Каковы преимущества MOS Oligosaccharides для животноводства?

Манно-олигосахариды (MOS) are widely found in konjac flour, guar gum, gelatin and yeast cell wall, very soluble in water, insoluble in organic solvents, and are oligosaccharides composed of α-1,2, α-1,3 and α-1,6 glycosidic bonds. Compared with antibiotics and microecological agents, mannan oligosaccharides have the advantages of high efficiency, safety and environmental protection, which can reduce the number of Escherichia coli and Salmonella, increase the number of Lactobacillus and Bifidobacterium, effectively improve the microflora of the intestinal flora, increase the daily weight gain of the animal and the feed conversion rate, and enhance the body's устойчивость к болезням. Как новая, эффективная и экологически безопасная кормовая добавка, она имеет перспективное применение в кормовом питании животных.

1 физиологические функции манно-олигосахаридов

1.1 регулирование желудочно-кишечной среды

Маннан олигосахарид может способствовать распространению полезных микроорганизмов и препятствовать размножению вредных микроорганизмов, а также может адсорбировать патогенные бактерии. Некоторые исследования показывают, что маннана олигосахарида может придерживаться наружного края agglutinin 11 видов E. coli, который может блокировать сочетание наружного края agglutinin кишечных патогенов и конкретных молекул сахара на поверхности эпителиальных клеток слизистой оболочки, так что кишечные патогены can't посажены в желудочно-кишечный тракт и размножаются, с тем чтобы можно было выращивать и распространять полезную для кишечника бактериальную флору, а также улучшить микроэкологию кишечника, что в большей степени способствует пищеварению и всасыванию организма.

1.2 повышение иммунитета

При наличии определенных моо в кишечном тракте олигосахариды конкурентно сочетаются с экзогенными лектинами на поверхности патогенных бактерий, тем самым замедляя поглощение антигенов и повышая потенцию антигенов, тем самым повышая клеточную и юморальную иммунную реакцию животных. Шао лиангпин показал, что пероральное введение маннана олигосахаридов может значительно увеличить содержание IgG в сыворотке лактации свиней (P < 0,05) и содержание иги в сыворотке крови (P < 0,01), а маннана олигосахаридов может также значительно увеличить коэффициент преобразования фитоалексинов лимфоцитов, лейкоцитов фагоцитов и общее количество т-лимфоцитов в лактатных свининах (P < 0,01), в то время как глютатионов пероксидазы в пиглетах &#- 39; Была также увеличена кровь (P < 0,05) и общее количество т-лимфоцитов в пиглетсе#- 39; Была также увеличена кровь (P < 0,01). Содержание глутатиона пероксидазы (гш-пх) и супероксида дисмутазы (сод) в крови свиней также значительно возросло (р <) 0,01. - 1. Чжоу хунли и др. также отметили, что добавление маннана олигосахарида в рацион отнятого поросята значительно увеличило содержание IgG сыворотки, а содержание IgA и IgM было выше, чем у контрольной группы, что привело к выводу о Том, что маннана олигосахарида оказывает определенное воздействие на гумно-иммунную систему 121 Результаты исследования показывают, что маннан олигосахарид оказывает значительное влияние на иммунную систему свиней.

1.3 адсорбция или связывание микотоксинов

Manno-oligosaccharides  powder can eliminate the harmful effects of mycotoxins by physisorption or direct binding to mycotoxins. It has been found that mannan oligosaccharides bind zearalenone, aflatoxin, and hesperidin, and Zaghini et al. demonstrated that the addition of yeast cultures degraded or bound up to 88% of aflatoxin B in an in vitro liquid culture medium. Raju et al. found that the binding of mannan oligosaccharide to aflatoxin, zearalenone and ochratoxin was 82.5%, 51.6% and 26.4% respectively in an in vitro test simulating the digestive tract of broiler chickens41 .

