Что такое маннан олигосахарид?

Mannooligosaccharides,alsoknownasmannan oligosaccharides and glucomannan oligosaccharides, are a class of antigenically active substances extracted from the cell walls of yeast cultures, which are widely found in the cell walls of many microorganisms, as well as in the seeds and tubers of plants, such as gelatinized lemongrass, konjac flour, and guar gum. It has been found that mannan-oligosaccharides have a variety of biological activities, which can enhance animal immunity, regulate glucose-lipid metabolism and maintain intestinal health, as well as have growth-promoting and antioxidant effects (Wang et al., 2018; Li Yuxin, 2015).

Манно-олигосахариды являются безопасными и нетоксичными, имеют хорошие физико-химические свойства, такие как низкая температура и стабильность, и не оказывают негативного воздействия при использовании в сочетании с другими добавками, и они широко используются в качестве добавок в продуктах питания и кормах для животных в китае и за рубежом (Zhao Xiaofeng, 2008). В настоящем документе мы кратко описываем методы подготовки, физиологические функции и научно-исследовательские достижения маннана олигосахарида в животноводстве и птицеводстве, с тем чтобы дать ориентиры для дальнейшего изучения его применения в животноводстве и птицеводстве.

1 физико-химические свойства маннана олигосахаридов

Манно-олигосахариды представляют собой класс олигосахаридов, состоящий из нескольких молекул манноса или манноса и глюкозы, связанных главным образом между градом -1,2 гликозидическими облигациями, градом -1,3 гликозидическими облигациями, градом -1,6 гликозидическими облигациями, градом -1,4 гликозидическими облигациями, или градом -1,3 гликозидическими облигациями (Ximei Yao, 2011).

Физические и химические свойстваmannan oligosaccharides from different sources are different, mannan oligosaccharides are soluble in water, insoluble in organic solvents, and coexistence of organic solvents can produce precipitation or crystallization. Manno-oligosaccharides have a certain viscosity, and the viscosity is inversely proportional to the temperature, in addition, when the pH is 1.5 ~ 3, the viscosity increases; when the pH is 3 ~ 9, the viscosity is more stable (Chen Xiaoying, 2017). Some manno-oligosaccharides with molecular weights ranging from 200 to 20 million have certain gelation effects (Yang et al., 2005), and the structural properties of manno-oligosaccharides are relatively stable. Manno-oligosaccharides are structurally stable and contain a large number of chemical bonds that cannot be hydrolyzed by amylase, and exist in the form of a mixture of polysaccharides (Y. Liang et al., 2013).

2 производство маннана олигосахаридов

At present, the main methods for the preparation of Маннан олигосахаридес Являются: (1) разложение, например, ферзиматическое разложение, окислительное подкисление, ультразвуковое разложение, изменение облучения и т.д.; (2) синтез, такой как микроволновый синтез твердого состояния. Из-за высокой стоимости и технической сложности метода синтеза большая часть промышленного производства глико-олигосахаридов использует метод разложения.

2.1 степень деградации   

Полисахариды автоматически гидролизируются при 190 градусах (Carvalheiro et al., 2004) и деполимеризируются ионизирующим излучением, таким как рентгеновские лучи, микроволновые волны и гидротермическая обработка (Devin et al., 2010); Сингх и др., 2009 год. Слабая кислота (H2SO4) гидролизирует галактоманы от семян пудики мимозы до манно-олигосахаридов (Joana et al., 1995); Сильная основа (NaOH) гидролизирует и деполимеризирует манны из стенок растительных клеток, а манно-олигосахариды могут быть получены путем дальнейшей нейтрализации с помощью сильной кислоты (HCl) (Mia et al., 1995). Подготовка маннана олигосахаридов путем деградации подразделяется на два этапа: подготовка маннана и деградация маннана. Li Ying et al. (2015) использовали макацию горячей воды для приготовления маннана из дрожжевых вин, и оптимальные условия экстракции были 1:23 (г/мл), 124 градуса, 5 часов и 3 раза, что привело к урожайности маннана 14,27%. Метод разложения маннана варьируется в зависимости от его источника, лю Zizheng (2016) пришел к выводу, что оптимальные условия реакции для подготовки маннана олигосахаридов путем ферментативного гидролиза (β-mannanase) были следующими: температура разложения 50 ℃, pH разложения 5,5, время реакции 2 h, соотношение фермента и субстрата 150 U/g, и целевой выход маннана олигосахаридов 65,72%, используя одностороннее и ортогональное испытание.

Чэнь сяойнь (2017) определил оптимальные технологические условия для подготовки манно-олигосахаридов из отработанных дрожжей ортогональным испытанием: концентрация папайна фермента 2,25 ‰, время пищеварения фермента 6 ч, температура щелочи 45 ° c, время пищеварения щелочи 5,5 ч и концентрация щелочи жидкости 0,5 моль/л. В среднем по странеyield of manno-oligosaccharides was 2.14% and the average content was 40.96% by parallel pilot test.  

2.2 метод синтеза

Используя моносакшариды или дисакшариды в качестве субстратов, микроволновый твердотельный синтез олигосахаридов имеет высокую скорость реакции, высокую урожайность и отсутствие загрязнения. Li Xinming (2008) обнаружил, что оптимальные условия реакции для микроволнового твердого синтеза манноса А глюкоза как реагенты: микроволновая мощность 1000 вт, время микроволновой обработки 4 мин, 15% добавка инициатора, 3% добавка катализатора, а выход синтеза составил 86,50%. Высокопроизводительная жидкостная хроматография (HPLC) анализ первичных гликоолигосахаридов: моносакшариды составили 13,50%, дисаксариды — 3,82%, трисакшариды — 7,56%, тетрасаксариды — 6,84%, пентасакшариды — 4,77%, гексасакшариды — 5,54%, гептасакшариды и выше — 57,97%.

