Использование астаксантина в аквакультуре

Астаксантин — естественный красный каротеноидный пигмент, встречающийся в основном у ракообразных (крабов, раков, омаров и криля), лосося и других морских организмов и организмов, включая микроводоросли [1 — 3]. Рыба, как и другие животные, не имеет возможности синтезировать астаксантин де ново и должна получать его из пищи. Дикая рыба получает астаксантин от добычи, в то время как разведенная рыба получает его от корма. Природный астаксантин обладает противовоспалительными, антиоксидантными, окрашивающими, повышающими иммунитет, антиатеросклеротическими, антистареющими и другими эффектами и широко используется в функциональных пищевых продуктах, пищевой добавке, напитках, косметике и здравоохранении [4-6].

В последние годы астаксантин используется не только в продуктах для здоровья человека, но и в качестве кормовой добавки в животноводстве. Использование астаксантина в аквакультуре может повысить иммунитет животных, снизить смертность и уменьшить злоупотребление антибиотиками [7]. Кроме того, астаксантин играет ключевую роль в пигментации некоторых водных животных, таких как радужная форель и декоративная рыба [8]. В настоящем документе рассматриваются источники, физические и химические свойства и применение астаксантина в аквакультуре.

1 источник астаксантина

На главную страницуИсточники астаксантинаЭто простые микроорганизмы, особенно водоросли, дрожжи, грибы и бактерии. Астаксантин не может быть синтезирован биохимическим путем животными, но может накапливаться в тканях животных, поедая организмы, содержащие астаксантин. Натуральные экстракты астаксантина обычно содержат другие виды каротиноидов (грау-каротин, кантаксантин и лютейн), которые связаны с биологической активностью. Различные микроорганизмы и морские животные, включая микроводоросли, дрожжи, мышцы дикого и разводимого лосося, форели, криля и раков, сложные растения и некоторых птиц, являются естественными источниками астаксантина. Коммерческий астаксантин обычно химически синтезируется или производится ксантофилломицисом дендрорхоусом или гематококковой плювиалией [9-11]. Содержание астаксантина в диком лососе составляет 3-38 мг · кг -1, в то время как содержание астаксантина в радужной форели составляет 12-25 мг · кг -1 [12]. Поэтому филе из дикого и разводимого лосося могут использоваться в качестве пищевого источника астаксантина.

Под влиянием рыночного спроса и экологических выгод производство астаксантина из микроводорослей и практическое применение астаксантина в аквакультуре стали в последние годы научно-исследовательскими очагами. Исследователи изучили изоляцию богатых астаксантином микроводорослей и механизм, с помощью которого водоросли синтезируют астаксантин. В настоящее время гематококкокк плювиалис, хлорелла зофингиенс и Scenedesmus obliquus были определены как водоросли, способные производить естественные астаксантин (см. таблицу 1). Астаксантин или астаксантин-богатые микроводоросли широко используются в качестве кормовых добавок для лосося, креветок и декоративных рыб в целях повышения иммунитета животных, предотвращения злоупотребления антибиотиками и увеличения пигментации. Использование водорослей астаксантина для выращивания Рыбы считается жизнеспособным способом достижения устойчивого развития в аквакультуре.

2 физико-химические свойства астаксантина

Астаксантин-это каротеноидС молекулярной формулой C40H52O4 (относительная молекулярная масса 596.84), плотностью 1,071 г ·mL-1, температурой плавления 216 °C и температурой кипения 774 °C. Астаксантин имеет низкую растворимость в воде и легко растворяется в органических растворителях. Его растворимость в дихлорметане, хлороформе, диметилсульфоксиде и ацетоне составляет соответственно 30 мг ·mL-1, 10 мг ·mL-1, 0,5 мг ·mL-1 и 0,2 мг ·mL-1 [20].

Молекулярная структура астаксантина показана на рис. 1а. Она состоит из конъюгированной двойной связи в середине, состоящей из четырех изопреновых единиц, и гравюро-гидроксикантахсантинской кольцевой структуры с обоих концов. C-3 и C-3 &#- 39; У нас есть чиральные центры. Так как хиральный центр может иметь два конформации, два хиральных атомов углерода C-3 и C-3&#- 39; AstaxanthВ случае необходимостиможет существовать в форме B. Р.или - с,поэтому astaxanthВ случае необходимостиимеет три изомера: (3S, 3S&)#39;, (3R, 3R&)#39; и (3R, 3S&)#39; (см. рис. 1B~D), где (3S, 3С. S&)#39; и (3R, 3R ' являются энантиомерами, каждая пара энантиомеров имеет противоположное оптическое вращение, которое приводит к плоскости поляризованного света вращаться влево или вправо, в то время как (3R, 3S &)#39; изомер не имеет оптического вращения.

