeting of the National Food Additives Committee in July 1996. Currently, Mogroside is permitted as a food additive in Japan, South Korea, Taiwan, Hong Kong, Thailand, Singapore, the United Kingdom, and other countries and regions [2]. This paper reviews research on the extraction, isolation and purification, determination, and biological activity of Mogroside since 1993.

1 извлечение, изоляция и определение могросайда

1.1 извлечение и изоляция

Как эффективно извлекать активные ингредиенты является одним из ключевых методов в исследованиях и разработках традиционной китайской медицины и ее модернизации. Luo Han Guo sweet glycoside is the main active ingredient of Luo Han Guo. With the wide application of Mogroside in the fields of food and medicine, how to maximize the use of Luo Han Guo resources and improve the quality of Mogroside has attracted particular attention. Li Yanqun et al. [3] used domestically produced materials and a relatively simple method to extract and purify Luo Han Guo sweet glycoside. The yield of the sweetener using water as the solvent is higher than that of the ethanol aqueous solution, and the solvent volume is appropriate at 6 times the weight of the raw material. Ca (OH) 2 is a better clarifying agent than alum and AlCl 3, and it does not cause significant loss of the sweetener. Clarification should be carried out at room temperature. Strong base resins D290 and D280 have better decolorization effects than acidic resins. decolorization should be carried out at 25 ° C at a slow speed; AB-8 adsorption resin is suitable for the adsorption of Mogroside at room temperature of about 20 ° C at a flow rate of SV2; Mogroside can be desorbed from AB-8 adsorption resin by using 50% aqueous ethanol solution.

Li Jun et al. [4] использовали ортогональную испытательной конструкцией для систематического изучения процесса экстракции этанола из могросида сухого Лу хан го, оптимизации технологических параметров и обеспечения теоретической основы для крупномасштабного производства. Использовался оптимальный процесс: было использовано 30% этанола, что в 30 раз превышало вес сырья, и смесь была извлечена при 75-80 гранулах за 3 ч в состоянии микрокипения. Получение экстракта с содержанием mogroside 60%. Чжу сяоюнь и др. [5] использовали ортогональные эксперименты для изучения влияния микроволновой технологии на выход воды из моргобайда, и был выбран оптимальный процесс: Соотношение жидкости свежая подача Лу хан го составила 1:8, мощность микроволновой вытяжки составила 750 вт, время экстракции 15мин, эффективность микроволновой экстракции могросида значительно выше, чем при обычном методе кипения, выход могросида 7,346мг/г, на 21,87% выше, чем при обычном методе кипения, является экономичным, энергосберегающим, простым в эксплуатации новым методом экстракции.

Ma Shaomei et al. [6] used ultrasound extraction to explore a new process for the extraction of Mogroside with ethanol. The use of this new extraction technology of ultrasound-assisted extraction has improved the extraction rate of Mogroside and provides a reference basis and method for the industrial extraction of Mogroside. The optimal process is extracted three times. Li Junsheng et al. [7] believe that ultrasonic treatment can significantly improve the extraction rate of Mogroside, and that the effect of high-frequency ultrasound on Mogroside extraction is significantly better than that of low-frequency ultrasound. At the same frequency, the extraction rate of Mogroside increases with the increase of output power. It is also worth noting that the output power of ultrasonic Волны с частотой 50 КГЦ составляют всего 80 вт, но экстракционный эффект лучше, чем ультразвуковые волны с частотой 28 КГЦ и выходной мощностью 200 вт или 400 вт. Это показывает, что извлечение Mogroside связано с частотой ультразвуковых волн.

1.2 разделение и очистка

Для того, чтобы получить Mogroside с высокой чистотой, многие ученые изучают Mogroside процессов очистки с 1970 - х годов. Однако используемые методы разделения и очистки в основном предполагают использование неорганических адсорбентов и неорганических деколонизаторов, таких, как активированный уголь, оксид магния, силикат магния и т.д., которые являются сложными в эксплуатации и трудно поддаются промышленному производству. С развитием оборудования и технологий, многие исследователи оптимизировали процесс очистки Mogroside. Ли яньцюн и др. [8,9] первоначально изучали адсорбцию макропориловой смолы адсорбции AB-8 на могросиде, сравнивали скорость адсорбции при 15 и 65 градусах, получая прорывные значения адсорбции при трех скоростях воздушного потока (SV2, SV5, SV8); И предложение об использовании подвижной фазы, состоящей из смеси n- бутанола, ледяной уксусной кислоты и воды (4:1:1), и силикатного геля колонны в качестве стационарной фазы для отделения могросида, с очевидными результатами.