3 основные биологические функции маннана олигосахаридов

3.1 антиоксидант

 Реактивные кислородные кластеры (ро) как наиболее распространенные свободные радикалы в организме, включая сверхоксидный ион (O2-), гидроксиловый радикал (o-o), монополиклиники кислорода и т.д., и слишком много свободных радикалов могут быть вредны для организма. Внутриклеточный свободный Fe2+ реагирует с o на образование ROS (Xu Wenzhe, 2018), а осаждение Fe2+ может привести к окислительному стрессу. Манно-олигосахариды имеют эффект уборки свободных радикалов (He Zhikun et al., 2013). Ян сюэшань и др. (2015) обнаружили, что маннан олигосахариды оказывают хорошее воздействие на свободные радикалы-o, O2-, соли диамония (ABTS + -), 1,1- дифенил -2- тринитрофенилгидразин (DPPH) и хелированные анализы Fe2+ in vitro.

Li XM (2008) обнаружил, чтоМаннан олигосахариды увеличили общую антиоксидантную способность(T-AOC) мышей путем увеличения активности каталазы (CAT), сверхоксида дисмутазы (SOD), глутатиона пероксидазы (GSH- px), Na+-K+-ATPase, а также содержания глутатиона (GSH) в животных экспериментах. Малодиалдегид (MDA) является продуктом липидного пероксирования, которое является цитотоксичным, и содержание MDA может отражать уровень липидного пероксирования и окислительного стресса (Quan et al., 2014). В работе Guo Yungui et al. (2010) показано, что маннань олигосахариды могут значительно сократить содержание MDA в сыворотке, печени, миокардии и мышцах кур саньо. Таким образом, механизм действия маннана олигосахаридов может быть через свои физико-химические свойства и реакцию со свободными радикалами в клетках (чжан шуй, 2018), которые могут собирать свободные радикалы и играть антиоксидантную функцию; С другой стороны, маннан олигосахариды могут активировать антиоксидантные ферменты в организме, повысить активность антиоксидантных ферментов и содержание антиоксиданта, а также ингибировать липидное пероксирование, с тем чтобы сохранить баланс антиоксиданта в организме.

3.2 иммунизация

Mannan Oligosaccharides Являются антигенно активными веществами с определенной иммуногенностью, которые могут вызывать иммунную реакцию (Li et al., 2017), и могут использоваться в качестве адъювантов экзогенных антигенов для соединения с клеточной поверхностью определенных токсинов, вирусов и грибов (Kou et al., 2012), с тем чтобы усилить иммунную реакцию организма на антигены или изменить тип иммунной реакции, и, таким образом, усилить клеточный и юморальный иммунитет животного организма. Иммунитет животных организмов. В дополнение к своим коагулянтным и антигенным свойствам, маннань-олигосахариды могут реагировать с протеиновыми рецепторами на поверхности иммунных клеток, вмешиваться в систему сигнализаций на клетках памяти в лимфоузлах и мукозальной ламиной propria, чтобы играть иммуномодулирующую роль (Chen et al., 2005), и улучшать функцию естественного антиинфекционного иммунитета путем активации дополнительной системы (Xiong A-Ling, 2014).

3.2.1 повышение неспецифического и специфического иммунитета 

С одной стороны, маннан олигосахариды могут улучшить неспецифическую иммунную функцию организма путем увеличения индекса иммунных органов и содействия выражению генов, связанных с естественным иммунитетом (Xiong A-Ling, 2014); С другой стороны, маннан олигосахариды могут способствовать распространению лимфоцитов т и в, увеличить соотношение CD4+/CD8+ (Li Xin-Ming, 2008), и стимулировать ключевую молекулу сигнала сигнала тол-типа рецептора (TLR) (Duan u- dong, 2013), тем самым усиливая тело 's специфическая иммунная функция. 2013 год, что, в свою очередь, повышает специфический иммунитет.

Исследования показали, что маннан олигосахарид может значительно увеличить содержание фагоцитного индекса, эритроцитов, тимического индекса и 50%CH50 у мышей, а также повысить неспецифический иммунитет животных (Shen Wenkang et al., 2015). Mannooligosaccharides может по-разному регулировать выражение естественных иммунных генов AvBD9, TLR2, TLR4 и Cath-B1 в тканях бройлеров, а также улучшить функцию естественной защиты от иммунитета бройлеров путем увеличения выражения TLRs в тканях бройлеров и регулирования выражения антимикробных пептидов, таких как p- антиоксидант и кателицидин при помощи TLRs (Xiong A-Ling, 2014).

 Li Xinming (2008) показал, что показатели иммунитета тканей значительно снизились после моделирования старения, но маннань олигосахарид может значительно увеличить показатели печени, почек, селезенки и тима, а также уровни иммуноглобулиновой иги, IgG и IgM в сыворотке стареющих мышей; Под стимуляцией коны маннана олигосахарида может значительно увеличить множительный индекс тимуса т-клеток и скорость трансформации селеночных лимфоцитов, тем самым повышая уровень юморального и клеточного иммунитета мышей-моделей.

Под стимуляцией коса маннан олигосахариды значительно увеличили коэффициент распространения клеток тимуса т и коэффициент преобразования лимфоцитов селезенки, что, в свою очередь, повысило уровень юморального и клеточного иммунитета мышей в модели старения. Кроме того, маннан олигосахарид может активировать ключевые молекулы сигнализирующего пути ТЛР и повысить чувствительность иммунной реакции в желчных тканях свиней, а с другой стороны, он может улучшить кишечный иммунитет свиней путем ингибирования чрезмерной активации сигнализирующего пути ТЛР в брыжеечных лимфоузлах (Duan Xudong, 2013).