Астаксантин существует в двух состояниях: свободном и эстерифицированном. Синтетический астаксантин в основном находится в свободном состоянии (3S, 3R&)#39; в то время как природный астаксантин в основном находится в эстерифицированном состоянии (3S, 3S&)#39; и (3R, 3R&)#39.... Astaxanthin, производимая компанией RhodopseudomonПо состоянию на 31 декабряpalustris, в основном относится к странам СНГ (3R, 3R&)#39; дистер [21], и астаксантин, содержащийся в - гематококкpluvialis, в основном все-транс (3S, 3S&)#39.) моноэстер [22]. Как член семейства жирорастворимых каротеноидов, особая структура астаксантина может привести к следующим недостаткам в применении:

(1) гидрофобия. Астаксантин является нефтелюбимым веществом с низкой растворимостью в неполярных растворителях. Астаксантин имеет две гидроксиловые группы на каждом конце, и каждая гидроксиловая группа может взаимодействовать с жирной кислотой, чтобы сформировать эфир. Эстерифицированный астаксантин является более гидрофобным, чем свободный астаксантин [23].

(2) нестабильность: из-за структуры ненасыщенных конфузированных двойных облигаций мономеры астаксантина крайне нестабильны. Во время обработки и хранения они подвержены деградации и обесцвечиванию в результате изменения света, температуры и содержания кислорода, что приводит к потере ими своей первоначальной биологической активности и к ухудшению качества и цвета конечного продукта.

3 применение астаксантина в аквакультуре

Долгое время астаксантин добавлялся в корм для рыб в качестве естественного пигмента для выращивания лосося, брема и некоторых декоративных рыб. В последние годы все больше исследований показывают, что астаксантин оказывает положительное влияние на увеличение веса и иммунную реакцию водных животных, а применение астаксантина распространено на ракообразных и некоторые экономические виды рыб. Каротеноиды тесно связаны с большим числом физиологических функций растений и животных. Цвет большинства водных животных и тканей животных обусловлен наличием различных каротеноидов [24-25]. Являясь основным каротеноидом в тканях водных животных, астаксантин выполняет функции пигментации, антиокисления и антистресса.

3.1 влияние астаксантина на функцию окраски водных животных

Пигментация является важным процессом в выращивании лосося, форели, морского дна, декоративной Рыбы и ракообразных, и потребители предпочитают розовый лосось с высоким содержанием астаксантина. Кроме того, рыночная стоимость декоративной Рыбы частично зависит от цвета кожи или цвета мышц. Цвет водных животных играет важную роль в принятии потребителя, воспринимаемом качестве и цене. Выращиваемые ракообразные со светло-желтыми снарядами, как правило, имеют более низкую рыночную цену, чем ракообразные с красными или темно-оранжевыми снарядами. В большинстве случаев рыба не может синтезировать пигменты в своем организме, но может поглощать экзогенные пигменты. Таким образом, добавление астаксантина в корм может повысить красочность рыб и ракообразных и концентрацию астаксантина в их тканях [26-27].

Лосось, форель и морские породы широко распространены в тихом и атлантическом океанах и богаты белком, липидами, естественными пигментами и минералами, а также другими необходимыми питательными веществами для человеческого организма. На рынке пигментация кожи и мышц лосося, форели и морского леща в определенной степени определяет их качество. Однако в дикой природе сокращение рыбных ресурсов серьезно ограничило рыночное предложение этой Рыбы с высокой добавленной стоимостью. В целях обеспечения людей высококачественными водными продуктами быстрыми темпами развивается аквакультура лосося, форели и морского леща, что увеличивает рыночный спрос на корм для рыб.

Sigurgisladottir И др.[28]добавлено 88,6 мг · кг -1 астаксантина к корму атлантического лосося. Результаты показали, что содержание астаксантина в мышцах лосося экспериментальной группы составляет 2,0 ~ 2,5 градиента · кг -1, в то время как контрольная группа имеет 0,5 ~ 0,8 градиента · кг -1, что указывает на то, что добавление астаксантина увеличивает пигментацию в мышцах лосося. При выращивании радужной форели содержание астаксантина в корме для рыб было увеличено с 0 до 27,6 мг · кг -1, что привело к увеличению общего содержания каротеноидов и значения хрома в мышцах. При содержании астаксантина от 27,6 мг · кг -1 до 46,1 мг · кг -1 существенного увеличения общего содержания каротеноидов и значения хрома отмечено не было [29]. Основной причиной этого явления может быть то, что избыточный астаксантин не может быть полностью поглощен водными животными.

