Может ли стахиос использоваться в кормлении животных?

Stachyose относится к полигомерам грау-галактозы и в основном встречается в различных растениях, таких как ламиакие, фабакие, и Scrophulariaceae семьи, особенно в растениях в ламиакие family' род Osmundaceae. В настоящее время основными методами подготовки стахиоза являются физическая экстракция и ферзиматические методы. Если в качестве сырья использовать навес, сладкую верничную траву и стахис туберкулёзу, то содержание стахиоза, извлечённое методом физической экстракции, составляет, как правило, от 20% до 70% [1]. Используя stachys tuberifera в качестве сырья, чистота стахиоза, подготовленного с использованием методов биологической очистки и промышленной хроматографии, достигает 90% [2].

Содержание стахиоза в соевых олигосахаридах, производимых из соевых бобов и их переработанных побочных продуктов, как правило, составляет от 18% до 71%. В определении soy oligosaccharides в GB/T 22491-2008, soy oligosaccharides с чистотой 75%, как правило, содержат 18% stachyose, 6% raffinose, и 24% sucrose. Чжан шуангшуанг и др. [3] экстрагировали стахиоз с чистотой 90% путем ферментации сыворотки соевого белка дрожжами. Стахиос также является основным функциональным компонентом соевого олигосахарида [4]. В последние годы исследования по стахиосу в китае постепенно расширяются. В дополнение к оригинальным областям продовольствия и медицины, применение стахиоза в животноводстве также привлекает все больше внимания.

1 молекулярная структура и физико-химические свойства стахиоза

Stachyose состоит из одной молекулы α-glucose, одной молекулы β-fructose и двух молекул α-galactose, связанных в порядке галактозы (α1→6)-галактозы (α1→2 α) -fructose, и поэтому также известен как тетроз [5]. Молекулярная формула стахиоза — C24 H42 O21 с относительной молекулярной массой 666,59. Формула молекулярной структуры показана на рис. 1. Согласно рентгеновской однокристальной дифракции, стахиос относится к моноклинической кристаллической системе и образует трехмерную многослойную структуру через водородное соединение [5-6], как показано на рисунке 2.

Рис. 1 формула молекулярной структуры стахиоза

Чистый стахиос-белый порошок. Его сладость составляет 22% от сахарозы, и он имеет освежающий вкус без особого запаха. Стахиоза кристаллизуется в маленькие кристаллы в сочетании с 4 молекулами воды. Легко растворяется в воде, с растворимостью 130 г (20 °C). Он нерастворим в органических растворителях, таких как эфир и этанол. Температура плавления 101 градус. Она может потерять кристаллическую воду, когда нагревается в вакууме. Температура плавления безводного стахиоза составляет 167 ~ 170 гравия, и его содержание влаги и поглощение влаги ниже, чем у сукроза. Он не имеет уменьшающих свойств. В серии токсикологических тестов го мейли и др. [7] доказали, что стахиос является безопасным и нетоксичным.

2 применение стахиоза в пищевой промышленности

Из-за отсутствия пищеварительных ферментов, которые переваривают грау -1,6- гликозидные связи в пищеварительных системах человека и моногастрических животных, стахиос может напрямую проникать в задней части пищеварительного тракта, где ферментируется и используется бифидобактериями и небольшим количеством лактобациллий в кишечнике. Таким образом, непищеваренные олигосахариды, такие как стахиозы, также известны как пищевые волокна или пребиотики [8]. Разработка и использование фруктоолигосахаридов получили широкое распространение в таких развитых странах, как Соединенные Штаты, Япония и Европа. По мере развития технологии производства фруктоолигосахарида и содействия ее применению перспективы ее развития постепенно привлекают внимание и внимание китая. В настоящее время в китае насчитывается 153патента, связанных с fructooligosaccharides, в Том числе 29 патентов на технологию производства fructooligosaccharide, 2 патента на технологию тестирования fructooligosaccharide, а остальные патенты на применение fructooligosaccharides [1].