3.2.2 противовоспаление

Воспаление-оборонная реакция, вызванная вредными агентами. Как правило, воспалительная реакция вызывается экзогенными веществами и продуктами повреждения тканей и сопровождается производством провоспалительных цитокинов, вербовкой и активизацией иммунных клеток, а также производством свободных радикалов. Межлейкины (ил) являются иммунными факторами, в Том числе ил -2, ил -4, ил -10 и др., которые снижают регуляции воспаления,  Межлейкины (IL) являются иммунными факторами, в Том числе ил -2, ил -4, ил -10 и т.д., которые ослабляют регулирование воспалительных посредников и способствуют иммунной реакции (Liang et al., 2012).

Che et al. (2013) обнаружили, что маннан олигосахариды увеличили уровень ил -10 сыворотки и количество лейкоцитов и лимфоцитов, а также уменьшили интенсивность воспалительной реакции. В мышечной модели острого колита, вызванного глюкосульфатом натрия (DSS), маннан нормализовал выражение слизистой оболочки кишечника 2 и смягчил локальное выражение провоспалительных цитокинов ил -1α, ил -1β, ил -6 и моноцитного химико-протеина (MCP)-1, а также воспалительных везикул платного рецептора TLR4 и NLRP3. Защитный эффект маннана олигосахаридов может быть напрямую опосредован через местные макрофаги, а в модели липополисахарида (LPS) мурина макрофаге (RAW264.7) маннань олигосахариды ингибируют производство ил -1α, ил -1β, ил -6 и гранулоцитостимулирующего фактора (G-SCF) (Szilamer et al., 2016). Можно видеть, что маннан олигосахарид может способствовать производству иммунных факторов путем регулирования выражения неиммунных и иммунных генов, тем самым оказывая противовоспалительные эффекты.

Кинезы с активированным митогеном белком (MAPKs) и коэффициент ядерной транскрипции -κB (NF) являются важными каналами подачи сигналов, которые регулируют воспалительные реакции (Kim et al., 2006). Чрезмерные воспалительные посредники могут активировать NF-κB, в результате чего он отделяется от ингибиторного белка -κB (IκB) и войти в ядро, чтобы вызвать выражение воспалительных генов посредника, тем самым усугубляя воспалительную реакцию (джэль и др., 2002). В отличие от этого, семейные белки MAPKs ERK, JNK и p38 являются регулятивными посредниками, ориентированными на NF-κB при регулировании подстрекательских реакций (Matthew et al., 2014).

Согласно Zhou et al. (2015), маннан олигосачхарид значительно сократил привязку КРС к клеточной поверхности мыши macrophage сырого 264,7 клеток и выражение LPS- вызванных TLR4 и кластера дифференциации (CD)14; Существенно подавили индуцированные ЛПС стимулирующие пути сырого 264.7 клеточных NF-κBs и MAPKs, а маннан олигосакчарид подавил стимулирующие пути NF-κBs и MAPKs, заблокировав стимуляцию NF-κBs и MAPKs. Маннуолигосахарид уменьшает вызываемое ЛПС воспаление, блокируя активацию NF-κB и MAPKs. Кроме того, маннан олигосахарид выполняет противовоспалительные функции, сдерживая вызванное ЛМС увеличение коэффициента некроза опухоли (TNF)- интерферон (IFN)- α (Pourabedin et al., 2016).

3.3 регулирование микрофлоры и поддержание здоровья кишечника

Установлено, что манно-олигосахариды обладают хорошими бактериостатическими эффектами in vitro (Bozkurt et al., 2016; Shine Long, 2016. Манно-олигосахариды эффективны в сдерживании роста патогенной кишечной палочки путем снижения pH при производстве молочной кислоты лактобациллусом (Hang Suqin, 2007). При адгезии и ингибировании адгезии между клетками сальмонеллы (или E. coli) и Caco-2 маннань олигосахарид оказывает эффект ингибирования адгезии сальмонеллы и E. coli, а доза воздействия маннана олигосахарида на ингибирование сальмонеллы при концентрации 0,0005-0,005 моль/л. Торможение сцепления является следующим: β-mannan ≥ mannoglucoscharides (GL) (GL) (Gao L. 2016); 11. М. 2016 год.

Являясь самым большим иммунным отделением в организме, кишечник выполняет функцию профилактики мукозных инфекций и регулирования микробной колонизации (Mehmet et al., 2010). Манно-олигосахариды могут увеличить количество полезных бактерий, таких как бифидобактерия и лактобацилл (Liu Zizheng, 2016), уменьшить количество вредных бактерий, таких как Escherichia coli (Liu Weidong et al., 2011), и увеличить разнообразие кишечных микроорганизмов (Hang et al., 2012), что улучшает состав кишечной флоры. Ван хоншань и др. (2018) обнаружили, что маннан олигосахариды могут избирательно модулировать некоторые микроорганизмы и значительно увеличить относительное изобилие пробиотики, таких как экерманния, лактобациллы и бифидобактерии. Кроме того, маннан олигосахариды могут восстанавливать повреждения кишечника и поддерживать его здоровье.

Юсинь ли (Yuxin Li) (2015) обнаружил, что в ходе теста на отравление кишечной палочкой маннань олигосахарид снизил mRNA выражение TLR4 и IL-1β в слизистой оболочке кишечника без отравления, и увеличил количество меж-эпителиальных лимфоцитов и пораженных клеток после отравления кишечной палочкой, и что маннань олигосахарид улучшил местную иммунную реакцию, регулируя выражение генов цитокины кишечника в слизистой оболочке кишечника и изменяя количество иммунных клеток кишечника, Таким образом, сохраняя здоровье кишечника. Это поможет сохранить здоровье кишечного тракта. Узкие узлы являются основным соединением эпителиальных клеток слизистой оболочки кишечника и играют важную роль в поддержании целостности механической структуры и нормальной функции слизистой оболочки кишечника (Ting Chen, 2016). Тремя наиболее важными связующими белками являются ZO-1, Occludin и Claudins (Zhang et al., 2015). У СИ (Wu Shi, 2017) установил, что маннан олигосахариды имеют определенные функции по ремонту эпителиальных клеток кишечника, по сравнению с группой lpi-травмы, маннан олигосахариды вызвали значительное улучшение регуляции активности клеток Caco-2, значительное понижение регуляции экспрессии IL -6, TNF -α, IL -1β mRNA, значительное улучшение регуляции экспрессии mRNA Claudin-1, ZO-1 и muc2, а также улучшение регуляции экспрессии mRNA ZO-1, что говорит о Том, что маннан может восстанавливать вызванные lpi повреждения клеток Caco-2.