Чжан чунян и др. [30] добавили 1,0 г · кг -1 синтетического astaxanthin (Ast group) и 4,4 г · кг -1 экстракта Haematococcus 6. Плювиалис (pluvialis)(HE group, astaxanthin content 100 мг · кг -1) к радужной форели, а контрольной группой была басальная диета. После кормления в течение 6 недель выяснилось, что мышечная покрасненность и желтость значительно выше, чем у контрольной группы. А. курния и др. [31]показали, что содержание астаксантина в тканях поры, питаемой синтетическим и натуральным астаксантином, достигло 7,76 мг · кг -1 и 12,7 мг · кг -1, соответственно. С. жорж и др. [32]кормили радужную форель синтетическим астаксантином (AST group) и естественным астаксантином, полученным из Haematococcus pluvialis (ALG group), и результаты показали, что концентрации плазмы и мышечной астаксантина, насыщенность цветом мышц (C*), покраснение (a*) и желтость (b*) радужной форели AST group были выше, чем у группы AL- г,что указывает на то, что астаксантин из различных источников оказывает различное воздействие на пигментацию различных водных животных.

Jiang J. F. В то же время- эл. - привет.[33]добавляют астаксантин различных источников и концентраций (20, 50, 75 и 100 мг · кг -1) в корм клубники красного моря (Pseudochromis fridma⁃ nii) и проводят 42- дневный испытательный период для изучения воздействия астаксантина на окраску клубники красного моря. Результаты показали, что яркость Рыбы в группах кормила 75 мг · кг -1 и 100 мг · кг -1 натуральный астаксантин и 100 мг · кг -1 синтетический астаксантин был значительно ниже, чем у контрольной группы, а насыщенность цвета кожи была значительно выше, чем у контрольной группы, и оттенок всех групп (за исключением 25 мг · кг -1 натуральный астаксантин группы) значительно отличался от яркости контрольной группы.

Н. а. Белл и др. Ван Junhui et al. [35] изучили влияние различных уровней astaxanthin дополнение на цвет тела кои карпа (Cyprinus carpio L.), и обнаружили, что добавление astaxanthin не влияет на яркость цвета тела, и что красность (a*) и желтость (b*) цвета тела, как правило, сначала увеличивается, а затем уменьшается с увеличением astaxanthin дополнение. В дополнение к воздействию пигментации декоративной Рыбы, добавление астаксантина в корм также может повлиять на цветовое поведение декоративной Рыбы. Е. Льюис и др. [36]пришли к выводу, что добавление астакзантина в корм рыбе красной розы (Puntius titteya) может уменьшить их поведение при нападении на зеркало и выборе пары.

Многие виды ракообразных, такие как крабов-отшелов, красных крабов-королей, крабов, когтей, лобстеров-шпионов и креветок травы, потеряют или не получат пигментации, если они не будут потреблять достаточно каротиноидов [37-41]. Доказано, что пигментация банановых креветок наследуется [42], что позволяет предположить, что может существовать генетическая основа для удержания каротеноидных пигментов. Long X. W. et al. [43]обнаружили, что, когда взрослым китайским крабов-мышей (эриошейр синенсиз) скармливают диету, содержащую порошок Haematococcus pluvialis, насыщенный естественным астаксинтином, покраснение (a*) яичников и ракушек китайских крабов-мышей значительно возрастает с увеличением количества порошка Haematococcus pluvialis в рациона питания, в то время как светлость (L*) и желтость (b*) демонстрируют понижательную тенденцию. Этот результат соответствует хан т Haematococcus pluvialis порошок был добавлен в рацион питания, покраснение (a*) яичников и карапезов китайского краба-котенка значительно увеличился, в то время как яркость (L*) и желтость (b*) показали понижательную тенденцию. Этот результат соответствует результатам исследования хан т. и др. [44]на плавучем крабе (- портунус.trituberculatus).