2.1 регулирование баланса кишечной флоры

Хаякава и др. [9] показали, что олигосахариды сои, содержащие 23% и 71% раффинозы после очистки, могут эффективно использоваться бифидобактериями в кишечнике человека, что значительно увеличивает количество бифидобактерий в фекалиях. Luo et al. [10] подготовили культурный носитель с соевыми олигосахаридами, стахиозом, раффинозой и сукрозой в качестве основы и привили его бифидобактериями подросткового возраста и эшерихией коли из человеческих фекалий, соответственно. Они обнаружили, что стахиос был основным фактором, способствующим росту бифидобактерий. Shu Guowei et al. [11] показали, что добавление 0,8% и 1,0% раффинозы в среду для молочных кислотных бактерий (MRS) может значительно ускорить рост бифидобактерий бифидум BB01. Помимо преимущественного использования непищеваренного олигосахарида в кишечнике, бифидобактерия может также преимущественно потреблять ксилоз в условиях, когда сосуществуют многочисленные непищеваренные олигосахариды. Таким образом, ксилоза может напрямую и выборочно распространять бифидобактерии [12].

2.2 улучшает корпус и#39;s иммунная функция

Из-за структуры грава -1,6- галактозы в молекуле раффинозы и на основе молекулярного механизма симпатически активированного рецептора она вовлекается в биологические процессы, такие как адсорбция между иммунными клетками и патогенами. Это дает раффинозу функцию профилактики патогенной инфекции, нейтрализации токсинов и регулирования иммунной системы [13]. После того, как мыши получали ежедневную дозу в 0,2 мл водорастворимой сукроза (на 10 г массы тела) от гаважа в течение 30 дней подряд, было установлено, что их иммунитет и мононуклеарная макрофагическая функция были положительными [14]. Кроме того, под действием бифидобактерий, водорастворимый сукроза может быть разрушена, чтобы произвести несколько иммунных факторов функции, которые повышают тело и#39;s иммунитет.

2.3 снимает запоры и предотвращает диарею

Xylooligosaccharides — это небольшие, водорастворимые пищевые волокна, которые преимущественно используются бифидобактериями в толстой кишки, производя большое количество короткоцепных жирных кислот, таких как уксусная кислота, пропионовая кислота и масляная кислота [15]. Сообщалось, что у 103 пациентов с запором, принимавших ежедневное дополнение, содержащее 5 г xylooligosaccharides, наблюдались улучшенные движения кишечника и усиленные функции кишечника [16]. Кроме того, молекула fructan имеет большое количество гидроксильных групп, которые могут поглощать колодец кишечника, облегчая диарею [17]. Кроме того, фруктан также выполняет функции защиты печени, ингибирования рака, ингибирования атопического дерматита, анти-артрита, профилактики кариеса зубов, профилактики колита, выделения свинца, снижения артериального давления и липидов крови, антиокисления и антистарения [18].

3 Применение стахиоза в кормлении животных

3.1. Влияние стахиоза на кишечную флору птицы

Pacifici et al. [19]показали, что искусственная инжекция 5% и 10% раффинозы в амниотическую полость куриных эмбрионов, инкубаторов до 17 дня и инкубаторов до 21 дня (вылуп), показала, что раффиноза или раффиноза оказывает благотворное воздействие на кишечную флору, биологическое использование железа и морфологическую функцию слизистой ткани кишечника у куриных эмбрионов. Xylooligosaccharides может быть ферментирован и использован бифидобактериями и небольшим количеством лактобациллов в цехе бройлеров кур, и скорость ферментации уступает только скорости ферментации раффинозы в соевых олигосахаридах [20].

Йи чжунхуа [21] показал, что добавление 1,0% xylooligosaccharide приготовления к корму значительно увеличило количество бифидобактерий и lactobacilli в секальной дигесте кур бройлеров, а также значительно сократило количество Escherichia coli и Salmonella в секальной дигесте. Lan et al. [22]использовали 14- дневные бактерии бройлеров cecum в качестве инокулята и ферментированные олигосахариды сои in vitro. Результаты показали, что, по сравнению с соевыми олигосахаридами и раффинозом, стахиос имел наибольший объем добычи газа и темпы его добычи, а также существенно сдерживал рост эшерихия коли и Clostridium perfringens. Ян гицин и др. [23] показали, что добавление 1,0% стахиоза значительно увеличило содержание флоры в пробных клетках бройлеров и способствовало распространению бактерий в роду Brachysporangium, в роду бактерий и в роду Lactobacillus.