3.4 регулирование гликолипидного метаболизма   

Доказано, что манно-олигосахариды регулируют обмен глюкозы и липидов. В модели мышей с высоким содержанием жира (HFD) маннань олигосахарид снизил уровни триглицерида печени и сыворотки (TG) и значительно увеличил содержание фекальных TG и экскретированных жиров (Izumi et al., 2006). В модели диабетической мыши, изготовленной путем внутрибрюшной инъекции тетрациклина, Qiyu Gao et al. (2012) обнаружили, что маннанский олигосахариды значительно уменьшили уровень TG, глюкозы в крови и холестерина (CHO) у мышей, и значительно повысили уровень липопротеина высокой плотности (HDL) холестерина (HDL- c), и что высокие дозы маннанского олигосахарида оказали лучшее влияние на снижение гликолипидов, чем низкие дозы. Уксусная кислота, пропионовая кислота и масляная кислота являются основными короткоцепными жирными кислотами в кишечнике. Уксусная, пропионическая и бутирическая кислоты контролируют вес тела путем регулирования потребления энергии и расходов в организме (Dinesh et al., 2017) и помогают уменьшить увеличение веса, вызываемое высоким содержанием жира в рационе питания (Den et al., 2015).

Ван хоншань и др. (2018) обнаружили, что маннан олигосахарид может значительно увеличить содержание уксусной кислоты, пропионовой кислоты и бутировой кислоты в киске мышей при нормальных и жирных диете, эффективно замедляя увеличение веса, вызванное жирными диете, и повышая способность липидного метаболизма кишечной флоры мышей. Сильвия и др. (2015) обнаружили, что маннань олигосахариды могут побудить организм к предпочтительной сохранению длинноцепных полиненасыщенных жирных кислот (лк-пуфа) и снижению уровня жирных кислот в качестве гравитационных окислительных субстратов, тем самым меняя жирный кислотный состав печени и мышц, что связано с уменьшением экспрессии гена опреснения печени. Кроме того, маннань олигосахариды способствуют аккумуляции лк-пуфа и окислению путем воздействия на параметры, связанные с кишечно-ассоциированными лимфоидными тканями, и регулирования липидного обмена в мышцах и печени.

Лептин, белок, производимый главным образом адипоцитами, может регулировать энергетический баланс путем подавления голода. Ван и др. (Wang et al. 2018) обнаружили, что уровень транскрипции гена лептина был значительно повышен у мышей, живущих на гфу, в то время как добавление маннана олигосакшарида привело к значительному снижению уровня транскрипции гена лептина, что замедлило увеличение массы тела и накопление жиров у мышей, живущих на гфу; Кроме того, маннан олигосахариды могут снизить уровень трансакции гена липокалина для снижения инсулиновой резистентности и глюкозы нетерпимости, вызванной гфуд у мышей гфуд. Кроме того, маннан олигосахарид может снизить инсулиностойкость и глюкозу нетерпимости, вызванной мышей HFD путем снижения уровня трансакции гена липокалин.

4 маннан олигосахарид в животноводческой и птицеводческой промышленности

4.1 применение в свиноводстве 

В производстве свиней маннан олигосахариды, как было показано, способствуют росту, улучшают кормовое вознаграждение, повышают иммунитет животных, повышают противомикробную потенцию и улучшают качество мяса (Porntrakulpipa et al., 2016; Су и др., 2016. Жао и др. (Zhao et al. 2012) обнаружили, что добавление 0,1% маннана олигосахаридов не только значительно улучшило показатели роста отнятых свиней, но и значительно улучшило способность к усвоению сухих веществ и азота, а также значительно снизило понос свиней. Добавление 0,1% маннана олигосахарида, как было установлено, значительно улучшило показатели роста отнятых свиней, а также значительно повысило пищеваренность сухих веществ и азота и значительно снизило темпы диареи. Кроме того, сообщалось, что маннан олигосахарид не улучшил показатели роста животных (Hrvoje et al., 2016).

Нейтрализация антитела — это антитело, получаемое организмом, стимулируемым антигеном вирусной поверхности с функцией адсорбции и проникновения. В работе Porntrakulpipat et al. (2016) показано, что400 PPM манно-олигосахаридовМожет эффективно усилить специфический для орз антитела, но не нейтрализующий антитела, в то время как 800 PPM манно-олигосахаридов может значительно усилить нейтрализующий антитела. Можно видеть, что добавление гликуолигосахаридов для посева кормов может помочь усилить эффект вакцинации PRRS у свиноматок. Короче говоря, сообщения о стимулирующем рост эффекте маннана олигосахарида, как правило, носят позитивный характер, однако механизм его действий нуждается в дальнейшем изучении. В последние годы исследования маннана олигосахарида у свиней в стране и за рубежом показаны в таблице 1.

Таблица 1 основные исследования и применение гликолигосахаридов в производстве свиней

4.2 применение в птицеводстве   

При производстве бройлеров маннань олигосахариды могут способствовать проявлению генов, тесно связанных со здоровьем кишечника, таких как лум, LYZ и APOA1, и тем самым регулировать иммунную реакцию кишечника и защищать животных от токсичности бактерий, вызывающих заболевания кишечника, для поддержания здоровья кишечника в бройлерах (Xiao et al., 2012). Wuwei et al. (2017) обнаружили, что 50 и 75 мг/кг маннанских олигосахаридов могут значительно увеличить вес тела и потребление бройлеров, в которых 50 мг/кг маннанских олигосахаридов значительно улучшили кормовое вознаграждение; Маннанские олигосахариды также могут значительно повысить активность кошки, сод, гш-пх и т-аок, а соответствующее количество маннанских олигосахаридов составляет 50 мг/кг.

