Что такое фикоцианин?

Февраль b года10,2025
Категория 1 категория:Натуральный пигмент

- спирулина- да- да. is a genus of the cyanobacteria phylum, cyanophyceae class, segmental organisms order, and trematophyceae family. It is a filamentous, multicellular, spiral prokaryotic algae with high protein content and fast reproduction [1, 2]. Spirulina includes various strains such as Arthrospira platensis, Arthrospira maxima, and Arthrospira salina. Spirulina is rich in protein, fat, vitamins, minerals, chlorophyll, β-carotene, and polysaccharides, and is an ideal food and medicine resource for humans [3].

 

Spirulina contains - фикоцианин, an important light-harvesting pigment protein, which is mainly composed of - фикоцианин (PC), allo- фикоцианин (APC) and phycoerythrin (PE). Phycobiliproteins are a safe and non-toxic protein resource. Not only are they a valuable edible and feed protein resource in nature, but they also have advantages in the research of the original theory of photosynthesis. Spirulina polysaccharides and - фикоцианин are important active substances in spirulina [4]. In recent years, research conducted both domestically and abroad has shown that spirulina has a variety of functions, including anti-fatigue, anti-radiation, anti-viral, anti-tumor, anti-allergy and immunity-enhancing properties, which means that spirulina and its active ingredients have broad application prospects in the research and development of functional foods [5].

 

cyanobacteria phylum

- фикоцианин is a type of photosynthetic auxiliary pigment commonly found in cyanobacteria cells. It is a special pigment protein composed of an open-chain tetrapyrrole compound and a dehydrogenase protein bound together by a sulfur chain bond [6]. Its theoretical research and applications have received widespread attention in recent years. The content of - фикоцианин in spirulina is as high as 10% to 20%, and it is an important natural pigment for photosynthesis in spirulina cells. It can preferentially transfer light energy to photosystem II with almost 100% efficiency during photosynthesis [7, 8]. Phycocyanin can be widely used as a natural pigment in industries such as food, cosmetics, and dyes. Phycocyanin also has strong fluorescence and can be used to make fluorescent reagents, fluorescent probes, fluorescent tracers, etc., which are used in clinical medicine, immunochemistry, and biological engineering research fields [9, 10]. As an important physiologically active ingredient, it can also be made into medicines for healthcare. Phycocyanin is also an ideal photosensitizer with no toxic side effects [8].

 

Благодаря хорошим перспективам развития фитобилибелков и их высокому содержанию в спирулине, исследования по фитобилибелкам в спирулине стали горячей точкой в исследованиях по изучению водорослей белка. В статье представлен прогресс исследований фитобилибелков спирулины в последние годы с точки зрения извлечения, очистки, физико-химических свойств, физиологической активности и т.д.

 

Phycocyanin powder


1 1 2 3

В целях извлеченияspirulina - фикоцианинЧасто подразделяется на два процесса: растворение белка и белковые осадки. Фикоцианин является внутриклеточным белком. Чтобы растворить его, клеточная стенка и клеточная мембрана должны быть сначала сломаны таким образом, чтобы раствор растворился в растворенном состоянии. Текущие исследования показывают, что извлечение спирулинного белка все еще находится на стадии экспериментальных исследований, и методы извлечения не те же самые. Чжэнь цзян [11] резюмировал методы нарушения работы клеток следующим образом: неоднократное замораживание и размораживание, химическая реагентная обработка, отек, ультразвуковая обработка и измельчение тканей. Существует пять методов, к числу которых относятся: соленование, кристаллизация, изоэлектрические точечные осадки и ультра-фильтрация.