Под действием бифидобактерии ферментация, раффиноса производит большое количество короткоцепных жирных кислот в кишечнике, что значительно снижает pH в кишечнике. В этой среде распространение вредных бактерий может быть остановлено, а кишечный микроэкологический баланс может быть скорректирован. Вместе с тем цзян и др. [24]сообщили, что, за исключением значительного воздействия раффинозы на концентрацию бутирата в цеке кур-бройлеров на начальном этапе, это не оказало позитивного воздействия в других отношениях. Однако йижонхуа [22] в своем исследовании обнаружил, что добавление в корм сахара для воды значительно увеличило концентрацию уксусной кислоты и короткоцепных жирных кислот в секальной дигесте кур-бройлеров, а также долю молярной кислоты в общем количестве короткоцепных жирных кислот. Увеличение рн цекальной кишки и илеальной дигесты свидетельствует о понижательной тенденции; Кроме того, добавление 0,5% xylose препарата позволило эффективно сократить содержание летучего основного азота в кишечнике, тем самым препятствуя распространению ранних кишечных putrefactive бактерий бройлера.

3.2 влияние раффинозы на морфологию органов пищеварения и слизистой оболочки кишечника птицы

На морфологическую структуру пищеварительного тракта птицы влияют такие факторы, как полиамины кишечника, эпидермальный фактор роста, короткоцепные жирные кислоты и pH. Большинство из этих факторов регулируется питательными веществами в корме, и одним из важных регуляторов являются несъедобные олигосахариды [25]. Йи жонхуа и др. [26] показали, что добавление различных уровней стахиоза увеличивает абсолютный вес органов пищеварения куриц-бройлеров, особенно секи и толстой кишки. Добавление 0,5% стахиоза значительно увеличило высоту бруса в дуодене, jejunum и ileum кур-бройлеров, значительно уменьшило глубину склепа jejunum и ileum и увеличило высоту бруса/глубину склепа jejunum и ileum.

3.3 влияние раффинозы на производительность птицы и пищеварение питательных веществ

Раффинозе-это несъедобный олигосахарид. Благодаря своей уникальной функциональности и непереносимости она оказывает важное влияние на пищеварительную физиологию и метаболизм питательных веществ животных, тем самым влияя на пищеварение и усвоение различных питательных веществ и, в конечном счете, на производительность животных. Цзян и др. [24] показали, что добавление 1,2% раффинозы к корму в корме по сравнению с обычным кормом соевой муки, не было существенной разницы в усвоении питательных веществ в корме кур бройлеров, но по мере увеличения количества растворимого в воде сахара, усвоение питательных веществ в корме кур бройлеров несколько сократилось. Йи чжунхуа [21] показал, что добавление 0,5% препарата xylooligosaccharide имело различные степени улучшения в видимой степени использования питательных веществ в корме, в то время как добавление 2,0% препарата xylooligosaccharide значительно уменьшило видимое использование было значительно сокращено. Среди них кальций, фосфор, нейтральное моющее волокно и кислотное моющее волокно в большей степени пострадали от количества ксилозы, добавленного в корм. Основная причина заключается в Том, что высокая доза ксилоза ускоряет скорость потока корма в пищеварительном тракте.

Добавление стахиоза в диеты бройлеров может привести к снижению среднесуточного прироста веса и эффективности кормов. По мере увеличения количества стахиоза рост бройлеров демонстрирует линейное снижение и квадратическую тенденцию роста [24]. Йи чжунхуа и др. [27] показали, что существует зависимость "доза-реакция" между воздействием стахиоза на рост кур-бройлеров. Низкая доза (0,5%) оказала незначительное стимулирующее воздействие, в то время как высокая доза (2,0%) оказала ингибиторное воздействие. Кроме того, степень реакции доз в начальный период роста была более высокой, чем в последующий период роста.

