Каковы преимущества Astaxanthin для кормления рыб?
Астаксантин является кетообразным каротеноидом, который широко встречается в водорослях, креветках, крабах и других организмах- да. Обладает мощными антиоксидантными свойствами и различной биологической деятельностью, в Том числе противовоспалительными, противовоспалительными, гипертоническими и антиожиренными свойствами, и уже широко используется [1-3]. Астаксантин также играет ключевую роль в выживании, росте, воспроизводстве и развитии Рыбы [4-6].
As a powerful antioxidant, - астаксантинcan protect the cell membranes Соединенные Штаты америкиfish from the attack of reactive oxygen species иreactive nitrogen species, reduce Окислительное средствоstress, improve growth performance иstrengthen immunity [7]. At the same time, astaxanthin has a coloring effect, which can improve the muscle and skin color of farmed fish, enhance meat quality and commercial value, and is widely used in ornamental fish feed to meet the demand of ornamental fish дляbright body color [8]. Fish cannot synthesize astaxanthin По состоянию наtheir own. In the natural environment, fish obtain astaxanthin by eating algae rich in astaxanthin. Under artificial breeding conditions, astaxanthin can only be obtained by adding it to the feed [9]. Therefore, adding astaxanthin during the artificial breeding of fish can effectively promote the healthy growth of fish and improve the breeding efficiency.
1 физические и химические свойства астаксантина
Астаксантин — это производная каротеноидов, содержащая оксиген, содержащая длинную ненасыщенную соединенную систему и существующая в нескольких оптических изомерах. Его молекулярная формула C40H52O4 и его химическое название 3,3'- дигидрокс -4,4' — дион-бета-каротин [10, 11]. Астаксантин относительно стабилен, с температурой плавления около 215 градусов. Он жирорастворим и не легко растворим в воде [12]. Кроме того, астакзантин более растворим в кислотных эвтектических растворителях, чем этанол или ионно-жидкий хлорид фосфония (октил) [13]. Молекулярная структура астаксантина имеет длинную цепь конгированных двойных связей, и конец имеет как ненасыщенную кетонную группу, так и гидроксильную группу (рис. 1). Эти специальные структуры могут привлекать свободные радикалы или поставлять электроны свободным радикалам, тем самым удаляя свободные радикалы и демонстрируя тем самым отличные антиоксидантные свойства [14].
2 источника астаксантина
Currently, astaxanthin is mainly prepared by two methods: biosynthesis and chemical synthesis. Biosynthesis refers to the isolatiПо состоянию наand obtainment from crustacean shells, algae, yeast or prokaryotes. This source of natural astaxanthin has a clear structure, few by-products and is environmentally friendly. Products made using this method can be used as food additives [15]. Chemical synthesis methods can be divided into chemical semi-synthesis and chemical total synthesis. This method uses carotenoids such as canthaxanthin, lutein, zeaxanthin, or synthetic chemical materials to produce astaxanthin. Although astaxanthin prepared by semi-synthesis has high activity, the yield is relatively low. In contrast, the chemical total synthesis method is commonly used to produce industrial raw materials or feed because the materials are readily available and the overall yield is high [16].
2.1 микроводорослной синтез астаксантина
С развитием биотехнологии применение микроводорослей перешло от производства простой биомассы к производству ценных продуктов. Синтез астаксантина является одной из важных областей [17]. Зрелый гематококковый плювиалис (рис. 2) имеет высокий уровень астаксантина в клетках, а содержание астаксантина диких штаммов также может достигать 4% сухого веса клеток.
It has been identified as one of the promising sources of natural astaxanthin дляcommercial production [18]. Both it and Dunaliella salina can synthesize astaxanthin and the astaxanthin precursor β-carotene [19]. Haematococcus pluvialis can effectively reduce the isomerization of trans-astaxanthin through alkali treatment and saponification, thereby producing high-purity astaxanthin crystals [20]. In addition, Synechocystis can also be transformed into a factory for producing high-value astaxanthin. This microalgae also has the characteristics of being easy to cultivate, easy to genetically manipulate, and has a clear genetic background [21].