 

1.1. Система управления Among the cell disruption methods, the swelling method has a long extraction cycle, and the ultrasonic method has a poor extraction rate. Therefore, the more commonly used methods are the repeated freezing and thawing method and the chemical reagent treatment method, but there are also certain differences between the two. Lin Hongwei [12] et al. used sodium dodecyl sulfate (SDS) to destroy the cell membrane of Arthrospira platensis to 1. Выпискаphycobiliproteins, with an extraction rate of up to 98%, which was significantly better than the control group extracted by the freeze-thaw method. Zhang Yifang [13] and others used a combination of KCl and lysozyme to extract - фикоцианинИз клеточных стен спирулины, достигнув скорости разрушения стены более 95%. По сравнению с методом морозильной оттепели они пришли к выводу о Том, что метод морозильной оттепели подходит только для подготовки небольшого количества проб и что очень трудно быстро замораживать и оттепелить большое количество проб. Химический метод реагента затрудняет очистку белка позже из-за добавления химических реагентов, и неправильная работа может легко привести к денатурации белка. Метод заморозки прост и удобен в эксплуатации. Поэтому метод заморозки чаще используется в экспериментах для извлечения небольших количеств- фикоцианин.

 

1.2. Общие сведения В реальной эксплуатации для растворения часто используется несколько методов в сочетании- фикоцианинНасколько это возможно. Например, гао тяньжун [14] и ван юн [15] неоднократно замораживали и размораживали клетки спирулины с помощью ультразвука. Лин хонвей (Lin Hongwei) и другие использовали метод мытья и циклического замораживания и размораживания для извлечения фикобилибелков спирулины. Результаты показали, что извлекаемая доходность с использованием реагента 20 - летнего возраста составила 65,1%, что выше, чем при использовании метода циклического замораживания и оттаивания буферных растворов.

 

После нарушения работы клеток- фикоцианинРастворяется в экстракционном растворе. В настоящее время очень важно выбрать подходящий метод выпадения осадков. Метод выпадения осадков в изоэлектрической точке использует свойства белков, имеющих наименьшую растворимость в изоэлектрической точке. Путем регулировки pH раствора до изоэлектрической точки раствора- фикоцианин, растворимость фитобилибелка снижается и ускоряется. Чжан ифанг [13] и тан чжаохай [16] использовали этот метод для выпадения фикоцианина. Однако, как правило, считается, что фикоцианин чувствителен к pH, и плохое управление pH во время осадков может легко привести к денатурации белка. В литературе больше говорится об использовании соления для выпадения фикоцианина, и его воздействие на осадки также широко признается.

 

Ammonium sulfate solution is a commonly used salt solution. Zhang Yifang [13] and others have also used salt solutions such as magnesium sulfate, diammonium hydrogen phosphate, and ammonium dihydrogen phosphate to compare with ammonium sulfate solution for salting out. The results showed that ammonium sulfate salting out was effective, while the other salting out methods were less effective. However, there are various opinions on the salting out concentration of ammonium sulfate. Mostly, a 50% saturated ammonium sulfate solution is used for precipitation [4, 12, 17], but some use a 30% to 60% saturation [15, 18], and Lin Hongwei [19, 20] even uses 70% or 80% ammonium sulfate solutions. Hu Yibing [21] and others used ammonium sulfate solutions of different concentrations to establish a stepwise gradient salting-out method to separate and purify the - фикоцианинС хорошими результатами. - эйч. В. зиглеман [22] считает, что соленование растворами сульфата аммония различной концентрации может также отделять фикобилибелки от других- фикоцианин, в то время как пенг веймин [23] считает, что невозможно отделить фикобилибелки от других фикобилибелков путем выделения соли сульфата аммония. Тем не менее, извлечение- фикоцианинИз спирулины всегда осуществляется обработка сульфата аммония для получения сырого экстракта фикобилибелка.

 

2 метода очистки

Экстракт спирулиньского белка имеет высокое содержание примесей белков, а соотношение чистоты (A620/A280) фикоцианина должно быть выше 4,0, чтобы иметь практическую ценность [11]. Поэтому сырой экстракт должен быть дополнительно отделен и очищен для удаления примесей белков и повышения чистоты фикоцианина. Методы очистки, о которых в настоящее время сообщается в литературе, включают гидроксиапатитную хроматографию колонн, гелевую хроматографию, ионный обмен и менее широко используемую диатомную хроматографию земной колонны. На практике для достижения лучших результатов зачастую необходимо одновременно использовать два или более методов.