3.4 воздействие концентрации внимания на иммунную функцию птицы

Ван Ливан и др. [2, 8] показали, что некоторые олигосахариды, включая очаги, могут способствовать развитию иммунных органов, таких как Тим и бурса фабрикуса у цыплят, несущих яйца, и сократить выбросы аммиака (NH3), сероводорода (H2 S) и других злокачественных веществ в фекалиях. Добавление 0,5% препарата fructooligosaccharide к корму имеет тенденцию к увеличению индекса сеплеенки 18- ти дневных цыплят-бройлеров, и может значительно увеличить содержание иммуноглобулина сыворотки а (ига) 18- ти дневных цыплят-бройлеров, но значительно снизить индекс сеплеенки 36- ти дневных цыплят-бройлеров [29]. Таким образом, очаги могут быть использованы в качестве иммунного усилителя для улучшения иммунной функции животных, а их иммуномодуляторный эффект может быть достигнут в основном за счет регулирования микроэкологии кишечника животных [30].

4 применение фокусов при кормлении свиней

4.1 воздействие концентрации на кишечную флору свиней

Механизм действия xylooligosaccharides в свином кишечнике такой же, как и у кур бройлеров, и эффект такой же. Krause et al. [31]впервые сообщили, что в условиях in vitro xylooligosaccharides может быть полностью ферментирован после отжима piglet's hindgut микроорганизмы, и что этот процесс ферментации может быть ускорен путем добавления высоких уровней лактозы в рацион питания. - давай быстрее. Чжан и др. [32]показали, что добавление 1,0% раффинозы в рацион значительно увеличило количество лактобациллов в свином илее и количество бифидобактерий в кишке и толстой кишке, значительно уменьшило количество бактерий в толстой кишке и значительно увеличило содержание летучих жирных кислот в илее, цеке и толстой кишке. Однако высокие дозы раффинозы могут уменьшить количество лактобациллий и бифидобактерий в желтой, илеевой, цециевой и толстой кишках [33].

4.2 влияние стахиоза на производительность свиней и пищеварение питательных веществ

Раффиноса и стахиоза в соевой муке считаются антипитательными факторами у моногастических животных, в основном потому, что они ферментируют в задней части животных и не оказывают позитивного воздействия на обеспечение метаболической энергией [34]. Смирки и др. [35]также показали, что раффиноза и стахиоз снижают способность свинокорма к перевариванию азота и аминокислот и что способность к перевариванию сухого вещества значительно снижается по мере ее увеличения. Было установлено, что добавление грава-галактозидазы в рацион, содержащий раффинозу, может устранить этот негативный эффект [36], так как фермент может гидролизовать 80% раффинозы в тонком кишечнике свиней, тем самым значительно увеличивая пищеваримость раффинозы. Хотя xylose оказывает негативное влияние на способность свиней к усвоению питательных веществ, добавление 1,0% xylose к безсоевой диете не оказало существенного влияния на производительность свиней по сравнению с обычной соевой диете, но значительно снизило понос отнятых свиней. Однако, когда добавление достигло 2,0%, производительность свиней значительно снизилась в первые 2 недели после отъема [32]. Это показывает, что эффект дозы воздействия раффинозы на производительность пиглета очень очевиден, а также показывает, что антипитательные свойства раффинозы в основном проявляются в пищеварении питательных веществ.

5 применение стахиоза В производстве других животных, таких как водные животные

Cai Yinghua [37] показал, что с увеличением содержания стахиоза в корме значительно возросла скорость поступления кормов, однако видимая способность к усвоению сухих веществ и белка в корме, как правило, снижается. После добавления стахиоза, раффинозы или их комбинации к корму вес и темпы роста атлантического лосося находились между кормами, содержащими цельную рыбную муку, и кормами, содержащими соевую муку, заменяющую часть рыбной муки. Это не оказало существенного влияния на пищеварение белка и жира [38]. По сравнению с диетой, содержащей 100% рыбную муку, добавление 300 г/кг соевой муки значительно снизило показатели роста юного гетероморфного серебряного распятого карпа, однако добавление умеренного количества стахиоза, раффинозы или стахиозы + раффинозы не изменило существенным образом состояние роста и морфологию кишечника Рыбы в течение 8- недельного испытательного периода [39].