Liu Zhongdong [10] proposed a purification process for Mogroside V using a combination of macroporous adsorption resin and ion exchange resin. The treatment conditions for the eluent of the adsorbed Luohanguo fruit treated with the exchange resin were: pH 5.0, eluent concentration 1%, and the yield of Mogroside V was 0.7%. Yu Lijuan et al. [11] proposed a high-performance liquid chromatography method for the preparation of Mogroside V standard products, which has the advantages of being easy to operate, reproducible, and having a high product purity. Qi Xiangyang et al. [12] explored a new method for preparing high-purity Mogroside extract by improving and optimizing the process conditions for the separation and purification of Mogroside using macroporous adsorption resins based on the structure and characteristics of Mogroside, providing a new way for further large-scale preparation of high-purity Mogroside and in-depth research on the biological activity of Mogroside. The results showed that the content of several main components of mogroside was higher than that of mogroside water extract before separation, among which the content of mogroside V was 69.24%, an increase of 41.12%.

1.3 определение содержания

Для более точной оценки содержания и качества могрозидов многие ученые провели методологические исследования по количественным методам обнаружения могрозидов. В настоящее время для определения могровых сторон используются главным образом колориметрические методы. Например, ли яньцюань и др. [9] использовали реагент ванилино-серной кислоты в качестве цветового разработчика для колориметрического количественного определения могрозидов. Гао шанлин [13] и ли хайбин [14] использовали колориметрический метод ванилин-перхлорной кислоты для определения содержания сапонинов в ло хан го и предложили оптимальные условия для использования ванилин-перхлорной кислоты в качестве цветоразработчика.

This method is simple to operate, highly sensitive and relatively accurate. However, the stability and specificity of the spectrophotometric method are not ideal. In order to establish a better detection method for Mogroside, Liang Chengqin et al. [15] established a method for determining the content of Mogroside V using thin-layer scanning. The sample was spotted on a silica gel G plate, and butanol-ethanol-water (8:2:3) was used as the developing agent. 10% sulfuric acid ethanol was used for color development, single wavelength reflection sawtooth scanning, λ = 500 nm. Mogroside V has a good linear relationship in the range of 2.0-16.0 μg, with an average recovery rate of 97.62% and an RSD of 2.59% (n = 4). Chen Weijun et al. [16] established the high performance liquid chromatography separation conditions for Mogroside and the HPLC quantitative analysis method for Mogroside V. This method can achieve primary separation of the main saponin components in Mogroside extracts, with good separation and a simple sample pretreatment process.

Li Dianpeng et al. [17] использовали колонку ZORBAX SB-C18 (4,6 мм × 150 mm, 5 μm), ацетонитрильную воду (25:75) в качестве подвижной фазы, скорость потока 1 мл/мин, температуру колонки 25 °C, детектор диодов и длину волны обнаружения 203 нм. Содержание логанина II е и логанина III в логане определялось внешним стандартным методом. Логанин II е находился в диапазоне 1.934-25.142 грава, а логанин III находился в диапазоне 2.070-26.910 грава, показывая линейную зависимость. Средний показатель восстановления составил 96,6% и 97,9%. Чжан юньчжу и др. [18] разработали быстрый и эффективный метод высокопроизводительной жидкостной хроматографии для одновременного определения основных сладких гликозидных компонентов в ло хан го, включая ло хан го сладкий гликозид V, 11- о-могрозид V, могрозид IV и симонин и. чжэн линг и др. [19] использовали высокопроизводительную жидкую хроматографию для определения подсластителя в мо хан го. Результаты показали, что подсластитель имеет хорошую линейную зависимость в диапазоне 0,1 -2 мг/л в растворе для отбора проб с коэффициентом восстановления 89,9% - 94,7% и пределом обнаружения 5 мг/кг. Относительное стандартное отклонение результатов измерений составило менее 5%. Метод прост в использовании, а результаты точны и надежны.