 

Wei Ping [18] et al. прошли сырой экстракт фикоцианина через адсорбционные колонки dee-sephadex a -25 и hydroxyapatite (HA), соответственно, а затем вновь убрали фикоцианиновую фракцию через колонку HA и прошли через колонку G-150 для экстракции фикоцианина из Arthrospira maxima. Результаты показывают, что реагентный фикоцианин с коэффициентом чистоты до 4,18 может быть получен с помощью домашней вторичной гидроксиапатитной колонки, а фикоцианин с одним компонентом может быть получен с помощью дополнительной хроматографии колонки G-150.


Hu Yibing [21] and others used hydroxyapatite chromatography and Sephadex G-100 gel chromatography to obtain - фикоцианин with a purity ratio greater than 5.0. Yin Gang [24] and others used Sephacryl S-200 gel chromatography and hydroxyapatite column chromatography to isolate and purify - фикоцианин from artificially cultivated Спирулина плаценсис, obtaining pure phycocyanin. Zhang Chengwu [4] and others purified the phycobiliprotein twice by HA column chromatography and then purified it once more by Sephadex G-100 column chromatography and filtration to obtain electrophoretically pure phycobiliprotein. Yin Gang [25] and others also studied the use of DEAE Sepharose F F ion exchange and hydroxyapatite adsorption to isolate and purify phycobiliproteins from Spirulina platensis. The phycobiliproteins were identified as electrophoretically pure by isoelectric focusing. Yin Gang [26] and others used hydroxyapatite and Sephadex G-100 for column chromatography to isolate and purify phycobiliprotein with a purity ratio of 4.71.

 

Пенг веймин [23] и другие использовали гидроксиапатитную хроматографию столбца для очистки фикобилибелка от спирулины, чтобы получить фикобилибелк с высокой чистотой. Лин хонвей [19, 20] и др. сначала использовали колонку диатомита 545 для частичного очищения, а затем использовали ионный обмен смерти-целлюлозы для очищения спирулины с коэффициентом чистоты 4,1. Чжан цзяньпин [27] и другие сначала использовали гидроксиапатитную хроматографию столбца, а затем сефадексную G-150 dextran gel chromatography, чтобы получить более чистый фитоцианин. Ван юн [15] и другие изучали и устанавливали процедуру разделения и очистки для сефадекса G-200, дэя-сефадекса a -25, HA и сефадекса G-200. Результаты этого метода были идеальными, с полиакриламидом геля электрофорез (страница) показывает Один электрофорез диапазон, и соотношение чистоты до 14, пройдя через предыдущее максимальное значение 10, как сообщается внутри страны и за рубежом. Это также типичный пример комбинированного использования различных методов очистки.


3. Исследования физико-химических свойств

В связи с широкими перспективами примененияphycocyanin, изучение их физико-химических свойств стало важной темой в развитии спирулины. В последние годы исследования по фитобилибелкам были посвящены молекулярному составу, и значительный прогресс был достигнут в изучении других физико-химических свойств.

 

3.1 исследования спектральных свойств

Спектроскопия является одной из важных характеристикphycocyanin, а изучение спектроскопических свойств обеспечивает важную основу для идентификации фитобилибелков спирулины. В то же время максимальная абсорбция может также использоваться для определения содержания белка, обеспечивая простой и эффективный метод контроля качества фитобилибелковых продуктов. Однако из-за различий в фитобилибелке между различными штаммами спирулины и разной чистоты образцов фитобилибелка, используемых исследователями, существуют также различия в сообщаемых спектроскопических свойствах.

 

Инь ган [26] и другие показали, что ультрафиолетово-видимый спектр фикоцианина плаценза спирулины имеет характерные пики поглощения на длинах волн 278, 360 и 620 нм. Вей пин [18] и другие обнаружили, что после очищенияФикоцианин спирулиныМаксима имеет характерные пиковые значения поглощения при 620 нм и 348 нм после сканирования с использованием ультрафиолетового излучения. Чжан чэнву (Zhang Chengwu) и другие измерили максимальную абсорбцию волны очищенного фикоцианина спирулинового плаценза в 620 нм путем сканирования с использованием ультрафиолетового излучения. Пэн веймин [17] и др. измеряли максимальную видимую пиковую абсорбцию фикоцианина спирулинового плаценза в 620 нм с помощью ультрафиолетового спектрофотометра, а пиковую величину выбросов флюоресценции-при комнатной температуре 645 нм с помощью флюоресценционного спектрофотометра.