В работе Song Xinlei et al. (2018) сделан вывод о Том, что маннань олигосахарид может значительно повысить уровень содержания ига и ил -2 в крови кур-бройлеров, что может повысить иммунитет организма. Кроме того, маннан олигосахариды оказывают влияние на снижение теплового стресса у кур-бройлеров (Sohail et al., 2010). В исследовании яиц Zaghini et al. (2005) показали, что маннан олигосахарид способен адсорбировать и разлагать афлатоксин B1 (AFB1), что может уменьшить поглощение афb1 в желудочно-кишечном тракте.

Бозкурт и др. (2016) обнаружили, чтоaddition of mannose oligosaccharides to the diet of laying hens can significantly improve their egg production, egg weight and feed compensation, increase the antioxidant capacity, and reduce the number of pathogenic bacteria in the back part of the cecum. and reduced the number of pathogenic bacteria in the posterior segment of the cecum. В случае необходимости conclusion, adding appropriate amount of Glyco-oligosaccharides to poultry diets has many physiological functions such as improving growth performance, enhancing immunity and antioxidant capacity, but the mechanism of Glyco-oligosaccharides needs to be studied in depth. However, the mechanism of action of glyco-oligosaccharides needs to be studied in depth. В настоящее время research reports on glyco-oligosaccharides in poultry in recent years are shown in Table 2.

Таблица 2 основные исследования и применение гликолигосахаридов в птицеводстве

4.3 применение жвачных животных   

Манно-олигосахариды в меньшей степени изучались у жвачных животных. Сяо юй (Xiao Yu, 2012) обнаружил, что маннан олигосахариды могут значительно снизить pH козы румлена, значительно снизить активность мда сыворотки и альта, значительно увеличить содержание глобулина сыворотки и фосфора в сыворотке, значительно увеличить игу сыворотки на 21 день, и IgM сыворотки на 7 и 14 день. Маннан олигосахариды имеют эффект улучшения параметров ферментации козы румлена и укрепления иммунной системы. Xie Xinming et al. (2018) обнаружили, что маннан олигосахарид улучшил показатели роста и иммунитет монгольских овец.

Манно-олигосахариды могут увеличить содержание теленка ADG и кормовую компенсацию, увеличить содержание иммуноглобулина в сыворотке и количество фекальных бифидобактерий, а также уменьшить количество фекальных палочек E. coli (Jin Yadong et al., 2016). Guo Tingting et al. (2017) сообщили, что маннано-олигосахариды значительно увеличили общее содержание летучих кислот и аммиачного азота в руме молочных коров, из которых содержание уксусной кислоты в руменной жидкости было значительно выше; Доля молочного жира была значительно выше, а количество соматических клеток в молоке было ниже. Westland et al. (2017) обнаружили, что маннан-олигосахариды значительно увеличили калориметрический вес коров с целью улучшения показателей роста.

5. Выводы

В качестве нового вида кормовой добавки маннан-олигосахариды широко используются в кормовой промышленности. Однако в процессе применения все еще сохраняются некоторые нерешенные проблемы, которые сдерживают его популяризацию и применение в аквакультуре. В будущем мы должны расширить исследования по механизму маннана олигосахаридов в организме животных, способ добавления маннана олигосахаридов на различных стадиях животного и его соответствующее количество, эффект объединения маннана олигосахаридов с другими кормовыми добавками, взаимодействие маннана олигосахаридов с кишечной флорой животного и так далее. По мере углубления исследований и дальнейшего уточнения соответствующего механизма действий маннанские олигосахариды будут более рационально и широко использоваться, а их практическая ценность будет использоваться в более широких масштабах.

Ссылка:

[1] чэнь тин. Исследование по вопросу о молекулярном регулирующем механизме плотного соединения эпителиальных клеток кишечника с помощью доскональной формулы, основанной на сигнальных путях док-док: [докторской диссертации][D]. Пекин: китайская академия традиционной китайской медицины, 2016.

[2] чэнь сяобин, хон бьяо, цяо ю. Благотворное воздействие, иммунологический механизм и технология применения маннана олигосахарида [J]. Китай животноводство & Ветеринарная медицина, 2005, 8: 6 ~ 8.

[3] чэнь сяоин. Исследования по совместному производству маннана олигосахарида и глюкана из отработанных дрожжей: [Master&.#39;s диссертация][D]. Ханчжоу: чжэцзянский технологический университет, 2017.

[4] дуан сюдун. Влияние диетических маннанолигосахаридов на репродуктивную функцию, иммунную функцию, рост потомства, иммунитет и микробиологию кишечника у свиней: [Master&.#39;s диссертация][D]. Наука и технологии#39; ан: сычуанский сельскохозяйственный университет, 2013.

[5] гао лонг. Исследование по ингибированию склеивания Salmonella и Escherichia coli маннан disaccharide: [Master&.#39;s диссертация] [D]. Пекин: китайская академия сельскохозяйственных наук, 2016.

[6] GAO Qiyu, XU Guangcui, JIANG Yuanyuan. Влияние маннана олигосахаридов и читосана на глюкозу и липиды крови у диабетических мышей, вызванных тетрациклином [J]. Животное сычуань, 2012, 31(1): 129 ~ 131.

[7] го тинтинг, ху дандан, джин ядун и др. Влияние маннана олигосахарида на ферментацию и производительность молочных коров в раннем лактации [J]. Кормовая промышленность, 2017, 38(17): 56 ~ 60.

[8] го юньги, ян билин, сунь цзяньхун и др. Воздействие коньяка маннана олигосахарида на антиоксидантную способность трех желтых кур [J]. Журнал уханского института биологической инженерии, 2010, 3: 72 — 74.