2.2 синтез астаксантина на основе йеста
В настоящее время основным источником дрожжей для синтеза природного астаксантина является фаффия родозима (рис. 3), и ее продукты astaxanthin широко используются в переработке кормов для рыб [15]. Исследования показали, что концентрация астаксантина, синтезированная дикими красными фаффийскими дрожжевыми станками, варьируется от 200 до 400 градиентов/г [22]. Мутагенез и скрининг могут быть использованы для получения красных штаммов фаффии с более высокой урожайностью [15]. Дрожжевые клетки Red phaffia богаты липидами, что позволяет равномерно распределять астакрантин в клетках и облегчает хранение [23]. Кроме того, этот дрожжи характеризуется его легким независимым ростом, быстрыми темпами роста и высокой плотностью выращивания. После экстракции астаксантина его питательные побочные продукты могут также использоваться в качестве питательных кормовых добавок [22].
2.3 химически синтезированный астаксантин
Chemical methods for the preparation of astaxanthin include total chemical synthesis and semi-synthesis. Total chemical synthesis is a method that starts from raw materials and synthesizes the target compound through a series of chemical reactions. Using α-ionone as the starting material, astaxanthin can be synthesized using the 2C15+C10 →C40 route [24].
Кроме того, существуют пути синтеза астаксантина через такие этапы, как гидролиз и изомеризация лютеинных эфиров, бромирование и окисление зааксантина [25] и окисление зааксантина окислителем для синтеза астаксантина [26]. Химический полусинтез обычно относится к методу, который начинается с природного продукта или его производных и частично преобразует его в целевое соединение с помощью ряда химических реакций. Этот метод включает в себя несколько этапов, таких как гидролиз лютеинных эфиров, изомеризация лютеина, а также бромирование и окисление зеаксантина [25]. Независимо от используемого метода химический синтез астаксандина требует точного контроля за условиями реакции и принятия мер по обеспечению эффективных и высокоэффективных результатов синтеза.
3 эффект астаксантина добавлен в корм для рыб
Астаксантин обладает многими биологическими функциями, и в рыбном хозяйстве его основными ценностями являются его стимулирующие рост, окраска, антиоксидантные и иммуноусиливающие эффекты.
3.1 улучшение показателей роста
Добавление правильного количества астаксантина может эффективно повысить показатели роста Рыбы. Различные виды рыб имеют разные требования к астаксантину. Ван цзюньхуэй и др. [27] обнаружили, что с увеличением количества астаксантина в корме, конечный вес, скорость прироста веса и конкретные темпы роста кои показали тенденцию к росту, а затем понижательную тенденцию. Когда добавленное количество составило 400 мг/кг, вышеуказанные параметры достигли наивысших значений. Яо цзиньмин и др. [28] пришли к выводу, что оптимальная доза для крупномасштабного грязевого карпа составляет 100 мг/кг.
Li Meixin et al. [29] showed that adding 100–200 mg/kg astaxanthin to the feed can significantly increase the growth rate and feed utilization rate of snakeheads. Zatˇkov et al. [30] reported that the weight gain rate, specific growth rate and feed utilization rate of channel catfish were significantly improved after they were fed a diet rich in astaxanthin. The mechanism of astaxanthin'. Стимулирующий рост эффект s можно отнести на счет его превосходных антиоксидантных свойств.
Исследования показали, что определенная доза астаксантина может поддерживать тело и#39; нормальный оксидантно-антиоксидантный баланс за счет накопления избыточных кислородных радикалов (рос) в клетках, тем самым повышая жизнеспособность и уменьшая стрессовую реакцию, и в конечном итоге способствуя росту [31 — 33].
Некоторые исследования также показали, что избыточная астаксантина может препятствовать росту Рыбы. Чжао фуян и др. [34] показали в исследовании zebrafish, что если астаксантин-добавки превышает 0,6%, то скорость прироста веса и удельный темп роста будут значительно ниже, чем у контрольной группы, а также значение роста длины тела также значительно ниже, чем у контрольной группы. Причиной ингибирования роста, вызванного высокими дозами астаксантина, может быть то, что избыточный астаксантин ускоряет рыбой 's метаболизм, тем самым исключив избыточные питательные вещества из организма и потребляя рыбу ' с энергия одновременно [27]. Подводя итог, можно сказать, что существует определенная зависимая от дозы зависимость между количеством добавляемого астаксантина и ростом Рыбы. Добавление правильного количества астаксантина может оказать положительное влияние на рост Рыбы. Более низкие дозы не оказывают существенного воздействия, в то время как более высокие дозы не оказывают существенного воздействия на рост и могут даже оказывать подавляющее воздействие.