 

Ван йонг [15] и другие обнаружили, что длина поглощающей волны фикоцианина в соленосной спирулине при pH 7,0 составляет 615 нм и что по мере уменьшения pH максимальная видимая пиковая величина поглощения фикоцианина переходит на длину голубой волны, а красная − на увеличение pH; Пик возбуждения флюоресценции фикоцианина в нейтральных условиях имеет два пика в 590 нм и 635 нм, а пик выбросов флюоресценции имеет только одно пиковое значение в 650 нм. Чжан эрсиан [28] и другие установили, что максимальная пиковая абсорбция фикоцианина составляет 625 нм, а пиковая концентрация флюоресценции - 648 нм. Инь ган [24, 26] и другие также проводили инфракрасную спектроскопию на фикобилибелках и обнаружили, что у фикобилибелков пики поглощения составляют 3200, 1650, 1550, 1100, 1050 и 650 см -1, что обеспечивает более прочную основу для идентификации фикобилибелков.

 

3.2 аминокислотный состав фикобилибелков

Изучение аминокислотного состава белка способствует дальнейшему изучению внутренней структуры и активных групп фикобилибелков, а также обеспечивает теоретическую основу для других свойств фикобилибелков. Инь ган [24, 26], лю цифан [29], ли цзяньхун [9] и другие изучали аминокислотный состав фикобилибелков в спирулине. Результаты показывают, что аминокислотаСостав совета безопасностиphycocyanin in spirulina of different strains is basically the same.

Чжан чэнгу (Zhang Chengwu) и другие проанализировали состав аминокислоты и содержание фикобилибелка spirulina platensis и пришли к выводу, что, за исключением триптофана, который не был измерен, фикобилибелк содержит 14 аминокислот, только следовые количества хистидина и пролайна, и не хватает метионина. Пенг веймин [17] использовал высокопроизводительную жидкую хроматографию для анализа аминокислотного состава фикоцианина в спирулиновом плацензе. Результаты показали, что аминокислотный состав фикоцианина и фикоцианина является аналогичным, при этом наиболее распространенным является фенилаланин, за которым следуют апартическая кислота, глютамическая кислота и тирозин, в то время как пролайн и хистидин менее распространены. В то же время соотношение кислотных аминокислот к основным аминокислотам в фикоцианине составляет 2,14, что выше, чем у других фикоцианинов (1,92). Поэтому фикоцианин считается кислотным белком, что также объясняет, почему изоэлектрическая точка фикоцианина ниже, чем у других фикоцианов, как сообщается в литературе [29].

 

3.3 биохимические характеристики

3.3.1 изоэлектрическая точка

The isoelectric point is one of the most prominent properties of proteins. The reported isoelectric points of spirulina phycocyanin vary, but all are between 3.4 and 4.8 [4, 13, 24, 26, 29]. This may be due to the differences in the properties of phycocyanin in different strains of spirulina, and another reason is that phycocyanin of different purities affects the consistency of the measurement results. The research results also found that the isoelectric point of phycocyanin is generally lower than that of other phycocyanin, which may be related to the composition of amino acids in the protein [17].

 

3.3.2 изучение фитоцианиновых подгрупп

Текущие исследования показывают, что- фикоцианиныСостоят из двух подгрупп с различными молекулярными весами (α and β) и, как правило, являются экзаменаторами двух подгрупп (αβ)6 [15]. Однако в настоящее время существуют различные мнения относительно молекулярного веса подединиц. Чжан чэнву [4] и др. использовали 12% додецилсульфатно-полиакриламидовый гелеэлектрофорез натрия (SDS-PAGE) для анализа очищенных фикобилибелков. Они обнаружили, что фикобилибелок спирулинового плаценза состоит из двух подгрупп, гравитационных и гравитационных, и что их молекулярный вес составляет 14 500 гравитационных и 15 000 гравитационных, соответственно. Чжан эрсиан [28] измерял молекулярные веса обоихphycocyaninКоличество единиц 1 4900 и 17200. Пенг веймин [17] провел регрессионный анализ, используя в качестве параметров относительную скорость миграции (X) стандартного белка и логаритм его соответствующего молекулярного веса (Y). Полученное уравнение регрессии: Y = 1,0228x + 5,1255 (R2 = 0,9889). Рассчитанный молекулярный вес грануляционной подединицы фикобилибелка в спирулине тупого колпака составляет приблизительно 16,3 к D, а молекулярный вес грануляционной подединицы — приблизительно 18,9 к D, что аналогично отчетам в литературе [30, 31].