2. Применение конвенцииМанно-олигосахаридыВ животноводстве

 2. Свиньи

Yue Wenbin et al. added mannan oligosaccharide 0.5% to the basal diet of weaned piglets at 35 days of age, and the test results showed that the concentration of Escherichia coli in the cecum and colon of the test group was significantly lower (P<0.05) and the concentration of Lactobacillus and Bifidobacterium lactis and Bifidobacterium bifidum in the cecum was significantly higher (P<0.05) compared with that of the control group ⁵¹ . Zhang Caiyun et al. added galactomannan oligosaccharides 0.12% (treatment 1), aureomycin 50 mg-kg¹ + galactomannan oligosaccharides 0.08% (treatment 2), aureomycin 100 mg-kg-¹ (treatment 3) to the basal diets of weaned piglets at 28 days of age, and compared the results, they found that the average daily weight gain and average daily feed intake were highest in treatment 1, which was 17.55%, 7.13%¹6 and 7.13%¹6 higher than that of treatments 2 and 3, respectively. and 7.13%¹6]. Wu Chunzao et al. added 100 mg-kg-¹ of hygromycin and 0.2% of mannan oligosaccharide to the weaning basal diet at 30 days of age, and the results showed that the addition of mannan oligosaccharide increased the daily weight gain of piglets and reduced the feed-to-meat ratio, and the difference with the control group was significant (P<0.05); the levels of total protein, urea nitrogen, and total cholesterol in the serum were significantly reduced (P<0.05), and the activity of SOD in the serum was significantly increased (P<0.05), and the activity of SOD in the serum was significantly increased (P<0.05). activity was significantly increased (P< 0.05)⁷.

Shao Liangping and Zhou Hongli also reported that MOS significantly increased the serum IgG level of weaned piglets¹-2). Huang Junwen et al. reported that the addition of mannan oligosaccharide to the diet of weaned piglets В результате длина тонкого кишечника вилли была выше, чем у пустой группы, в то время как глубина склепов была ниже, чем у пустой группы8.

Chen Lixiang et al. показали, что добавление MOS 0,15% значительно увеличило интерлейкин -6, кортисоль и гормон роста в молоке, а также увеличило объем лактации и содержание белка в молоке свиноматок по сравнению с контрольной группой (P <) 0.05. - 91. Ван бин и др. сообщили, что добавление гио в посевы с тем же уровнем питания значительно увеличило количество лактации свиней по сравнению с контрольной группой и снизило соотношение корма к молоку (P&) Lt; 0,05; и оказывает модифицирующее воздействие на эндокринную функцию. 10. Ван бин и др. сообщили, что, когда уровень питания sows&#- 39; Диета та же, добавление группы MOS может значительно увеличить объем лактации и уменьшить соотношение корма к лактации по сравнению с контрольной группой (P&&; 0,05), а также оказать определенное регулирующее воздействие на эндокринную функция10.

2.2 мясо птицы

2.2.1 цыплята

Юй гиян и др. сообщили, что соответствующее количество маннана олигосахарида может способствовать распространению бифидобактерий в цехе и илеуме, а также способствовать распространению лактобацилли в илеуме и секе и сдерживать рост эшерихии коли. Манно-олигосахариды могут частично или полностью заменить антибиотики в диете бройлеров, а эффект манно-олигосахаридов лучше, когда количество манно-олигосахаридов прибавляется на 0,5 ~1 г-кг -». Чжан цяньбин и др. изучали влияние замены антибиотиков маннаном олигосахаридами на кишечную флору несущих цыплят, и результаты исследования показали, что количество бифидобактерий и лактобациллов в цеке и илее несущих цыплят значительно возросло в группе маннанов олигосахаридов по сравнению с контрольной группой и группой антибиотиков (р < 0,05), А в группе маннанских олигосахаридов количество кишечной палочки Escherichia coli в кишечном тракте укладки цыплят значительно сократилось по сравнению с контрольной группой (P < 0,05).12). Чжан хейтанг и др. создали три экспериментальные группы, а именно: группу I (базовое питание + MOS 0,5 г-кг ¹), группу II (базовое питание + MOS 1,0 г-кг ¹) и группу III (базовое питание + MOS 2,0 г-кг ¹), и по сравнению с контрольной группой среднесуточное увеличение веса экспериментальных групп увеличилось соответственно на 2,11%, 3,15% и 1,24%; И соотношения кормового сырья к весу были снижены на 2,14%, 2,56% и 0,85%, соответственно, 2,56% и 0,85%, соответственно; Индекс тимуса, индекс селезенки и индекс бурсы испытательной группы II были увеличены соответственно на 26,02%, 30,82% и 16,87%, и добавление MOS 1,0 мг-кг было целесообразно для улучшения характеристик и устойчивости кур-бройлеров ¹3.