Стахиос также не оказал значительного влияния на состав тела и кишечную флору гибридного серебряного распятого карпа [40]. Кроме того, раффиноса может в определенной степени улучшить неспецифическую иммунную функцию гетеротрофического серебряного распятого карпа [41]. Разработаны функциональные кормы (запатентованные продукты), содержащие стахиоз, для профилактики и лечения заболеваний красной кожи в травяном карпе [42]. Ху и др. [43]показали, что добавление 1,25% раффинозы к корму значительно улучшило показатели роста, использования кормов и пищеварительной ферментной активности ювенального турбота. Добавление 1,25% и 5,00% стахиоза значительно увеличило изобилие целлюлолитных бактерий кишечника, связанных с пищеварением, и усилило барьерную функцию слизистой оболочки кишечника юного турбота. Тем не менее, добавление 2,5% до 5,0% fructooligosaccharides также привело к увеличению потребления корма и снижению эффективности корма турбот. Когда добавление достигло 5,0%, хотя количество полезных бактерий в кишечнике турбота увеличилось, количество некоторых потенциальных патогенных бактерий также увеличилось [44]. Это показывает, что влияние фруктоолигосахаридов на различные функции (рост, пищеварение, слизистые оболочки кишечника и т.д.) одного и того же животного варьируется в зависимости от дозы.

Помимо кур, свиней и Рыбы, положительный эффект фруктоолигосахаридов был также продемонстрирован у таких животных, как шелкопряды, резус-обезьяны и мыши. Чэнь чуаньцзе и др. [45] показали, что добавление 0,50% fructooligosaccharides в рацион шелкопряда значительно повысило общую скорость жизни шелкопряда pupae, количество полных коконов, количество коконовых слоев и скорость коконового слоя. Ли хайфан [46] показал, что после добавления раффинозы в рацион обезьян-резус количество лактобацилли в кишечнике увеличилось, а количество кишечника Escherichia coli уменьшилось. После кормления стахиоза - порошок. В течение 6 недель у обезьян были нормальные движения кишечника, а фекалии были желтыми по внешности и в виде распущенных полос, что указывает на то, что раффиноса улучшила кишечную функцию обезьян.

 Кроме того, добавление стахиоза - порошок. Кроме того, значительно улучшилось иммунитет и устойчивость к болезням макаков. Ли и др. [47]обнаружили в своем исследовании, что препарат олигосахарида сои, содержащий 55,3% стахиоза, 25,8% стахиоза и 9,7% стахиоза, способствует распространению полезных бактерий в кишечнике мышей, препятствует распространению патогенных бактерий и значительно способствует кишечному периостальзу и экскреции. Wei Yan et al. [48] показали, что симбиотический пребиотический fructo-oligosaccharide-Lactobacillus plantarum может значительно улучшить специфический клеточный иммунитет, юмористический иммунитет и неспецифическую иммунную функцию мышей с низким иммунитетом, повысить уровень некоторых иммунных факторов в сыворотке и усилить иммунную функцию мышей. 4- недельный испытательный период кормления крыс сахарным диабетом 2 типа (модель) со стахиозом показал, что стахиоз влияет на баланс кишечной флоры, изменяя выражение кишечной флоры mRNA [49]. Исследование, проведенное Jiang-li Dou et al. [50], показало, что добавление 50 и 100 грава/мл стахиоза значительно повысило активность нейротрофилов, культивируемых in vitro у кроликов, а также значительно повысило способность нейротрофилов к фагоцитизу стафилококка aureus.

Можно видеть, что текущие исследования по использованию стахиоза в животноводстве в основном сосредоточены на его воздействии на кишечную флору, пищеварение и иммунитет животных, таких как птица, свиньи и рыба. 1. Подобно воздействию на кишечную среду человека и кишечную флору, стахиос положительно влияет на изменение баланса кишечной флоры животных, таких как цыплята, свиньи, Рыбы, макаки-обезьяны и крысы, положительно влияет на баланс кишечной флоры; 2. Фруктоолигосахариды могут в различной степени увеличить вес органов пищеварения животных, улучшить морфологию кишечной оболочки и усилить барьерные функции слизистой оболочки кишечника; 3. Фруктоолигосахариды выполняют функцию профилактики патогенной инфекции, нейтрализации токсинов и регулирования иммунной системы. Основные результаты исследований воздействия стахиоза на кишечную флору, пищеварительную способность и иммунную функцию птицы, свиней и водных животных приведены в таблице 1.