2 фармакологические эффекты могросайда

2.1 эффект ожидания

Mogroside (purity >98%) at 100 mg/kg and 200 mg/kg, given by gavage, significantly increased the excretion of phenol red in the trachea of mice, and the effect was dose-dependent. Luo Han Guo sweet saponin at a concentration of 20 mg/ml added to the frog esophagus for 0.5 h significantly enhanced the movement of ciliated cells [20]. Luohanguo saponin (purity 50%) at a dose of 8.0g/kg significantly increased the phenol red excretion of the trachea in mice and also significantly increased the amount of sputum excreted in rats (capillary tube method) [21]. Mogroside (total glycoside >80%) 0·2g/kg, 0·4g/kg, 0·8g/kg, gavage, 0·4g/kg, 0·8g/kg, significantly increased the amount of tracheal secretions in rats [22].

2.2 антиточивый эффект

Могросайд (чистота) > 98% 80 мг/кг, 160 мг/кг, 320 мг/кг, гаваж, оказывает антитушное воздействие на мышей, вызываемое распылением аммиака. Когда доза достигает 160 мг/кг и 320 мг/кг, она оказывает значительное антитушное действие и зависит от дозы [20]. Могрузид (чистота 50%) при дозах 4,0 г/кг и 8,0 г/кг значительно сократил количество кашлей, вызванных концентрированным аммиаком у мышей, а доза 8,0 г/кг значительно продлила опосредованное кашель, вызванное so2, у мышей [21]. Могрозид (общий гликозид > 80%) при дозах 0,2г/кг, 0,4г/кг и 0,8г/кг значительно сократил количество кашлей мышей, вызванных аммиаком, но не оказал существенного влияния на опосредованное кашель аммиаком [22].

2.3 деятельность свободных радикалов по сбору мусора и антиоксидантов [23]

Экстракт могросайда (общий гликосайд ≥98%,Mogroside V content 65.20%) has a certain scavenging effect on both hydroxyl radicals and superoxide anion radicals. With the increase in the concentration of Mogroside extract, the removal effect gradually increases, showing a certain dose-effect relationship; Mogroside extract has a significant inhibitory effect on the oxidative hemolysis of rat RBCs during in vitro incubation. Within the range of 0.041.15mg/ml, Mogroside extract has an inhibition rate of more than 50% on the oxidative hemolysis of red blood cells, Mogroside extract has a good protective effect on RBC autoxidation and hemolysis.

Защитное воздействие экстракта Mogroside на РБК аутоксирование и гемолиз не показывает зависимости "доза-эффект", а промежуточная доза в 0·46 мг/мл является оптимальной при скорости ингибирования 85·55%. Малодиалдегид (MDA) является конечным продуктом липидного пероксирования, может использоваться для оценки прочности липидного пероксирования. Экстракт могрозида оказывает сильное ингибиторное воздействие на образование мда при аутоксировании и гемолизе крысиных эритроцитов; Экстракт могрозида оказывает хорошее ингибиторное воздействие на спонтанное образование мда в гомогенах крысиной печени. Ингибиторный эффект лучше всего проявляется при концентрации 0,875 мг/мл, достигая 23,63%. Экстракт могросида может ингибировать перекисление липидов в тканях печени крыс и оказывает защитное воздействие на фе2 + и вызванные h2o2 повреждения тканей печени, а также может уменьшить возникновение гемолиза красных кровяных клеток. Экстракт могрозида может существенно ингибировать образование мда в митохондрии печени, а скорость ингибирования увеличивается с увеличением концентрации.

2.4 укрепление иммунной системы [24]

Могросайд вводился обычным и циклохоспидным мышам (CTX)- подавляемым гаважем. Он не оказал существенного влияния на иммунную функцию обычных мышей, но значительно улучшил макрофагическую фагоцитическую функцию и распространение клеток T у иммуноподавленных мышей CTX. Это говорит о Том, что Mogroside оказывает положительное регулирующее воздействие на клеточную иммунную функцию мышей, подавленных иммунитетом CTX.