[9] ханг сукин. Влияние маннана олигосахарида на кишечные микроорганизмы отнятых свиней: [докторская диссертация][д]. Нанкин: наньцзинский сельскохозяйственный университет, 2007.

[10] HE Zhikun, ZHAO Changhong, LI Mengting, et al. Сушка и нагревание селеноподкисление konjac glucomannan oligosaccharide and antioxidant properties of its products [J]. Наука о еде, 2013, 34(5): 5 ~ 9.

[11] цзянь юньхуа, гао чуньго, цзян шуцюнь. Влияние маннанских олигосахаридов на производительность и кишечную микрофлору среднебыстрых бройлеров желтых перьев [J]. Китайская птица, 2016, 38(11): 78 ~ 80.

[12] цзинь ядун, чжан Лили, чэнь шаошу. Влияние режима присадки маннана олигосахаридов на показатели роста, фекальную флору и сывороточный иммунитет лактующих телят [J]. Китай животноводство & Ветеринарная медицина, 2016, 43(11): 2922 ~ 2930.

[13] ку цин, лян михуан, тао лян лян и др. Исследования и применение олигосахаридов [J]. Зернокомбикормовая промышленность, 2012, 5: 57 ~ 59.

[14] ли гохуэй, ван цзиньжун, су ланли и др. Исследования по вопросу о применении кормов маннан олигосахаридов в животноводстве [J]. Feed Expo, 2017, 11: 20 ~ 23.

[15] ли Мэй, лю вэньли, чжао гиин и др. Влияние различных олигосахаридов на иммунитет и продуктивность свиней [J]. Anhui agriculture Science, 2010, 38(28): 15655 ~ 15657.

[16] Li XM. Микроволновый твердотельный синтез олигосахаридов и их антиоксидантной и иммунной деятельности у мышей: [докторская диссертация] [д]. Университет цзяньнань, 2008 год.

[17] ли ин, ян тин, чжу ся и др. Метод поверхностной реакции для оптимизации технологических условий извлечения глюкозы из виноградного вина с помощью Saccharomyces cerevisiae mannan[J]. Наука и технологии пищевой промышленности, 2015, 36(16): 294 ~ 298.

[18] ли юсинь. Влияние буковых дрожжей манно-олигосахаридов на продуктивную и иммунологическую деятельность свиней: [докторская диссертация] [д]. Пекин: китайский сельскохозяйственный университет, 2015.

[19] лян юн, ли бяо, дай цзинь. Прогресс в применении маннана олигосахарида в кормовой промышленности [J]. Feed Research, 2013, 1: 32 ~ 33+36.

[20] лю вейдун, су фан, чэн пу. Влияние маннана олигосахаридов и пробиотиков на производительность и кишечную флору цыплят-бройлеров [J]. Журнал экологии животноводства, 2011, 32(1): 32 ~ 35.

[21] лю цичжэн. Процесс подготовки и функциональное исследование маннана олигосахарида: [Master's диссертация] [D]. Хуазхонский сельскохозяйственный университет, 2016.

[22] шэнь вэнькан, чжан минджун, чжао нинфан. Влияние маннана олигосахаридов на иммунитет мышей с ослабленным иммунитетом [J]. Хунанское животноводство и ветеринария, 2015, 4: 13 ~ 15.

[23] сон синлей, чжу ляньцинь, линь ган и др. Влияние комбинированного применения олигосахаридов и органического Селена на производительность и иммунитет кур-бройлеров [J]. Китайская птица, 2018, 40(8): 24 ~ 27.

[24] ван бин. Исследование влияния галактоманна олигосахарида замены антибиотиков на свиней: [Master&.#39;s диссертация][D]. Чанша: институт субтропической агроэкологии, китайская академия наук, 2006 год.

[25] ван хуншань, чжан сяохуан, ли хенг и др. Благотворное влияние глико-олигосахаридов у мышей на диету с высоким содержанием жира [J]. Пищевая промышленность и ферментация, 2018, 44(11): 63 ~ 68.

[26] нг чун-зао, ван цзянь-хуа. Влияние лактобациллов и олигосахаридов на рост и биохимические показатели сыворотки отнятых поросят [J]. Jiangsu Agricultural Journal, 2011, 27(1): 94 ~ 99.

[27] Wu S. Синергетический эффект восстановления коньяка маннана олигосахарида и Bacillus subtilis на повреждение эпителиальных клеток кишечника :[Master&.#39;s диссертация][D]. Хуазхонский сельскохозяйственный университет, 2017.

[28] у вэй, чжэн юндуо, цзя линан и др. Влияние глико-олигосахаридов на ранние показатели роста и связанные с ними физико-химические показатели цыплят бройлеров [J]. Китайская птица, 2017, 39(01): 34 ~ 37.

[29] сяо и. Влияние функциональных олигосахаридов на параметры ферментации рубца и биохимические и иммунологические показатели сыворотки у коз: [Master&.#39;s диссертация][D]. Qingdao: Qingdao Agricultural University, 2012.

[30] се минсинь, ван хэронг, ян цзиньли и др. Влияние дрожжей маннана олигосахаридов на показатели роста, сывороточный иммунитет и воспаление, а также антиоксидантные показатели у монгольских овец [J]. Журнал питания животных, 2018, 30(1): 219 ~ 226.

[31] сюн а-лин. Влияние диетических маннано-олигосахаридов на показатели роста и проявления естественных иммунных генов у кур-бройлеров: исследование [Master&.#39;s диссертация][D]. Наньчан: цзянси сельскохозяйственный университет, 2014.

[32] сюй вэньчжэ. ТБК и редуктаза пероксида 2 в ферройно-индуцированной неврологической травме: исследование механизма действия :[докторская диссертация][д]. Цзинань: шаньдунский университет, 2018.