 

3.4 устойчивость фикобилибелка

Чжан ифанг [13] в это веритphycocyanin is stable below 40°C. At 45°C, its pigment begins to decompose, the optical density of the solution gradually decreases, and at 50°C, the optical density decreases rapidly. At 70°C, the optical density of the solution is 75% lower than the original value. A sugar solution can improve the thermal stability of phycocyanin. Light has a relatively small effect on phycocyanin. After 60 hours of exposure to light at 5000 lux, the optical density of the pH 5 solution remains unchanged. Studies have also shown that phycobiliproteins are stable between pH 4.0 and 8.5, with no change in optical density. The color of the solution lightens when the pH is greater than 8.5 or less than 4.0. The above research results show that phycobiliproteins are sensitive to temperature and pH but not light. This finding is of great significance for controlling the conditions during the extraction, purification and preservation of phycocyanin.

 

4 исследования физиологической активности

PhycocyaninЯвляется одним из важных активных ингредиентов спирулины. Клинические исследования показали этоphycocyanin in spirulina can improve the body'. Иммунная система, способствует регенерации клеток животных и препятствует росту раковых клеток [32]. Поэтому большое значение имеет дальнейшее изучение физиологической активности фикоцианина. В настоящее время основное внимание в рамках исследований уделяется главным образом изучению деятельности по борьбе с коррупцией, и был достигнут определенный прогресс в изучении других видов деятельности.

 

4.1 исследования по борьбе с коррупцией

Донг цян [33] и другие изучали антиканцерогенную активность фитоцианина (ПК) на клетках гелы двумя методами. Эксперимент показал, что ПК оказывает значительное ингибиторное воздействие на рост клеток HeLa, а когда концентрация ПК составляет 80 мг · л -1, скорость ингибирования раковых клеток достигает 31,0%. Шэнь хайян [34] и другие использовали метод полутвердого agar culture и MT T для определения влияния спирулины фикоцианин на рост клеток лейкемии человека HL-60, K-562 и μ-937. Три типа опухолевых клеток лечили с разной концентрацией спирулины фикоцианина в условиях экстракорпоральной культуры. Результаты показали, что спирулина фикоцианин имеет различную степень ингибиторного воздействия на три типа опухолевых клеток, и наблюдается эффект концентрации-дозы, с сильным ингибиторным эффектом при высоких концентрациях. Го баоцзян [35] и другие изучали ингибиторное воздействие селенизированного фикоцианина, извлеченного из Селена-обогащенного культивируемого спирулинового плаценза, на раковые клетки печени. Го баоцзян (Guo Baojiang) и другие также изучали ингибиторный эффект фотоиммобилированного фикоцианина на линии клеток рака печени in vitro 7402. Эксперимент показал, что при первоначальной иммобилизованной концентрации фикоцианина 20μg/w ell, скорость ингибирования 7402 клеток достигла 55%. По мере дальнейшего роста концентрации уровень ингибирования раковых клеток снижается. Когда концентрация фикоцианина достигла 0,5 мг/вт ell и 1 мг/вт ell, коэффициент ингибирования восстановился до 55% и 66%.

 

4.2 другие исследования в области деятельности

Спирулина фикоцианин также имеет определенную активность в других областях. Ван юаньсюнь [37] и другие обнаружили, что кормление мышей извлеченной спирулиной фикоцианин значительно улучшило выносливость физических упражнений. Чжан чэнву [38] доказал в опытах на животных, что спирулина фикоцианин имеет антирадиационные эффекты, и результаты также показали, что фикоцианин может способствовать восстановлению гематопиетической функции у облученных животных. Танг мей [39] и другие обнаружили, что фикоцианин может способствовать распространению обычных селезеночных лимфоцитов мышей, повышению гемолитической способности спотообразующих клеток и содержания гемолисина в сыворотке, а также значительно противостоять повреждению гидрокортизонов организма и организма#39;s иммунная функция.