6. Резюме

Stachyose производится из натуральных растений, является очень безопасным и имеет широкий спектр применения. В целях рационального применения Стахиоза может значительно улучшить баланс желудочно-кишечной флоры и повысить тело и#39; иммунная система, но она мало влияет на производительность животноводства, и эффект дозы также очень очевиден. Существует еще много проблем с его применением в животноводстве, таких как вопросы затрат, влияние источника xylooligosaccharides, уровень добавления и содержание xylooligosaccharides в базальной диете на его воздействие, и влияние добавления xylooligosaccharides в рационе питания на качество продуктов животного происхождения, содержание фовонючих соединений в навозе, и другие потенциальные физиологические функции. Необходимы дальнейшие исследования, особенно в отношении механизма действий на молекулярном уровне. Хотя исследования по стахиозу в китае начались относительно поздно, разработка и применение стахиоза привлекает все большее внимание. По мере снижения затрат на подготовку стахиоза предполагается, что масштабы применения стахиоза будут и далее расширяться по мере проведения дальнейших исследований, а перспективы развития рынка станут еще более широкими.

Справочные материалы:

[1] чжан цзиньчжэ. Обзор и состояние применения водорастворимого пищевого волокна stachyose [J]. Food Safety Herald, 2014(13): 62-63.

[2] чжан цзиньчжэ, чжоу чжицяо, цзэн мин и др. Метод подготовки стахиоза высокой чистоты с использованием технологии промышленной хроматографической сепарации: Китай, CN: 101633676 [P]. 2010-01-27.

[3] чжан шуангшуань, ван липин, ван сичан. Условия ферментации для приготовления стахиоза с использованием сыворотки концентрата соевого белка [J]. Наука о сое, 2008, 27(1): 137 — 140.

[4] ши юн. Исследование процесса очистки и механизма олигосахаридов в соевых мелассах. Докторская диссертация. Вуси: цзяньнаньский университет, 2015.

[5] WU X Y,CHAO Z M,WANG C,et al.экстракция и абсолютная кристаллическая структура стахиоза [J]. Китайский журнал структурной химии,2014,33(1) :65-70.

[6] ма юцуй, ван чунь, ван вэй и др. Разработка стандартной выборки стахиоза [J]. Китайский журнал экспериментальной фармакологии, 2017, 23(14): 68-73.

[7] го мей, ванли фанг, пин, фэн сюань и др. Безопасный токсикологический тест стахиоза [J]. Журнал токсикологии, 2012, 26(3): 236-238.

[8] Пател с, гоял а. функциональные олигосахариды: производство, свойства и применение [J]. Всемирный журнал микробиологии и биотехнологии,2011,27 (5) :1119-1128.

[9] Хаякава к, мизутани дж., вада к., и др. Микробная экология в здравоохранении и болезнях, 1990,3(6) :293-303.

[10] Лу ю, ма лина, цай фанцин. Пробиотический эффект олигосахаридов сои на бифидобактерии и энтеробактерии кишечника [J]. Достижения в современной биомедицине, 2007, 7(3): 399-400.

[11] шу говей, цзи лиюань, чэнь хэ и др. Влияние раффинозы, олигосахарида и галактозы на рост бифидобактерий [J]. Наука и техника о продовольствии, 2011, 36 (6): 6-8, 17.

[12] MILANI C, LUGLI G A, DURANTI S, и др. бифидобактерии демонстрируют социальное поведение через карбохы-drate ресурсов обмена в кишечнике [J]. Научные доклады,2015,5 :15782.

[13] Хасимото х, ямасита а, фуджита к и др. энзиматический синтез связанного между собой галактуолигосача-ride (α- gos) и его функций [J]. Журнал Ap- plied Glycoscience,2004,51(2) :169-176.

[14] лю сюйин, ху йишу, ху юмин и др. Экспериментальное исследование по повышению иммунитета при пероральном введении стахиоза и экстракта юджубе [J]. Китайский журнал тропической медицины, 2009(3): 571-572, 576.