3.2 влияние астаксантина на антиоксидантную функцию водных животных

Реактивные кислородные виды (рос) являются естественным продуктом аэробного метаболизма живых организмов и представляют собой тип свободного радикала, необходимый для выживания. Реактивные виды кислорода играют важную роль в регулировании некоторых видов клеточной деятельности, апоптоза, иммунной системы, транскрипции генов и т.д., но они крайне вредны для клеток. Для борьбы с постоянно генерируемым реактивным кислородом организм опирается на антиоксидантную защитную систему, которая включает в себя как энзиматические, так и неэнзиматические антиоксиданты. Ферзиматические антиоксиданты включают пероксидазу (оспа), супероксид дисмутазу (сод) и каталазу (кошка); Неэнзиматические антиоксиданты включают витамин е, витамин с, микроэлементы и каротеноиды. Рос сильно реагирует на липиды, белки и нуклеотиды. Реакция рос с полиненасыщенными жирными кислотами (PUFA) приводит к перекислению липидов. Эта реакция производит новые рос, которые продолжают реагировать с новой PUFA, что приводит к циклу окислительных реакций. Водные животные богаты n-3 PUFA/данные отсутствуют.и чрезвычайно уязвимы для атак кислорода и других свободных радикалов.

В последние годы астаксантин, эффективный антиоксидант, обнаруженный в некоторых морских организмах, привлекает все большее внимание исследователей [45 — 46]. Поскольку астаксантин содержит в своей молекулярной структуре соединенные двойные связи, гидроксильные группы и группы кето, он может реагировать на свободные от кислорода радикалы, чтобы собирать свободные радикалы и оказывать антиоксидантный эффект. Доказано, что астаксантин обладает высокой антиоксидантной активностью, в 10 раз превышающей уровень каротиноидов (таких как кантаксантин, грау-каротин и лютейн), в 65 раз превышающей уровень витамина с и в 100 раз превышающей уровень витамина е [47]. Антиоксидантная активность астаксантина проявляется в его способности улавливать единичный кислород, супероксид и гидроксильные радикалы, а также другие химически активные виды кислорода (ROS), химически активные виды азота (RNS) и ингибировать пероксирование липидов [48]. Астаксантин реагирует с жиром, чтобы сформировать астаксантин эфиры, которые могут эффективно ингибировать химическую реакцию между внутриклеточными кислородными свободными радикалами и ненасыщенными жирными кислотами, тем самым снижая окислительные повреждения ДНК и воспалительные реакции, улучшая организм 's иммунная реакция, и легко проникающие биологические мембраны таким образом, что минимизирует повреждения мембраны, тем самым защищая мембраны и жирные кислоты от липидного пероксирования.

- о, да. Z. барим и др. [49]добавляют витамин е (VE), витамин с (VC), витамин а (VA), астаксантин (AST) и грау-каротин (βC) в рацион дубайских раков (Astacus leptodactylus). В ходе эксперимента были измерены количество и размер яиц, а также содержание VE, VC, C,VA, AST, βC и malondial-dehyde (MDA) в тканях. Результаты показали, что количество и размер яиц в группах VE и AST были лучшими в каждой группе. В группе AST содержание MDA в печени, яичнике, жаберных тканях и мышечных тканях было самым низким, что указывает на то, что группа астаксантин обладает наибольшим сопротивлением. Yi X. et al. [50]показали, что добавление астакзантина в рацион желтых крокеров может повысить активность сода и GSH-Px в желтых крокеров в печени, тем самым увеличив общий уровень антиоксидантов в организме желтых крокеров.

- п. Ма с. л. и др. [51]изучили влияние добавления астаксантина в рацион Hali otus discus hannai на его антиоксидантную способность и обнаружили, что по сравнению с контрольной группой астаксантин группы Haliotis discus hannai сыворотки дерн и содержание кошек значительно возросло, в то время как содержание MDA значительно сократилось. Дерн и кошка отражают тело и#39;s способность компенсировать свободные радикалы, и чем выше содержание, тем выше антиоксидантная способность.

3.3 влияние астаксантина на устойчивость к стрессам и болезням водных животных

Высокоплотные аквакультурные операции часто подвергают животных различным физическим нагрузкам. Эти стрессы возникают в результате таких факторов, как ранжирование, транспортировка, обработка, вакцинация и скопление, которые приводят к тому, что животные находятся в состоянии сильного стресса и подавления иммунной системы, что может нарушить динамический баланс между водными животными и окружающей их средой, вызывая тем самым реакцию на стресс. Чрезмерный стресс приводит к физиологической дисфункции, снижению темпов роста, подавлению иммунной системы, подверженности болезням и даже смерти у водных животных [52 — 53]. Поэтому важно смягчить неблагоприятные условия, вызванные стрессом в исследованиях в области аквакультуры.