[33] янь хуа, ван чжэньси. Научно-исследовательский прогресс в области применения микроэкологических добавок-гликолигосахаридов [J]. Jiangxi Journal of Animal Husbandry and ветеринарная медицина, 2005, 1: 22 ~ 23.

[34] ян сюэшань, чжу ся, ли ин и др. Ортогональные эксперименты по оптимизации процесса экстракции глукоманна из шламовых дрожжей виноградных вин и его антиоксидантных эффектов in vitro [J]. Наука о еде, 2015, 36(18): 69 ~ 74.

[35] яо ксимей. Подготовка коньяка глукоманнана олигосахаридов путем непрерывной ферментно-мембранной комбинированной реакции: [Master&.#39;s диссертация][D]. Пекин: китайская академия сельскохозяйственных наук, 2011.

[36] чжан шуай. Защитные эффекты и механизм коньяка маннана олигосахарида и Bacillus subtilis на вызванные ЛДП окислительные повреждения кишечника: [Master&.#39;s диссертация] [D]. Ухань: хуазхонский сельскохозяйственный университет, 2018.

[37] чжао сяофэн. Трансплантация и ферментативная подготовка олигосахаридов галактоманна из гум гума: [Master&.#39;s диссертация][D]. Наньнин: университет гуанси, 2008.

[38] бозкурт м, бинтас е, киркан с и др. Сравнительная оценка пищевых добавок с маннаном олигосахаридом и орегано эфирных масел у форсированных и полностью кормленных кур-несушек в возрасте от 82 до 106 недель [J]. Наука о птице, 2016, 95(11):2576.

[39] бозкурт м, кукукиилмаз к, катли а у и др. Производительность, качество яиц и иммунная реакция кур-несушек скармливают диеты, дополненные маннаном-олигосахаридом или эфирной масляной смесью при Мод-стирают и нагревают окружающую среду [J]. Наука о птице, 2012, 91(6):1379.

[40] карвалейру ф, эстевес м п, параджо дж., и др. Производство олигосахаридов автогидролизом пивоваренного завода 's отработанное зерно [J]. Biore- source Technology, 2004, 91(1):93 ~ 100.

[40] Che T M, Johnson R W, Kelley K W, et al. Маннан олигосак-шарида улучшает иммунную реакцию и эффективность роста пир-животных свиней, экспериментально инфицированных свининой репродуктивной и res-вирус пираторного синдрома [J]. Журнал Animal Science, 2013, 91(12): 5668 ~ 5679.

[42] чэн Y ф, ду м ф, сюй Q и др. Диетическая маннан олигосача-ride улучшает показатели роста, мышечный окислительный статус, а также качество мяса в бройлерах под циклическим тепловым стрессом [J]. Журнал теплового биола — ogy, 2018, 75.

[43] Den B G, Bleeker A, Gerding A, et al. Короткоцепные жирные кислоты защищают от ожирения, вызванного высоким содержанием жира в рацион питания, с помощью PPARγ-depen- dent переключателя от липогенеза к окислению жира [J]. Диабет, 2015, 64 (7): 398 ~ 408.

[44] Devin J R, George E I. двухэтапная гидротермическая переработка пшеницы (Triticum aestivum) Bran для производства ферулойлированных арабиноксилоолигосахаридов [J]. Журнал сельскохозяйственной и пищевой химии, 2010, 58(10): 6427 ~ 6432.

[45] динеш к д, Моника п, ренука м и др. Кишечная микробиота modu- lation и ее связь с ожирением с использованием пребиотических волокон и пробиотики: обзор [J]. Рубеж микробиологии, 2017, 8: 563.

[46] Duan X D, Chen D W, Zheng P и др. Влияние диетического человека — добавки n oligosaccharide на производительность и иммунную реакцию свиней и их потомства [J]. Наука и техника о кормах животных, 2016, 218: 17 ~ 25.

[47] Hang S Q, Zhu W. Gut bacterial and Lactobacilli communi- связки отняв свиней в ответ на маннан олигосахарид и сахарной свеклы целлюлозы в vitro ферментация [J]. Сельскохозяйственные науки в ци — на, 2012, 11(1): 122 ~ 133.

[48] хрвое в, марко с, светлана т и др. Эффект маннана олигосака — добавки в шариды на кровь и кишечные иммунные клетки, бакте — номера риа и производительность у отнятых свиней [J]. Acta ветеринария брно, 2016, 85(3): 267 ~ 276.

[49] идзуми т, сигеёси ф, асако I и др. Влияние маннуолигосак-колес от кофе маннан на хранение жира у мышей кормили высоким содержанием жира di-et[J]. Наука о здравоохранении, 2006, 52(3): 333 ~ 337.

[50] Jahanian R, Ashnagar M. влияние пищевых добавок маннана-олигосахаридов на производительность, метаболиты крови, способность к усвоению илеальных питательных веществ и микрофлору кишечника в Escherichia coli ~ chal — удлиненные кур-несушек [J]. Наука о птице, 2015, 94(9):2165.

[51] Joana L M.S.G, Alain H, Carmen L.O.P и др. Галактоманы из бразильских семян: характеристика олигосахаридов pro — удушаемых мягким кислотным гидролизом [J]. Международный журнал биологических макромолекул, 1995, 17(1):13.

[52] джоэл л п., Дэвид б. два пути к NF-κB [J]. Молекулярная клетка, 2002, 10(4):693 ~ 695.

[53] Kim H J, Lee H S, Chong Y H, и др. Тоси — кология, 2006, 225(1): 36 ~ 47.

[54] лян х е, ли р р, бандо дж., и др. Различные формы выражения IL -4 и IL -13 определяют уникальные функции аллергических im- munity [J]. Иммунология, 2012, 13(1):58 ~ 66.

[55] Матфей л т., Иаков г., гарет д., и др. Эпителиальные и stro- тза клетки эндометрия коров играют роль во врожденном иммунитете и инициируют воспалительные реакции на бактериальные липопептиды in vitro через платные рецепторы TLR2, TLR1 и TLR6 [J]. Эндокринология, 2014, 155(4):1453 ~ 1465.