 

Zhao Jingquan [40] and others used competitive reaction kinetics to study the scavenging effect of phycocyanin in spirulina against hydroxyl radicals. The results showed that phycocyanin has a strong scavenging effect on hydroxyl radicals, and the measured scavenging reaction rate constant was between (2.8–5.6) × 109L ·mol–1 ·S–1. Tang Mei [41] and others studied the effect of spirulina phycocyanin (PC) on the function of human peripheral lymphocytes. The results showed that PC can promote the effect of PHA on stimulating lymphocyte transformation, and there is a dose-dependent relationship. PC can restore the ability of T cells to form E rosettes after cyclophosphamide damage, especially the ability to form active E rosettes (Ea).

 

Экспериментальные исследования показали, что фитоцианин спирулины имеет физиологическую деятельность, такую как антиопухолевая, антирадиационная, антиусталостная, повышение иммунитета и свободное радикальное удаление отходов, что обеспечивает важную основу для принятия решений в развитии спирулины в области функциональных продуктов питания и лекарственных средств.

 

5. Исследования продуктов фитоцианина [42, 43]

Phycocyanin is an important active ingredient in spirulina, и его уникальные физические и химические свойства ценятся в исследованиях разработки продуктов. Школа наук о жизни пекинского университета использовала спирулинский шлам для подготовки и очистки мономеров фитоцианина, которые были соединены с очищенными антителами дфи. Затем конжугаты были очищены для получения антител с фитоцианином, как флуоресцирующие зонды. Институт химической металлургии китайской академии наук и институт океанологии китайской академии наук также провели исследования по разработке флюоресцирующих маркеров и диагностических реагентов для фитобилибелков, а также исследования по диагностическим реагентам и диагностическим комплектам (методы проверки, маркировки и обнаружения флюоресцирующих реагентов). Есть надежда, что технология и популярный фитобилибелковый антиген-диагностический комплект поверхности вируса гепатита в, который может заменить другие флюоресцентные маркеры и ферменты маркеры могут быть получены. В то же время, спирулинский белок добился большого прогресса в исследованиях пищевых продуктов, особенно функциональных исследований пищевых продуктов. В китае уже существует более 10 видов спирулиновых таблеток и капсул, которые были одобрены министерством здравоохранения в качестве медицинских продуктов в соответствии с различными функциями. Однако, поскольку добыча спирулинного белка все еще находится на стадии экспериментальных исследований, не существует подходящего технологического метода для промышленного производства, что делает спирулинский белок дорогостоящим и ограничивает его применение в определенной степени.

 

natural blue food coloring

6. Выводы

Исследование спирулины в китае началось в 1970 - х годах. Несмотря на значительные достижения за последние 30 лет, большая часть исследований все еще находится на лабораторном этапе. Согласно литературным отчетам, трудно извлечь и очистить активный ингредиент спирулина фикоцианин, и потребуется некоторое время, чтобы развить зрелый производственный процесс. Существует также не так много функциональных продуктов на основе спирулины phycocyanin, и исследования и разработки в фармацевтической области все еще находится в зачаточном состоянии. Поэтому в ближайшие несколько лет исследования и разработки в области фитоцианина будут сосредоточены на следующих областях: 1. Изучение метода промышленного производства больших количеств фикоцианина в целях снижения его стоимости и содействия его широкому развитию и применению. 2. На основе результатов исследований по деятельности фитоцианина расширить разработку фитоцианина от функциональных пищевых продуктов до фармацевтических препаратов и разработку медицинских диагностических реагентов для дальнейшего повышения его ценности. В-третьих, продолжать углубленные исследования физических и химических свойств фикоцианина и разработать надежный метод контроля качества для обеспечения качества исследований и производства фикоцианиновых продуктов, особенно фармацевтических препаратов.

 

Ссылки на статьи

[1] яо баожен. Функция спирулины по оценке питания и укреплению здоровья [J]. Исследования и разработки в области продовольствия, 1998 год, 6(2): 2.