3.2 улучшает цвет тела
В настоящее время в условиях интенсивного искусственного размножения, поскольку водные животные испытывают трудности с получением достаточного количества астаксантина извне, цвет их тела, как правило, светлый [35]. Для декоративных рыб цвет тела формируется за счет накопления в организме фитоэна и фитофлюэна. Эти два пигмента не могут быть синтезированы сами по себе и должны потребляться из пищи [4]. Поэтому корм, необходимый для разведения декоративных рыб, должен учитывать потребности их роста и развития и поддержания яркого цвета тела [36].
Wang Junhui et al. [27] found that after koi were fed with a diet containing different levels of astaxanthin for a period of time, the redness value (a* value), yellowness value (b* value) and carotenoid content of the skin of the group fed 400 мг/кг астаксантина were significantly higher than those of the control group, and the ornamental value was improved. For fish such as salmon and tilapia that are intended for human consumption, the redness value of the muscle is an important indicator of the quality of the fish [37]. Feeding food containing astaxanthin can significantly improve the color of the skin and muscles of food fish, giving them a more reddish hue. It can also increase the umami flavor of the meat to meet consumer demand [38].
Чжан чунян и др. [39] изучали влияние добавления различных доз астаксантина в корм на цвет тела и качество мяса радужной форели. Синтетический астаксантин, добавленный в корм группы Ast, составил 1,0 г/кг, в то время как экстракт плавиалиса Haematococcus, добавленный в корм группы HE, содержал 100 мг/кг астаксантина, что составляло 4,4 г/кг. Основным ежедневным пайком было питание контрольной группы. После 6 недель кормления значения мышц a* и b*, содержание астаксантина в тканях и содержание каротеноидов в сыворотке крови в группах Ast и HE. E.были значительно выше, чем в контрольной группе.
Результаты Gong Cuiping et al. [40] показали, что после приема различных объемов астаксантина содержание каротеноидов в различных тканях и органах красной тилапии увеличилось, а цвет тела Рыбы также стал более динамичным. Добавление 400 мг/кг астаксантина в корм значительно увеличило осаждение каротеноидов в тканях рыб. В исследовании Yi et al. [41], посвященном желтым кройкерам, содержание каротеноидов в коже значительно возросло благодаря питанию 90 мг/кг астаксантина.
Приведенные выше исследования показывают, что астаксантин оказывает значительное влияние на рост и цвет тела рыб. Добавление соответствующего количества астаксантина в корм может значительно увеличить содержание каротеноидов в рыбе, делая их цвет тела более ярким. Это также улучшает качество Рыбы, повышает вкус и улучшает экономические выгоды. Различные цвета кожи рыб в основном вызваны движением различных частиц пигментных клеток в организме. Среди них меланоциты являются ключевым типом клеток, который контролирует цвет кожи, глаз, плавников и других частей. В работе Frank et al. [42] показано, что астаксантин может влиять на цвет тела Рыбы, изменяя сигнальные пути меланоцитов, например, влияя на уровни циклических усилителей и стимулируя или препятствуя агрегированию или рассеиванию пигментов.
3.3 повышение антиоксидантной способности
Виды реактивного кислорода (рос) являются продуктами аэробного метаболизма живых организмов. Хотя умеренные суммы выгодны, избыточные суммы вредны [43]. Для снижения вреда организмы разработали сложную антиоксидантную защитную систему, частью которой являются неэнзиматические каротеноиды. Поскольку рыба богата полиненасыщенными жирными кислотами n-3 и поэтому очень чувствительна к воздействию реактивных кислородных видов [44], добавление астаксантина в корм имеет решающее значение для поддержания баланса тела и тела#39;s antioxidant defense system. Superoxide dismutase (SOD), catalase (CAT) and glutathione peroxidase (GSH-Px) are involved in the antioxidant process in fish, and their antioxidant effects are achieved by inhibiting and eliminating free radicals. In fish, free radicals react with lipids to cause a peroxidation reaction, producing malondialdehyde (MDA). MDA can be used as a common indicator of oxidative 3. Стрессand reflects the degree of oxidation in biological tissues. Wang Junhui et al. [27] found that supplementing the feed of koi carp with astaxanthin had a significant effect on the antioxidant capacity of the fish' печень.