Чэнь юнджун и др. добавляют в базовый рацион питания бройлеров и кур-несушек мо, и результаты показывают, что T-клетки в периферической крови бройлеров в экспериментальной группе были выше, чем в контрольной группе, с весьма значительной разницей (P < 0,01), а антитела кур-несушек против болезни ньюкастла были значительно выше, чем у контрольной группы (P < 0,05), А прирост веса бройлеров экспериментальной группы в разных местах был выше, чем у контрольной группы на 312,5 г и 94,5 г, со значительной разницей (P < 0,05), а выживаемость увеличилась на 0,7% и 2,3% соответственно. Разница была значительной (P < 0,05), а коэффициент выживаемости вырос на 0,7%, 2,3%. Sims et al. отметили, что мос способствуют повышению производительности индюшек, а мос повышают уровень содержания ига в слизистой оболочке индюшек и значительно повышают уровень содержания IgG в крови. Мо могут способствовать распространению т-клеток в периферической крови и увеличивать процент т-клеток. Ван цюань и др., добавив MOS 25 г-кг гравитационного бройлерного рациона, показали, что MOS оказывает значительное стимулирующее воздействие на супрахоидальную бурсу, тиму и миндалины цехов, при этом вес супрахоидальной бурсы и тима увеличивается соответственно на 37,6% и 11,5% по сравнению с контрольной группой 16 / Чжоу юнхуа и др. показали, что добавление MOS 1 г-кг гравюры к основному рациону питания бройлеров значительно увеличило процент т лимфоцитов (р < 0,01) в крови. Чжоу юнхуа и др. показали, что добавление MOS 1 г-кг в базальный рацион кур-бройлеров значительно увеличило процент т лимфоцитов в крови (P < 0,05), а также увеличило процент т лимфоцитов в крови (P < 0,05).

Содержание IgG, IgG и IgM 7.

2.2.2 утки,

Zang Su-min et al. reported that adding 0.05%, 0.1%, 0.2% and 0.4% of mannan oligosaccharides to the diet of Cherry Valley ducks, respectively, showed that adding 0.1% of mannan oligosaccharides increased the final body weight of broiler ducks by 5.96%; the average daily weight gain increased by 6.65%; the utilization rates of dry matter, crude ash, and crude protein were increased by 9.21%, 22.09%, and 10.64%, respectively; the number of Lactobacillus spp. The number of Lactobacillus spp. increased significantly (P<0.05), and the number of E. coli and pH decreased significantly (P<0.05).08 Gao Shudong et al. showed that the addition of mannan oligosaccharides to diets significantly increased the daily weight gain of broiler ducks.9 In addition, the daily weight gain of broiler ducks increased by 6.65%, dry matter, crude ash and crude protein utilization increased by 9.21%, 22.09% and 10.64% respectively.