[15] TUOHY K M,ROUZAUD G C, BRUCK W M, и др.

[16] LI T,LU X S,YANG X B.Evaluation of clinical safety and α effects of stachyosa - -ga- lacto-oligosaccharides on gut microbiota and кишечника function in humans[J].Food &Function,2017,8(1) : 262-269.

[17] дуан суфан. Функция и применение стахиоза [J]. Индустрия напитков, 2016, 19(5): 74-78.

[18] хуан вейчжи, чжун сяньфэн, пэн цзявэй и др. Краткое введение в производство, функционирование и применение стахиоза [J]. Наука и технологии пищевой промышленности, 2018(1): 327-332.

[19]  PACIFICI S,SONG J,ZHANG C, и др.

[20] GRMANOVA M,RADA V,SIROTEK K, и др. пребиотические олигосахариды естественного происхождения в смесях кормов для птицы [J].Folia Microbiologica,2010,55(4) : 326-328.

[21] и чжунхуа. Влияние раффинозы на показатели роста, физиологию кишечника и иммунную функцию бройлеров [D]. Докторская диссертация. Пекин: китайский сельскохозяйственный университет, 2006 год.

[22]  LAN Y,WILLIAMS B A,VERSTEGEN M W,et al.Soy oligosaccharides in vitro fermentation charac- теристика и ее влияние на caecal микроорганизмы молодых кур-бройлеров [J].Animal Feed Science and Technology,2007,133(3/4) :286-297.

[23] ян гуйцин, ян ханг, лю цзе и др. Влияние соевого олигосахарида и его функциональных компонентов на производство фекального скола и состав флоры в содержании клещи бройлеров в условиях in vitro [J]. Журнал питания животных, 2017, 29(11): 4058-4068.

[24]  JIANG H Q,GONG L M,MA Y X,et al. Наука о птицеводстве великобритании,2006,47(4) :516 — 522.

[25] чжан пэй, ян гицин, лю хайин. Исследование воздействия и механизмов олигосахаридов соевых бобов на микроэкологию кишечника птицы [J]. Кормовая промышленность, 2016, 37(5): 60-64.

[26] и чжунхуа, ма цюань, ван сяося и др. Влияние раффиноса на развитие органов пищеварения и морфологию слизистой оболочки кишечника кур-бройлеров [J]. Журнал Jiangxi Agricultural University, 2010, 32(3): 566-570, 576.

[27] и чжунхуа, чжи чэн, ма цюганг и др. Влияние добавления стахиоза в низкий олигосахаридный рацион питания на показатели роста бройлеров [J]. Китай Feed, 2008(16): 12-13.

[28] ван ли, сунь нин, су цзюнь и др. Влияние олигосахаридов на производительность яиц и качество яичной скорлупы кур-несушек [J]. Мясо птицы в китае, 2002, 24(3): 11-13.

[29] и чжунхуа, чжи чэн, ван сяося и др. Влияние стахиоза на индекс иммунных органов и иммуноглобулин сыворотки бройлеров [J]. Птицеводство и профилактика птицеводческих заболеваний, 2009(2) :4-9.

[30] Гао юмин, ян сяоцзюнь. Питание и иммунитет взаимодействуют [J]. China Animal farming Journal, 2005, 41(5) :3- 5,9.

[31]  KRAUSE D O, пасха RA,MACKIE R I.Fermentation of stachyose and raffinose by hind- кишечные бактерии откорма свиньи [J].Letters in Applied Microbiolo- gy,2010,18(6) :349-352.

[32]  Чжан л и, ли ди ф, цяо с и др. Влияние стахиоза на производительность, заболеваемость диареей и кишечные бактерии у отнятых свиней [J].Archives of Ani- mal Nutrition,2003,57(1) :1-10.

[33] Пан баохай, сун дунян. Влияние грава-галактозидазы и стахиоза на показатели роста отнятых свиней [J]. Кормовая промышленность, 2011 год (дополнение 1): 69-72.

[34] Hak B,PALMQUIST D,BILYEU K D.Classification of various seed carboгидрант profiles in soy- bean[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2013,61(5) :1105-1111.