Исследование показало, что при сравнении тестовой группы с постепенно увеличивающимися добавками астакзантина с контрольной группой активность сод, кошки и гш-пх в печени кои рыб постепенно увеличивалась, а затем снижалась. Когда добавочное количество достигло 400 мг/кг, оно было значительно выше, чем в других испытательных группах. Содержание MDA в печени кои карпа показало тенденцию сначала снижается, а затем увеличивается с увеличением содержания астаксантина.
When the addition amount was 400 mg/kg, the content was the lowest, indicating that adding 400 mg/kg astaxanthin can give koi carp the best antioxidant capacity. Yao Jinming et al. [28] showed that the antioxidant capacity of the liver and pancreas of the largescaled armored minnow can be significantly improved by adding the right amount of astaxanthin, as evidenced by the increased activities of SOD, CAT and GSH-Px, increased GSH content and reduced MDA levels. Li Meixin et al. [29] reached the same conclusion in their study of the antioxidant indicators of snakehead serum and liver. The above research results show that a moderate amount of astaxanthin can help enhance the antioxidant capacity of fish, remove oxygen free radicals, reduce oxidative stress, and prevent damage to the body.
Углубленный анализ показывает, что причиной, по которой астаксантин может оказывать антиоксидантные свойства, может быть то, что его химическая структура позволяет ему плотно соединяться с клеточной мембраной, поддерживать мембранную структуру и подвижность, а также действовать в качестве электронного «громоотвода», чтобы помочь электрону транспортировать и нейтрализовать, тем самым защищая клеточную мембрану от атак химически активных видов кислорода и химически активных видов азота [45], И он также может действовать синергически с другими антиоксидантами [46] для усиления антиоксидантного эффекта.
It should be noted that although astaxanthin can significantly improve the total antioxidant capacity of fish, astaxanthin itself is a strong antioxidant that can strongly scavenge free radicals in the body. Under certain conditions, it can lead to a decrease in the substrate of SOD, GSH-Px, etc. in the body, thereby significantly reducing the activity of antioxidant enzymes [47]. Sun Liu-juan et al. [48] found that after feeding on feed supplemented with astaxanthin, the total antioxidant capacity of blood parrot fish was enhanced, but the activity of SOD was reduced. According to Wang et al. [49], increasing the content of astaxanthin in the feed can lead to a varying degree of reduction in the activity of the antioxidant enzymes SOD and GSH-Px in the serum of fat carp. The reason for this phenomenon may be related to the antioxidant status in the fish, but the exact reason still needs to be further explored.
3.4 укрепление иммунной системы
Болезни в рыбоводстве характеризуются их быстрым распространением и сложностью лечения и стали важным фактором, сдерживающим развитие аквакультуры. Поэтому совершенствование иммунной системы рыб и снижение вреда, причиняемого организму патогенами, имеет особо важное значение для здорового и устойчивого развития рыбохозяйственной отрасли. Многочисленные исследования показали, что астаксантин может усилить иммунную систему организмов. Ван цзюньхуэй и др. [27] пришли к выводу, что с увеличением астаксантина активность LZM, ACP и AKP в сыворотке кои карпа и содержание C3 и C4 демонстрируют тенденцию сначала к увеличению, а затем к сокращению. При добавлении 400 мг/кг астаксантина вышеуказанные показатели достигли максимального значения и были значительно выше показателей контрольной группы без добавления астаксантина.
The results of Shubin et al. [50] showed that adding 100 mg/kg of astaxanthin to the feed significantly increased the serum IgG and IgС. О.levels of largemouth black bass. Lim et al. [51] found that after the blood of the largemouth bass was infected with Vibrio, feeding it with astaxanthin-enriched feed significantly increased the levels of C3 and C4 complement in the blood and significantly increased LZM activity. The above studies have shown that astaxanthin can enhance the immune function of fish and improve their resistance to disease. In studies on rats, researchers found that the mechanism by which astaxanthin enhances immunity is to inhibit mitochondrial dysfunction, thereby reducing oxidative damage, and to inhibit oxidative stress by blocking signal transduction and the activity of the transcription activator 3 (STAT3), thereby reducing inflammation and enhancing immunity [52, 53].