[2] хе цзя, чжао цимей и др. Исследование стабильности спирулины фикоцианин [J]. Acta Biologica Sinica, 1998, 15(5): 17.

[3] Claudio S, массовое производство спирулины [J], экспериментация, 1982, 38: 40 — 43.

[4] чжан чэнву, зенг жаки и др. Изоляция, очистка и физико-химические свойства фитобилибелков спирулины плаценсис [J], исследование и разработка натуральных продуктов, 1996, 8(2): 29-34.

[5] хоу цзяньше, сюэ фэнчжао и др. Основные физиологические регулятивные функции спирулины [J], Food Research and Development, 2001, 22 (1): 31-34.

[6] и голян, цзян лицзинь. Модельная реакция биосинтеза водорослей фитобилибелка [J], Acta Chimica Sinica, 1991, (49): 94-97.

[7] Zeng Fanjie, Lin Qishan и др. Изоляция и характеристика р-фикоритрина от красной алги порфиры дентаты [J], Acta Biochimica et Biophysica Sinica, 1992, 24 (6): 544 -551.

[8] глазер а. н. макромолекулярный комплекс, оптимизированный для передачи световой энергии [дж]. Biochim Biophys Acta, 1984, 768: 29-51.

[9] ли цзяньхун, тай зиху и др. Свойства большого спирулина phycobiliбелок [J]. Журнал наньцзинского университета, 1996, 32(1): 59-63.

[10] чжан чэнву, инь жимин и др. Разработка и использование фитобилибелков [J], Chinese Journal of Marine Drugs, 1998 (4): 26-29.

[11] чжэн цзян. Прогресс исследований в области экстракции и очистки фикобилибелков [J], Food Science, 2002, 23 (11): 159-161.

[12] лин хунвей, у чженцин и др. Новый процесс извлечения голубого белка спирулины [J], Guangxi Chemical Industry, 1997, 26(4): 5-7.

[13] чжан ифанг, лю сючуань и др. Экстракция и стабилизация белка спирулины [J], Journal of юньнаньский университет (Natural Science Edition), 1999, 21(3): 230-232.

[14] гао тяньжун, вэй сяокуй и др. Исследование комплексного процесса использования спирулины [J], журнал юннаньского нормального университета, 2002 год, 22(2): 42-43.

[15] ван юн, цянь кайсян и др. Исследование разделения и очистки высокочистого фикоцианина и его спектральных характеристик [J], Progress in Biochemistry and биофизика, 1999, 26(5): 457-460.

[16] тан чжаохуэй, цзян цзялунь. Предварительный отчет по извлечению и характеристике фитобилибелков спирулины плаценсис [J].

[17] пэн веймин, шанг шутянь и др. Исследование свойств фитобилибелков спирулины плацензии [J].

[18] вэй пин, ли хуан и др. Экстракция и очистка фикоцианина от спирулины maxima [J]. Журнал нанкинского университета химической технологии, 1999, 21(3): 62-64.

[19] лин хунвей, цинь хайку и др. Новый процесс извлечения и очистки фикобилибелков из спирулины плаценсис [J], Fine Chemicals, 1998, 15(1): 18-20.

[20] лин хунвей, лян хон. Отделение и очистка фикобилибелков от спирулины плаценсис [J], Guangxi Chemical Industry, 2002, 31(1): 30-31.

[21] ху йибинь, ху хунджун и др. Исследования по крупномасштабному извлечению и очистке фикобилибелков из спирулины, богатой фикобилибелками [J], вуханские ботанические исследования, 2002, 20 (4): 299-302.

[22] сигельман H W, Kycia J H. Algal biliproteins: handbook of phycoloology methods (под редакцией Johan A H) [J]. Combridge U nipress, 1978, 71-79.

[23] пенг веймин, шанг шутянь и др. Извлечение фикобилибелков из динофлагата Sp.~D (Spirulina platensis) [J], Food Science, 1999 (6): 48-49.

[24] инь ган, лю чжэн и др. Изоляция, очистка и характеристика фитобилибелков от динофлагата спирулина плаценсис [J], Journal of Tsinghua University (Natural Sciences), 1999, 39 (6): 20-22.