2.2.3 перепелка

Чжан айву и др. добавили MOS 0,5%, 1,0% и 2,0% к кормовому рациону (испытательные группы I, II и III), а вес сердца, печени и поджелудочной железы 50- дневной мясной перепели в испытательной группе I увеличился соответственно на 10,00%, 17,00% и 5,00% по сравнению с контрольной группой; Свежие веса bursa и свежие сердца II группы выросли на 13,04% и 11,00%, соответственно, по сравнению с контрольной группой; А вес мясных перепелов 35 - ти и 50- ти дневного возраста в III группе увеличился на 7,14% и 8,00%, соответственно, по сравнению с контрольной групповым20. Свежий вес bursa и heart в группе II был на 13,04% и 11,00% выше, чем у контрольной группы, в то время как в группе III свежий вес heart был на 7,14% и 8,00% выше, чем у контрольной группы в возрасте 35 и 50 дней, соответсвенно 20.

2.3 жвачные животные

2.3.1 крупный рогатый скот

< < бао ян& > >#39; и др. показали, что добавление 20 g-d-¹- head¹ of mannan oligosaccharides к базальному рациону молочных коров привело к значительным (P < 0,05) различиям в урожайности молока, процентной доле молочного жира и соматических клетках экспериментальной группы коров по сравнению с контрольной группой, а добавление определенного количества маннана oligosaccharides к рациону оказало позитивное воздействие на урожайность молока и традиционный состав молока молочных коров гольштейна. Тан сюэйин и др. показали, что средний процент молочного жира коров гольштейна увеличился на 0,48% с добавлением маннана олигосахаридов в рацион питания по сравнению с контрольной группой, со значительной разностью (P < 0,05)²2. Ван дингфа и др. провели анализ крови IgG и IgA телят до и после теста и обнаружили, что MOS значительно увеличили содержание крови IgG и IgG, в дополнение к значительному увеличению веса и экономической эффективности Франклин и др. показали, что питание MOS увеличивает специфические иммунные реакции на ротавирус в сух периодах ковров Селарс и др. сообщили, что маннан олигосахариды значительно увеличили ежедневный прирост веса и уменьшили заболеваемость телятами Кроме того, средний процент молочного жира у коров был на 0,48% выше, чем у контрольной группы. Селарс и др. сообщили, что маннанские олигосахариды значительно увеличили ежедневное увеличение веса телят и уменьшили коэффициент заболеваемости (P < 0,05) - - 5. Чжао сяоцзинь и др. изучили влияние 0,1% и 0,2% маннана олигосахарида на кишечную флору телят, и результаты показали, что в возрасте от 7 до 21 дня количество кишечной палочки в контрольной группе, в группе 0,1% и в группе 0,2% снизилось соответственно на 38,34%, 68,37% и 55,33% по сравнению с началом эксперимента; Количество бацилий молочной кислоты увеличилось на 12,20%, 41,25% и 17,49%; Количество кишечной палочки в контрольной группе, группе 0,1%, группе 0,2% увеличилось на 12,20%, 41,25% и 17,49% соответственно, а количество Lactobacillus spp. увеличилось на 17,49%. В возрасте 21-35 дней количество кишечной палочки в каждой группе сократилось на 16,82%, 24,14% и 32,39% соответственно по сравнению с началом эксперимента, в то время как количество лактобациллов увеличилось на 2,33%, 17,49% и 7,15%, соответственно. Можно видеть, что кишечная бактериальная флора телят была оптимизирована путем кормления маннано-олигосахаридами, соотношение количества кишечной палочки лактобациллуса и количества кишечной палочки увеличилось, и оно было увеличено в основном в группе 0,1% маннано-олигосахаридезов25 Были получены следующие результаты.

2.3.2 овцы

Линг баоминг и другие отметили, что добавление моо в рацион питания может в определенной степени улучшить ферментацию рума у растущих овец, однако механизм моо в деле совершенствования ферментации рума и соответствующее количество моо, которое должно быть дополнительно изучено Результаты этого исследования показывают, что MOS могут в определенной степени улучшить ферментацию рума при выращивании овец.