4 резюме и перспективы
Добавление астаксантина в корм для рыб не только улучшает цвет тела Рыбы, но и ее мощную антиоксидантную способность может защитить мембраны клеток рыб от активных веществ, тем самым косвенно улучшая показатели роста и иммунную способность. Таким образом, астаксантин имеет широкие перспективы применения и значительную экономическую ценность в области рыбоводства. Вместе с тем, несмотря на огромный потенциал астаксантина в области развития, в области практического применения все еще существуют некоторые пробелы и проблемы.
First, astaxanthin is unstable and isomerizes when exposed to light, heat, and oxygen. How to maintain its effectiveness and stability in production is an important research topic [54]. Second, there is no fixed rule for the optimal amount of astaxanthin to be added to the feed of various fish species. The concentration of astaxanthin required to achieve the best results varies for different fish species, and this requires a large amount of experimental data for research and determination. However, with the deepening of research on astaxanthin and the continuous improvement of aquaculture technology, its application in the fish farming industry will become more extensive and mature, and it can provide strong support for the sustainable development of the fish farming industry.
Ссылка:
[1]Sannasimuthu A,Kumaresan V,Anilkumasr S, и др. Свободная радикальная биология и медицина,2019(135): 198209.
[2] Лу к, ли х, зу и др Как микроводорослный метаболит для аквакультуры: взгляд на синтетические механизмы, методы производства и практическое применение [J]. Исследование водорослей,2021(54):102 178.
[3]Fakhri S,Abbaszadeh F,Jorjani M, и др
Эндотелиальный фактор роста, основанный на фармакологических аспектах: обзорное исследование [J]. Питание и Рак, 2021(73):1-15.
[4] фахри S,Abbaszadeh F,Dargahi L,et al. Astaxanthin:A mechanistic review on its biological activities and health benefits[J]. Фармакологические исследования,2018(136):1-20.
[5] сон и, Роберт м, вонг дж., и др. Метаболическая инженерия,2018(49):105 — 115.
[6]Ming X X X XX X XC,Fan X.Astaxanthin and its Effects in воспалительные реакции и воспаления — сопутствующие заболевания: последние достижения и будущие направления [J]. Молекулы,2020(22):42-53.
[7]Yoshimi K, Hiroshi,Kazuo K,et al. Морские ковры,2016(14):17-35.
[8] ван юй, сон цинхуй, цзя цзин и др. Питательная ценность свеклы Haematococcus и ее применение в кормах для рыб [J]. Feed Research, 2023, 46(17): 167-172.
[9] тянь зихао, чэнь цянь, лю ледан и др. Применение астаксантина в аквакультуре [J]. Feed Research, 2023, 46 (17): 142-145.
[10] хуан сяньган, чжан вэй, сунь цзянься и др. Исследование структуры и функции астаксантина и методов его извлечения и анализа [J]. Наука и технологии пищевой промышленности, 2009, 30(4): 355 — 359.
[11] чжао инюань, лю цзюнься, чэнь шутун и др. Исследование физиологической активности астаксантина [J]. Китайский журнал океанических лекарств, 2020, 39(3): 80-88.
[12] Лу цинпенг, цзинь сюэся, син цзянлян. Характеристики астаксантина и его применение в аквакультуре [J]. Научное рыбоводство, 2020, (11): 87.
[13] чэн хосин, чэнь шию, сянь фэн и др. Исследование физико-химических свойств кислотных эвтектических растворителей и их корреляции с растворимостью астаксантина [J]. Химические реагенты, 2023, 45(2): 106-113.
[14] рао а р, сарада Р, шилай а M D, и др. оценка гепатозащитной и антиоксидантной активности астаксантина и астаксантина эфиров микроводорослей-гематококковых плювиалисов [J]. Журнал пищевых продуктов Наука и техника,2015,52(10):6 703-6 710.
[15] юань X, Москва, Россия X Р, монколл ан G, и др. перепрограммирование Микрооргани sm s for - биосинтез. - астакс антин По адресу: via Метаболическая инженерия [J]. Prog Lipid Res,2021(81): 101 083.