[56] Mehmet L O, Hasan E S, Okur A A. влияние смеси маннанолигосаков-колец и/или органических кислот на производительность, кровяные парамы и микробиоту кишечника цыплят-бройлеров [J]. Итальянский журнал Animal Science, 2010, 8(4): 595 ~ 602.

[57] мия, Майкл джей ди, Дэвид би и др. Характеристика олигосака — колесниц из антигенного маннана сакчаромициных цепочек [J]. Glycoconjugate Journal, 1998, 15(8): 815 ~ 822.

[58] Ping W Q, Qin H, You J, et al. Влияние алания-глутамина и маннана олигосахаридов на показатели роста и темпы диареи у отнятых свиней [J]. Кормовая промышленность, 2017.

[59] Poeikhampha T, Bunchasak C. сравнительное воздействие глюконата натрия, маннана олигосахарида и диформата калия на показатели роста и морфологию тонкого кишечника свиней [J]. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences, 2011, 24(6): 844 ~ 850.

[60] Porntrakulpipat S, Tuangtananan Y, Schoosing S и др. Маннан олигосахарид добавки во время беременности может повысить уровень свинины вируса репродуктивного и респираторного синдрома (PRRS)-spe- cific антитела свиней и их свиней [J]. Пакистанский ветеринарный журнал, 2016, 36(1) : 106 ~ 108.

[61] пурабедин м, чэнь к, ян м и др. Mannan and Xylo-oligosaccharides modulate cecal microbiota и выражение inflam- маторных цитокинов и уменьшить cecal Salmonella Enteritidis colo-низация у молодых кур [J]. Микробиологическая экология Fems, 2016, 93(1):fiw226.

[62] Prawitwong P, Takigami S, Phillips G O. воздействие облучения на молярную массу и свойства коньяка маннана [J]. Продукты питания гидроколлоидные, 2007, 21(8): 1362 ~ 1367.

[63] Quan Q, Hao Q, Song T, et al. Оценка антиоксидантного переменного тока — кариес ампелопсина и его защитного действия в липополисахаке — поросята окислительного стресса, вызванные ездовым действием [J]. График 1, 2014, 9 (9):e108314.

[64] Sang H M, Fotedar R, Filer K. влияние диетического маннана олигосахарида на выживание, рост, иммунитет и пищеварительную активность пресноводных раков, Cherax destructor Clark (1936) [J]. Аквакультура питание, 2015, 17(2): e629 ~ e635.

[65] силивия т, Даниил м, Мария дж. Влияние диетической консоли-трированных маннана олигосахаридов добавки на рост, кишечника му-козальной иммунной системы и липидного метаболизма печени европейских морских басс (Dicentrarchus labrax) несовершеннолетних [J]. Иммунизация моллюсков, 2015, 42(2): 508 ~ 516.

[66] Singh V, Tiwari A. гидролитическая фрагментация семенных деслей под микроволновым облучением [J]. Международный журнал биологических макро-молекул. 2009, 44(2):186 ~ 189.

[67] сохаил м у, иджаз а, юсаф м у и др. Снижение циклического теплового стресса в бройлерах за счет пищевых добавок маннано-олигосахачского аттракциона и пробиотика на основе лактобацилла: динамика кортизола, гормонов щитовидной железы, холестерина, с-реактивного белка, а также гуморический иммунитет [J]. Наука о птице, 2010, 89(9): 1934 ~ 1938.

[68] Su C W, Xiao F Y, Yi L I, et al. Влияние пробиотики и человека-нан олигосахаридов в пшеничном рационе на продуктивные перфор-манс и фекальные микроорганизмы у кормящих свиней [J]. Хейлунцзян ани-мал наука и ветеринария, 2016.

[69] силамер ф, Кристиан с, жужанна в и др. Олигоманнан преби-отический смягчает иммунологические, клинические и поведенческие симптомы у мышей модели воспалительной болезни кишечника [J]. Научные доклады, 2016, 6: 34132.

[70] Valpotia H, Zura Z I, Samardzija M, et al. Пищевые добавки с маннаном олигосахаридом и клиноптилитом модулируют врожденные и адаптивные иммунные параметры отнятых свиней [J]. Польский журнал ветеринарных наук, 2018, 21(1): 83 ~ 93.

[71] ван х, чжан х, ван х и др. Маннан-олигосахарид модулирует ожирение и кишечную микробиоту у мышей с высоким содержанием жира [J]. Фуд функт, 2018, 9: 3906 ~ 3915.

[72] Westland A, Martin R, White R, et al. Mannan oligosaccharide prepartum mentation: effects on dairy cow colostrum quality and количественная [J]. Животное, 2017, 11(10):1 ~ 4.

[73] сяо р, маллони д, Рут к и др. Влияние дрожжевых клеток стенки производных маннан олигосахариды на jejunal выражение гена у молодых кур бройлеров [J]. Наука о птице, 2012, 91(7):1660.

[74] загхини а, мартелли г, ронкада п и др. Mannanoligosaccharides и aflatoxin B1 в кормах для кур-несушек: влияние на качество яиц, afla- остатки токсинов B1 и M1 в яйцах и уровни aflatoxin B1 в печени [J]. Наука о птице, 2005, 84(6): 825 ~ 832.

[75] чжан к, хорнеф м W, дупет а. эпителия кишечника как хранитель целостности кишечного барьера [J]. Клеточная микробиология, 2015, 17 (11): 1561 ~ 1569.

[76] чжао п и, чон дж. Журнал Animal Science, 2012, 90(3):833.

[77] чжоу р, ши х у, гао у и др. Противовоспалительная активность олигосахаридов гулуроната, полученная путем окислительного разложения альгината липополисахарида, активированного мурином макрофаге