2.4 водные животные

Ма чжихон и др. провели сравнительный анализПробное кормление маннано-олигосахаридами в качестве кормовых добавок для карпа- да. Результаты исследования показали, что коэффициент питания, коэффициент относительного прироста веса, лейкоцитоз фагоцитоза, фагоцитический индекс, селезеночный индекс, и активность гемолизина сыворотки карпа увеличились на 1,52%, 34,03%, 32,47% ± 3,72%, 1,76 ± 0,17, 0,36 ± 0,02, и (51,53 ±3.31) U, а бактериальный процент сыворотки составил 27,85% ± 6,00%, 22,46% ± 4,88% в тестовой группе и контрольной группе, соответственно. 51.53±3.31 U, и бактериальный процент сыворотки карпа в испытательной группе и контрольной группе были 27,85% ± 6,00%, 22,46% ± 4,88%, соответственно, и маннань-олигосахариды могли улучшить показатели роста и неаллергической иммунной функции carp.128 Лю айцзюнь и др. сообщили, что добавление MOS 5 г-кг к корму тилапии увеличило скорость прироста веса на 19,2%, снизило коэффициент корма на 13,4% и снизило коэффициент сухого вещества на 13,4%. Лю айджун и др. сообщили, что добавление MOS 5 г-кг ¹ to tilapia feed увеличило скорость прироста веса на 19,2%, снизило коэффициент корма на 13,4%, а также повысило способность к усвоению сухих веществ и белков на 12,9% и 3,4%, соответственно, и что добавление маннана олигосахаридов значительно увеличило высоту, ширину и плотность поселка Ли юнлан сообщил, что MOS способствуют росту бифидобактерий и бациллов молочной кислоты, полезных бактерий водного кишечника. Добавление MOS 270 мг-кг в форегут, мидгут и индугут молодого карпа увеличило массовую концентрацию лактобациллов и бифидобактерий соответственно на 3,23%, 2,93% и 2,27% по сравнению с контрольной групповым30.

2.5 прочие животные

Гао цю и др. пришли к выводу о Том, что добавление моо значительно повысило абсорбцию питательных веществ в крысиной толстой кишке и кишечном тракте, а также улучшило функционирование толстой кишки Было показано, что сочетание моо и органического цинка значительно уменьшило глубину склепа, увеличило соотношение длины вилуни к глубине склепа и увеличило поглощение питательных веществ Кроме того, было также показано, что моо и органический цинк повышают активность ферментов тканей печени (дерн, кошка, GSH-Px и т.д.) у мышей. Ван фанг и др. показали, что MOS 1~2 г-кг ¹ может повысить активность ферментов тканей печени (дерн, кошка, GSH- px и т.д.), повысить уровень глутатиона (GSH), увеличить общую антиоксидантную способность тканей печени и скорость накопления гидроксильных радикалов (o), а также уменьшить содержание малодиалдегида (MDA) и уровень реактивного кислорода (ROS) у мышей; Мос был эффективен в уборке-o in vitro; И мос был эффективен в уборке-у мышей. MOS может эффективно удалять o-in vitro; У мышей добавление соответствующего количества моо может повысить антиоксидантную способность тканей печени и защитить печень от различных окислительных стрессов и damages2.

3. Резюме

Как новый вид безопасной, эффективной и экологически чистой кормовой добавки, маннан олигосахарид преодолевает проблемы нарушения кишечного микробного гомеостаза, лекарственной устойчивости и остатков лекарственных средств, вызванные длительным применением антибиотиков; Большое количество экспериментальных исследований показало, что маннан олигосахариды способны эффективно улучшить производительность животноводства, привести полезные кишечные бактерии занять доминирующее положение, и повысить иммунитет животных, но механизм действия MOS, а также влияние различных доз добавок требуют дальнейших исследований. Механизм действия военных наблюдателей и воздействие различных добавок нуждаются в дальнейшем изучении.