[16] чэнь Дан, ван фэн, цзян шань и др. Научный прогресс в области химии и биосинтеза астаксантина [J]. Наука и техника пищевой промышленности. 2021, 42(21): 445 — 53.
[17] чэнь тао, тору шибата, ян фумей и др. Исследования по применению природного астаксинтина в Haematococcus pluvialis [J]. Технологии сельскохозяйственного машиностроения, 2023, 43(15): 76 — 77.
[18] лим К. К. С, я пас M, шариф M, и др. Обзоры в аквакультуре,2018,10(3): 738-739.
[19]Oslan S N H, Shoparwe N F,YusoffA H, и др Сценическая культура условия для производства природного астаксантина [J]. Биомолекулы,2021,11(2): 256.
[20] сун вейхон. Изоляция и подготовка астаксантина из различных источников и его соотношение структура-активность [D]. Циндао: китайский университет океана, 2015.
[21] диао дж., сон х., чжан л., и др. адаптация цианобактерии как новой платформы для высокоэффективного синтеза астаксантина [дж]. М. : метаб,2020(61):275 — 287.
[22]Stoklosa R J,Johnston D B,Nghiem N P. использование О, боже мой! Сок сорго Для производства астаксантина как биорефинизатора Co — продукт компании fhaffia rhodozyma [J]. Акг устойчивая химия и Инжиниринг,2018,6(3):3 124 — 3 134.
[23] юань X, Москва, Россия X Р, монк а лиан G, и др. перепрограммирование Микрооргани sm s for - биосинтез. - астакс антин По адресу: via Метаболическая инженерия [J]. Prog Lipid Res,2021,81 :101 083.
[24] пи шицин, чэнь синчжи, ху сипин и др. Синтез астаксантина [J]. Органическая химия, 2007 (9): 1 126-1 129.
[25] Dong X L. Application research on the preparation of astaxanthin from natural lutein molecules [D]. Циндао: циндао университет, 2006.
[26] Wang уF, Liu Y Q, Tao Z G и др. Исследование параметров процесса преобразования zeaxanthin в astaxanthin [J]. Исследования и разработки природных продуктов, 2014, 26 (2): 278 — 282.
[27] ван цзюньхуэй, сян цзяньли, чжан дуньян и др. Влияние астаксантина в кормах на рост, цвет тела, антиоксидантную способность и иммунитет кои карпа [J]. Журнал питания животных, 2019, 31(9): 4144-4151.
[28] яо цзиньминь, чэнь сюмей, лю минчже и др. Влияние астаксантина на рост, состав тела и антиоксидантные показатели ювенальной крупноразмерной грязевой карп [J]. Журнал северо-западного университета A&F, 2020, 48(1): 9-15.
[29] ли мейсин, лю силан, сюй шифэн и др. Влияние астаксантина на рост, антиоксидантные и иммунные функции змеиной головки (Channa argus)[J]. Кормовая промышленность, 2021, 42(16): 51-57.
[30] зат грауков I, сергеев, мурбан дж., и др. Обогащенная каротеноидным топливом микроалгалбиомасса как кормовая добавка для пресноводных декоративных растений: альбиническая форма В упаковке из филе Сома (силур гланис) [J]. Питание аквакультуры,2011,17(3):278 — 286.
[31] ниу тинтинг, ван фэн, у вэй и др. Антиоксидантный эффект астаксантина на эндотелиальные клетки пуповинной вены [J]. Китайский журнал пищевой науки, 2017, 17(6): 40-46.
[32]Lu Y P,Liu S Y,Sun H,et al. Нейрозащитный эффект of Как налог тонкий on H2O2 - вызываемая нейротоксичность in vitro И далее по теме В центре внимания Ишемия головного мозга in vivo[J]. Исследования мозга,2010,1360(1):40 — 48.
[33] сила а, камун Z, глисси Z, и др. Фармакологические отчеты,2015,67(2):310 — 316.
[34] чжао фуян, ван цзуньбо, дуан синюнь и др. Влияние астаксантина на показатели роста и ферментную активность зебрафиша [J]. Кормовые исследования, 2020, 43 (6): 48-50.