2.5 воздействие на глюкозу крови

Mogroside (total glycosides >80%) 0.1g/kg, 0.2g/kg, 0.4g/kg doses have no effect on the elevated blood glucose levels of diabetic mice. The high dose (0.4g/kg) of Mogroside does not significantly increase the blood glucose levels of normal mice [22]. A single oral dose of 30% Mogroside 200 mg/kg had no significant effect on blood glucose levels or liver enzyme activity in healthy adults. Mogroside V is a safe sweetener that does not affect blood glucose levels in normal people [25].  Через гаваж вводилось 150 мг/кг и 300 мг/кг доз. Хотя уровень потребления воды и глюкозы в крови мышей не был нормализован, они были значительно ниже, чем у мышей с сахарным диабетом первого типа, вызванным 4- оксопиримидином [26].

2.6 эффект антиканцера [27]

Двухэтапный эксперимент по канцерогенезу кожи был проведен у мышей с использованием DMBA в качестве инициатора и TPA в качестве промоутера. Mogroside V (Mogroside V) оказывает такое же или более сильное антиканцерогенное воздействие, как и стевиозид, что указывает на то, что он оказывает антистимулирующее воздействие. Таким образом, mogroside V может быть использован в качестве антираковых средств.

2.7 токсичность

Испытание на острую токсичность было проведено на мышах с использованием 81,6% могросида, лд50 > 10000 мг/кг. Тест на мутагенность эймса был проведен с использованием тифимурия сальмонеллы с отрицательным результатом. Могрозид 3,0г/кг (что в 360 раз превышает дозу для человека) вводился перорально в течение 4 недель. Не оказали существенного воздействия на гематологические показатели, функции печени и почек, глюкозу крови и мочевой глюкозу, морфологические изменения в сердце, печени, почках, легких и селезенке собаки [26]. Мыши, получавшие 15 г/кг могрозидного раствора, в течение двух недель нормально функционировали и не умирали [22]. Лу хан го сладкий гликозид является в основном нетоксичным веществом и безопасно принимать.

In summary, the technology for extracting and purifying mogroside is gradually maturing, and it has a scientific guiding role in further developing the resources of Luo Han Guo and promoting the industrial production of high-quality mogroside. Mogroside is non-toxic and safe; it has a high sweetness; it has good thermal stability; it is a safe health sweetener that does not affect normal blood glucose levels; and it has broad market prospects as a new type of sweetener.

Ссылки на статьи

[1] Liu Zhongdong ∙ Study on the ∙ of mogroside V [J] Ion Exchange and Adsorption, 1999, 15 (4): 364-368.

[2] Li Jun, Luo Han Guo Sweet Saponin [J] ∙ China Food Chemicals, 1997, (2): 39-41.

[3] Li Yanqun, Wang Ce, Wang Wensheng ∙ Study on the экстракционный процесс Luo Han Guo Saponin [J] ∙ Natural Product Research and Development, 1995, 7 (4): 87-90.

[4] Li Jun, Lu Cheng, Li Yinqing ∙Study on the экстракционный процесс Luo Han Guo glycosides using orthogonal method [J] ∙Chemical World, 1999, 40 (2): 92-94.

[5] чжу сяоюнь, He chaоуэн ∙Application of микроволновая technology in the экстракция свежих Luo Han Guo sweeteners [J] ∙Guangxi Light Industry, 2002, (2): 11-13.

[6] Ma Shaomei, Yuan Aiqun, Li Jiquan, et al. ∙Ultrasonic повышение извлечения этанола Mogroside [J] ∙Journal of Shenyang Pharmaceutical University, 2006, 23 (5): 316-319.

[7] Li Junsheng, He Ren, Hou Gefei, et al. Влияние ультразвуковой терапии на улучшение экстракции могросида [дж]. Пищевая промышленность и ферментация, 2004, 30 (10): 136-138.

[8] ли яньцюнь, ван се. Адсорбция могросида с помощью смолы AB-8 [J]. Ионный обмен и адсорбция, 1995, 11(4): 360-362.

[9] Li Yanquan, Wang Wensheng, Wang Ce ∙ division and determination of saponins in Luo Han Guo [J] ∙ Food Science, 1993, (5): 66-70.

[10] Liu Zhongdong ∙ Study on the ∙ of Luo Han Guo glycoside V [J] Ion Exchange and Adsorption, 1999, 15 (4): 364-368.