Справочные материалы:

[1] шао лян-пин, чжоу лун-цзян, фей чжэнь фан и др. Влияние маннана олигосахарида на иммунную функцию и антиоксидантные ферменты крови у свиней [J]. Журнал питания, 2000,22(1):82-84.

[2] чжоу хунли, чжан шируи, хе цзяньхуа. Влияние маннано-олигосахаридов на кишечную флору и противомикробные уровни отнятых поросят и показатели их роста [J]. Журнал хунанского сельскохозяйственного университета, 2002,28(2):135 — 138.

[3]Zaghini A,Martelli G,Roncada P,et al.Mannan oligosaccharides и aflatoxin B1 в кормах для кур-несушек: влияние на качество яиц,af- латоксины BI и M1 остатки в яйцах, и aflatoxin Bl уровни в liv- er[J].Poultryscience,2005,84(6):825-832.

[4] ражу MVL N,Devegowda G.Influence of esterified-glucoman- nan on performance and орган морфология, биохимия сывороток и гематология в бройлерах, подвергающихся воздействию индивидуального и комбинированного микотоксикоза (афлатоксин, ократоксин и т -2 токсин)[J]. Наука о птицеводстве великобритании,2000,41(5):640 — 650.

[5] юэ вэнь-бинь, че сян-жун, зан цзянь цзюнь и др. Влияние маннана олигосахарида на основную кишечную флору отнятых свиней [J]. Журнал лазерной биологии, 2002,11(4):247-250

[6] чжан кайюн, ма яньхе. Влияние маннана олигосахарида на показатели роста рано отнятых свиней [J]. Feed Research, 2003(3):1-3.

[7] у чун-зао, ван цзянь-хуа. Влияние молочных кислотных бактерий и маннана олигосахарида на рост и биохимические показатели сыворотки отнятых свиней [J]. Jiangsu Agricultural Journal, 2011,27(1):94-99.

[8] хуан чжун вэнь, лин йинцай, фэн дин-юань. Влияние маннано-олигосахаридов на микроэкологию кишечника [J]. Ветеринарная медицина и кормовые добавки, 2005,10(3):11-13.

[9] чэнь лисян, чэнь цзяньжун, тан лянси и др. Влияние уровня питания и маннано-олигосахаридов на объем лактации, рутинный состав молока и уровень гормонов в молоке свиноматок [J]. Журнал хунанского сельскохозяйственного университета, 2007,33(1):57 — 60.

[10] ван бин, хуан руйлин, хе цишуанг и др. Эффект применения галактоманна олигосахарида на кормящих свиней вместо антибиотиков [J]. Anhui agriculture Science, 2006,34(3):483 — 484 605.

[11] ю гуян, чжан у, чжэн чюнфан. Воздействие маннано-олигосахаридов на кишечные микроорганизмы в бройлерах [J]. Ветеринарная медицина и кормовые добавки,2004,9(5):7-9.

[12] чжан цзянь-бинь, че сян-жун, ян хуа. Влияние маннано-олигосахаридов на кишечную флору укладки цыплят вместо антибиотиков [J]. Feed Expo, 2010(5):29-30.

[13] чжан хайтан, ван яньжун, цуй яньхонг. Влияние маннано-олигосахарида, заменяющего флавомицин, на производительность и иммунную функцию кур-бройлеров [J]. Наука о сельском хозяйстве гуйчжоу, 2008,36(2)114 — 116.

[14] чэнь юнцзюнь, ван цюань, цянь юнцзюань и др. Влияние маннана олигосахарида (MOS) на иммунитет и работоспособность бройлера и кур-несушек [J]. Шанхайский информационный бюллетень по животноводству и ветеринарии, 2004(5):24-25.

[15]Sims M D,Dawson K A,Newman K E,et al.Effects of dietary mannan oligosaccharide,bacitracin methlendisalicylate,or both on the live performance and intestinal microbiology of turkeys[J]. Наука о птице,2004,83(7):1148 — 1154.