[25] инь ган, инь цзинь и др. Исследование по очистке фикобилибелков от спирулины анионным обменом и гидроксиапатитной хроматографией [J], ионный обмен и адсорбция, 2000, 6 (2): 128-133.

[26] инь ган, ли хуэй и др. Отделение и очистка фикобилибелков и полисахаридов от спирулины и характеристик продукта [J], Fine Chemicals, 1999, 16 (2): 10-13.

[27] чжан цзяньпин, чжан цзинмин и др. R- phyкоритрин [J], биофизический журнал, 1997 (6): 173-178.

[28] чжан эрсиан, чэнь яньли и др. Очистка фикобилибелков от спирулиньского пладенсиса и их сбор свободных радикалов [J], тайваньский пролив, 1999 год, 18 (2): 172-176.

[29] лю цифан, ван хуль и др. Изоляция и характеристика фитобилибелков из спирулины салины [J], Acta Hydrobiologica Sinica, 1988, 12 (2): 146-153.

[30] HIL DITCH C M, SMITH A J, et al. Phycocyanin from the cyanobacterium aphanothece halophytic [J], Phytochemistry, 1991, 30(11): 3515-3517.

[31] XIA A D, ZHOU J C, et al. Кинетика передачи энергии в фиконьянине от цианобактерия w estiellopsis fic, изучаемая насосно-зондовыми техниками [J], биохимические и биофизические исследования Communications, 1991, 179(1): 558-564.

[32] шварты J L, шкиар G. ингибирование роста и разрушение раковых клеток полости рта экстрактами спирулины [J]. Proc Amer Acad Oral Pathol, 1986, 40: 23 — 27.

[33] дун цян, цянь кайсян и др. Исследование антикоррозионной деятельности phycocyanin [J], Journal of Zhejiang University (Engineering Science), 2001, 35 (6): 672-675.

[34] шэнь хайян, ван сися и др. Влияние спирулины фикоцианин на рост лейкемических клеточных линий HL-60, K-552 и μ-937 [J]. Морская наука, 2000, 24 (1): 45 — 48.

[35] го баоцзян, у яньцин. Исследование влияния селенизированного фитоцианина как биоматериала на Рак печени [J], Journal of South China Normal University (Natural Science Edition), 2001 (3): 40-44.

[36] го баоцзян, сюй хеде и др. Ингибиторное действие фотоиммобилизованного фикоцианина на Рак печени in vitro 7402 [J], ионный обмен и адсорбция, 2000, 16 (6): 547-552.

[37] ван юаньсюнь. Research on Spirulina to improve tolerance [J], Journal of the Chinese Society of Sports Science, 1985, 4: 20-21.

[38] чжан чэнву, зенг жаки и др. Защитное действие полисахарида и фикоцианина спирулины плаценза на острое лучевое заболевание мышей [J], Journal of Nutrition, 1996, 18(3): 327-330.

[39] тан Мэй, джин инг и др. The effect of spirulina phycocyanin on The иммунная функция мышей, Journal of Jinan University (Natural and Medical Sciences) [J], 1998, 19 (5): 93-97.

[40] чжао цзинь цюань, чжан цзяньпин. Изучение кинетики реакции фитобилибелков с гидроксильными радикалами с использованием импульсного фотолиза [дж]. Научный бюллетень, 2000, 45(1): 32-36.

[41] тан Мэй, джин ин и др. The effects of spirulina хлорфиллин and algin on The function of human периферической крови lymphocytes [J], Journal of South China Normal University (Natural Science Edition), 1998 (4): 63-67.

[42] ли динмэй. Обзор и перспективы развития China's микроводорослная промышленность (1) [J]. Зернокомбикормовая промышленность, 2001, (5): 26-27.

[43] хоу цзяньше. The development and current situation of spirulina food research and development in China [J]. Исследования и разработки в области продовольствия, 2000 год, 21(4): 23-26.

Следуйте за нами
Вернуться к списку
Предыдущий

Как извлечь фикоцианин из спирулины?

Следующий проект

Каковы методы извлечения турмерного порошка?

Нужна дополнительная информация, пожалуйста, свяжитесь с нами.