[35]  SMIRICKY M R,GRIESHOP C M,ALBIN D M, и др. Журнал Animal Sci- ence,2002,80(9) :2433-2441.

[36] PAN B H,LI D F,PIAO X S,et al.Effect of food α with -galactosidase preparation and stachyose on growth performance,nutrient digestiery and intestinal bacterial populations of piglets[J].Ar- chiv Fur Tierernaehrung,2002,56(5) :327-337.

[37] цай йингхуа. Влияние нескольких антипитательных факторов сои на рост и пищеварительную физиологию камбала (Paralichthys olivaceus) [D]. Компания Master's диссертация. Циндао: китайский океанский университет, 2006 год.

[38] SØRENSEN M, PENN M, EL-MOWAFI A, и др. Влияние стахиоза, раффинозы и сои-сапонинов на пищеварительность, пищеварительные энзимы, морфологию кишечника и показатели роста атлантического лосося (Salmo salar L.) [J]. Аквакультура, 2011,314(1/2/3/4) :145-152.

[39] KROGDAHL A.The effect of soybean meal (SBM) and its fours chemical factors on growth performance and in- testinal morphology of jovenile allogynogenetic silver crucian carp (Carassius auratus gibelio) (фр.) "♀ × Cyprinus carpio" [C]// программа & Рефераты международного симпозиума по питанию и питанию рыб.2010.

[40] Цай с ф, ван W J, и др. влияние соевого бобов, раффинозы и стахиоза на рост, состав тела, морфологию кишечника и микрофлору кишечника юного аллогиногенетического серебряного распятого карпа (Carassius auratus gibelio) ♀ × Cyprinus carpio [J]. Исследования аквакультуры, 2012, 43 (1) : 128 — 138.

[41] ван вэньхуан, е юанту, цай чунанг и др. Влияние соевой муки и ее антипитательных факторов на биохимию сыворотки и неспецифические иммунные показатели гетеротрофического серебряного распятого карпа [J]. Китай Feed, 2010(18): 30-33, 41.

[42] чжи гю, хуан хэ, ли синь. Функциональный корм для профилактики и контроля заболеваний красной кожи в травяном карпе и метод его приготовления. Китай, CN: 104187171B[P]. 2017-01-04.

[43]  HU H B,ZHANG Y J,MAI K S, и др. [J].Journal of Ocean University of China,2015,14(5) :905-912.

[44] Ян п, ху х б, лю и др. диетический стахиос изменил микробиоту кишечника и улучшил функцию слизистой оболочки кишечника ювенального турбота Scophthalmus maximus L. [J]. Аквакультура, 2018, 486 :98 — 106.

[45] чэнь чуаньцзе, чжан япин, гу йиню и др. Влияние добавления фруктоолигосахаридов в рацион питания на скорость жизни шелкопрядов pupa и качество кокона [J]. Шелководство в китае, 2007, 28 (2): 30-32.

[46] ли хайфан. Определение кишечных бактерий у находящихся в плену нечеловеческих приматов и воздействия инулина на кишечную флору [D]. Компания Master's диссертация. Фуцзянь: фуцзянский университет сельского и лесного хозяйства, 2015.

[47]  LI T,LU X S,YANG X b.stachyose - α-galacto-oligosaccharides регулируют кишечную микробиоту и re- lieve запоры у мышей [J].Journal of Agricultural and Food Chemistry,2013,61(48) :11825-11831.

[48] вэй ян, цэн сяоцюнь, Пан даодун и др. Влияние синбиотики плантария Fructo-oligosaccharide-Lactobacillus на иммунную функцию мышей [J]. Китайский журнал пищевой науки, 2014, 14(1): 14-19.

[49] LIU G,BEI J,LIANG L,et al.Stachyose улучшает воспаление путем модуляции кишечника микробиоты с высоким содержанием жира/стрептозотоцин-индуцированный диабет типа 2 у крыс [J]. Молекулярное питание & Пищевые исследования,2018, 62(6) :e1700954.

[50] ду цзянгли, тан ченю, бай сюэфан и др. Влияние раффинозы и стахиоза на функции нейтрофилов в кроличьей периферической крови [J]. Химия тонкая и специальная, 2008, 16(3/4): 26-27.