[16] ван цюань, чэнь юнцзюнь, цянь юнцзюань. Влияние маннана олигосахарида на иммунную функцию лимфоцитов периферической крови у кур [J]. Китайская ветеринарная наука и техника, 2002,32(1):28-29.

[17] чжоу юнхуа, чжан шируи. Влияние маннано-олигосахаридов на производительность, кишечные микроорганизмы и иммунную функцию куриц бройлеров [J]. Журнал хунанского сельскохозяйственного университета, 2003,29(3):15-17.

[18] зан су мин, сон ё н, ли тон чжоу и др. Влияние маннанских олигосахаридов на производительность, использование питательных веществ и секальную флору уток вишневой долины [J]. Животноводство и ветеринария, 2005,37(10):14-16.

[19] гао шудун, ма цзянь, чжи миншан и др. Изучение и изучение влияния пшеничных рационов питания, дополненных вамилозным ферментом и мальтогенным ферментом, на производительность бройлерных уток [J]. Угол подачи, 2003(4): 33-35.

[20] чжан айву, сюэ джун. Влияние маннана-олигосахаридов на внутренние органы мясной перепели [J]. Anhui agriculture Science, 2011,39(13):7814 — 7816.

[21] бао ян'an, Xing Shufang, Xu Qinglong. Влияние маннана олигосахаридов на урожайность молока и молочную рутину молочных коров гольштейна [J]. Feed Research, 2009(2):27-29.

[22] дарт сюэйн, цинь сюйи. Исследование влияния маннана олигосахарида и целлюлозного сложного фермента на уровень содержания молочных коров в молочном жире [J]. Современное животноводство и ветеринария, 2009(6):24-25.

[23] ван дингфа, хуан дайонг, ян бангфу. Влияние маннана олигосахарида на увеличение веса и иммуноглобулин крови у телят [J]. Шанхайский вестник животноводства и ветеринарии, 2005(6):18.

[24]Franklin ST,Newman M C,Newman KE,et al.immunity parame- tersofdry cows fed mannan oligosaccharide and trans- fer of immunity to телят [J Journal of Dairy Science,2005,88(2):766-775.

[25]Selars K,Burrill M,Trei J, и др. Джей дейри СИ. 1997,80(1):188.

[26] чжао сяоцзин, ли цзяньго, ли куфэн и др. Исследование воздействия маннана олигосахарида на фекальную флору телят [J]. Китайский журнал животноводства, 2007,43(5):31-33.

[27] линг баминг, ку мингрен, Лу дексун. Влияние маннана олигосахарида на руменную ферментацию растущих овец (in vitro)[J]. Feed Expo, 2006(9):6-7.

[28] Ma C-H, Jin J, Liu H-M. И др. Влияние маннана олигосахарида на рост и иммунную функцию карпа [J]. Anhui agriculture Science, 2010,38(3):1291 — 1292,1296.

[29] лю айцзюнь, лен сяцзюнь, ли сяоцинь и др. Влияние флавомицина и маннана олигосахарида на показатели роста и сыворотку неспецифический иммунитет ониолы тилапии [J]. Китай Feed, 2009(3):29-30.

[30] ли юнлан. Влияние маннана олигосахарида на кишечную флору и иммунную функцию молодого жиана карпа. Наука и технологии#39; ан: сычуанский сельскохозяйственный университет, 2004.

[31] гао ци-ю, ли ян-лан, сюй гуань-цуй и др. Влияние маннана олигосахарида на структуру кишечника SPF крыс [J]. Журнал Xinxiang Medical College, 2006,23(5):437 — 439.

[32] ван фан, лок говей, ши юньхуэй и др. Влияние маннана олигосахарида на удаление свободных радикалов и активность антиоксидантных ферментов в мышечной печени [J]. Журнал питания, 2007,29(5):466 — 469.