[11] ю лихуан, чэнь кванбин, и сяньхуй и др. Подготовка Luo Han Guo sweetener V standard продукта высокопроизводительной жидкостной хроматографии [J]. Хроматография, 2003, 21 (4): 397 — 399.

[12] ци сян ян, чжан лицинь, чэнь вэйцзюнь и др. Новый метод разделения и очистки Лу хан го сапонинов с использованием макропористых адсорбционных смол [J]. Сделки китайского общества сельскохозяйственного машиностроения, 2005, 21(9): 163-166.

[13] Gao Senlin, Wang Hong ∙ definition of the content of Luo Han Guo saponins [J] ∙Natural Product Research and Development, 2001, 13 (2): 36-40.

[14] ли хайбин, чжан мин, ван юн и др. Определение содержания тритерпене сапонинов в ло хан го [J]. Наука о еде, 2006, 27 (6): 171 — 173.

[15] лян чэньцинь, су сяоцзянь, ли цзюнь и др. Исследование по определению содержания Luo Han Guo glycoside V методом тонкослойного сканирования [J]·Guangxi Light Industry, 2005, (3): 13-15.

[16] чэнь вэйцзюнь, чжан лицинь, ци сян ян и др. Определение содержания Luo Han Guo saponin путем реверсивной высокопроизводительной жидкостной хроматографии [J]. Китайская материя медика, 2005, 28 (7): 559-561.

[17] Li Dianpeng, Huang Yonglin, Liu Jinlei, et al. ∙Determination of the content of loganin II E and loganin III in Luo Han Guo by HPLC [J] ∙Natural Product Research and Development, 2006, 18 (5): 850-853.

[18] чжан Y, Qi X, Chen W и др. Исследование по высокопроизводительному жидкостному хроматографическому анализу основных компонентов сапонина в ло хан го. Наука о еде, 2006, 27(7): 224-227.

[19] чжэн лин, ли лихуа, юань айпин и др. Определение цикломеноксида в подсластителях Luo Han Guo с помощью высокопроизводительной жидкой хроматографии [J]. Фуцзянский анализ и тестирование, 2006, 15 (3): 32-34.

[20] ван тин, хуан чжицзян, цзян имин и др. Исследование биологической активности подсластителей Luo Han Guo [J]. Китайская травяная медицина, 1999, 30 (12): 914-916.

[21] Zhou Xinxin, Song Junsheng ∙ Research on the pharmacological effects of Luo Han Guo and Luo Han Guo extract [J] ∙ Chinese Medicine Journal, 2004, 22 (9): 1723-1724.

[22] чэнь яо, фан сяобин, ван юнсян и др. Исследование антитоссивных и ожидаемых эффектов Luo Han Guo sweet saponins [J]. Пищевые добавки китая, 2006, (1): 41-44.

[23] ци сян ян, чэнь вэйцзюнь, чжан лицинь и др. Исследование по проблеме накопления свободных радикалов и окисления липидов, проведенное ло хан го сапонином [J]. Китайская сельскохозяйственная наука, 2006, 39(2): 382 — 388.

[24] мо чжихао, чэнь юнцзяо, ян ицюань и др. Регулирование иммунной функции клеток мышей подсластителями Luo Han Guo [J]. Традиционная китайская медицина, 2001, 24 (11): 811-812.

[25] сюй цин, лян ронган, су сяоцзянь и др. Влияние сладких сапонинов Luo Han Guo на уровень глюкозы в крови и активность фермента печени у нормальных людей [J]. Наука о еде, 2007, 28 (6): 315-317.

[26] чэнь вэйцзюнь, сон фанфан, лю лиган и др. Влияние экстракта Luo Han Guo saponin на клеточный иммунитет у мышей с диабетом типа 1 [J]. Журнал питания, 2006, 28(3): 221-225.

[27] Takao Kijima ∙ anancer effect of the sweet substance in Luo Han Guo [J] ∙ Foreign Medicine: Traditional Chinese Medicine Supplement, 2003, 25 (3): 174.

[28] Su Xiaojian, Xu Qing, Liang Ronggan, et al. ∙ Research on the toxic effects of monosaccharides in Luo Han Guo [J] ∙ Food Science, 2005, 26 (3): 221-224.