[35] ленг сяньцзюнь, ли сяоцинь. Прогресс в исследованиях по окраске водных животных [J]. Journal of Fisheries of China, 2006, 30(1): 138-143.
[36] ван жуй, фей сяохон. Исследования по применению четырех усилителей цвета в декоративной рыбе [J]. Beijing Fisheries, 2005(4): 37-38.
[37]Storebakken T,No H K. пигментация радужной форели [J]. Аквакультура,1992,100(1/3):209 — 229.
[38] юй сяодун, яо вейчжи, луан хуини и др. Развитие астаксантина и его применение в аквакультуре [J]. Feed Expo, 2005, (4): 42-45.
[39] чжан чунян, венденгсин, яо вэнсян и др. Влияние астаксантина из различных источников на показатели роста, цвет мяса и антиоксидантную способность радужной форели [J]. Журнал питания животных, 2021, 33(2): 1008-1019.
[40] гун кипин, чжу вэньбин, лю хаолян и др. Влияние астаксантина в кормах на содержание каротеноидов и скорость осаждения в различных тканях красной тилапии (tilapia red). Журнал шанхайского океанского университета, 2014, 23(3): 417 — 422.
[41]Yi X,Shen H,Li J,et al E and astaxanthin on Рост, цвет кожи и антиокислительная способность крупного желтого крокера Larimichthys crocea[J]. Питание аквакультуры,2018,24(1):472 — 480.
[42] франк - с, эббот. Эндокринная система (эндокринная система) Правила и положения Пигментация в рыбе [J]. Американский зоолог, 1973,13 (3): 885-894.
[43]Basioura A,Tsakmakidis I A,Martinez E A, et al. Влияние астаксантина в удлинителях на качество спермы и функциональные переменные замороженных -thawed boar semen[J] Animal репродуктивной науки, 2020(218):106 478.
[44]Wang L,Zhuang L L.Astaxanthin улучшает вызываемое липополисаханом-ридом субфертильность мышей через Nrf2 / HO-1 антиоксидантный путь [J]. Доза-реакция,2019,17(3):1-10.
[45] полупальто - J. - с, чун - J. Ч, ки м Y К и др Уменьшение объема ресурсов oxidative stress И воспаление и усиленная иммунная реакция в Люди [J]. Питание и питание Метаболизм,2010,7(10):1-10.
[46] кидд п. астаксантин, питательный материал клеточной мембраны с различными клиническими преимуществами и антистареющим потенциалом [J]. Altern Med Rev,2011,16(4):355 — 364.
[47] ма джей, ли й, чжан джей и др. Прогресс в исследованиях трех непитательных антиоксидантов у водных животных [J]. Водные науки, 2018, 37(3): 414 — 420.
[48] Sun L J, Wu L Y, Bai D Q, et al. Влияние астаксантина на цвет тела, рост и неспецифические иммунные показатели кроветворного попугая [J]. Northern Agricultural Journal, 2016, 44(1): 91-95.
[49]Wang YJ,Chien Y H,Pan C H. влияние пищевых добавок каротеноидов на выживание, рост, пигментацию и антиоксидантную способность веществ в s, гифессобриконе Callistus [J]. Аквакультура, 2006,261(2):641 — 648.
[50] шу б, гун й, чжан л и др. Влияние astaxanthin и β- каротин добавки в корм на рост, цвет тела, антиоксидантной способности и иммунных показателей largemouth черный бас [J/OL]. Фарфор: 1-8.
[51] лим К. К. С, я пас М, шариф м, и др Сибасс, ты опоздал Калкарифер против инфекции вибрио альгинолита [J]. Рыба и фрукты Иммунология моллюсков,2021(114):90-101.
[52]Han J H,Ju J H,Lee Y S и др. Научные доклады, 2018,8(1):1-10.
[53]Fang Q,Guo S,Zhou H,et al. Astaxanthin защищает крыс от раннего развития ожоговых ран, смягчая вызываемый окислительным стрессом инфл amm ati on and M it ochondri a-rel at e d apoptosis[J]. Научные доклады,2017,7(1):1-13.
[54] лю чжаоян, фан шилян. Исследования по применению астаксантина в здоровом животноводстве [J]. Научное рыбоводство, 2012, (3): 73 — 74.