Раннее исследование показало, что ежедневное потребление рациона, содержащего 230-810 мг · кг -1 астаксантина в течение 4 недель, может повысить толерантность монодона пенея к высокой соленой среде [54]. Е.х. кьен и др. [55]отметили, что рацион питания с 360 мг · кг -1 астаксинтина в течение 1 недели может способствовать повышению толерантности к низким уровням растворенного кислорода в личинок п. монодона. После тестирования с различными стрессовыми факторами, монодон - пеней? - да.питался астаксантином (80 мг · кг -1) в течение 8 недель показал более высокую антиоксидантную защитную способность (более низкие уровни сd) и лучшую функцию печени (более низкие уровни AST и ALT), а также повышенную устойчивость к гиперосмотическому и тепловому стрессу.

Аналогичным образом, при питании 71,5 мг · кг -1 астаксантина в течение 8 недель монодон пенея демонстрировал поразительный антиоксидантный статус и устойчивость к стрессу аммиака на различных уровнях (0,02, 0,2, 2, 20 мг · л -1) [56].

Нижний сорт, AST и ALT указывают на то, что различные антиоксидантные ферменты в тканях - п.монодона потребляются после биологического стресса, повышая антиоксидантную способность и функцию печени. Вышеуказанные исследования показывают, что астаксантин является очень важным питательным веществом для п. ваннамея в условиях физиологического стресса, вызванного внешним давлением. К. супаматтая и др. [57]кормили п. ваннамея кормом, содержащим 200-300 мг · кг -1 экстракта дунальеллы салины, могли выдерживать низкую кислородную среду 0,8 -1 мг · л -1 и значительно противостоять синдрому вирусного белого места (ВВСМ). Было также обнаружено, что ткань монодона пенея, питаемого экстрактом дуналиэллы салины, имеет более высокое содержание астаксантина, что указывает на то, что они могут быстро преобразовать астаксантин-грау в астаксантин.

Аналогичные результаты были получены в ходе многочисленных исследований по литопенаю ваннамею и другим ракообразным. Чжанг дж. И др. [58]обнаружили, что литопенаеус ваннамей (с пищевой добавкой 125-150 мг · кг -1 astaxanthin, в дополнение к упрегуляции экспрессионных уровней гипоксийно-индуцируемого фактора (HIF-1α), цитозолического марганцевого супероксида dismutase (cMnSOD) и mRNA CAT, также увеличил общую антиоксидантную способность и устойчивость к гипоксическому стрессу (0,8 мг · л -1). В связанном с этим исследовании Niu J. et al.

Ван х. и др. [60]далее обнаружили, что после приема 80 мг · кг -1 астаксантина в течение 4 недель пеней ваннамей имел высокую устойчивость к вирусу синдрома белого мета (ВВСМ), что было связано с улучшением гемолимфоиммунных показателей, таких как фагоцитная активность, общее количество клеток крови, фенолоксидазная активность сыворотки, антиоксидная активность сыворотки, лизозимовая активность сыворотки и антибактериальная активность сыворотки. После 10 недель кормления в рационе, содержащей различные дозы астаксантина (50-150 мг · кг -1), японские креветки (Macrobrachium nipponense) могут выдерживать различные физические и химические нагрузки, такие как аноксическое питание (0,5 мг · л -1), аммиачное напряжение (0,75 мг · л -1) и холодное напряжение (0 ℃) [61]. Jiang X. D. et al. [62]добавлено 30-120 мг · кг -1   В отношении порошка гематококка плювиалиса и было установлено, что по сравнению с контрольной группой (без добавления порошка гематококка плювиалиса) смертность каждой добавленной группы значительно снижается при возникновении стресса аммиака. Было также установлено, что выражение антиоксидантных ферментов генов в каждой группе с добавленными Haematococcus pluvialis значительно улучшилось, что может быть связано с его низкой смертностью.

Астаксантин также оказывает благотворное влияние на рыбу. Лю ф. и др. [53]изучали влияние пищевого астаксантина на устойчивость пелтеобагруса фулвидрако к стрессу. При кормлении в дозе 80 мг · кг -1 в течение 60 дней, это может увеличить содержание HSP70 печени, сода печени, сыворотки общего белка (TP) и толерантность к острому стрессу скопления. Последующие испытания атаки протеуса мирабилиса показали, что астаксантин может значительно снизить смертность пелтеобагруса фулвидрако под давлением толчков. Доза в течение 60 дней может увеличить содержание HSP70 печени, печень дерн, сыворотки общего белка (TP), и толерантность к острому стрессу перенаселенности. Последующее испытание протеусом мирабилисом показало, что сопротивление астаксантинской группы значительно повысилось. Li M. Y. et al. [63]изучали влияние добавки астаксантина на окислительный стресс, вызываемый липополисахаридом, и иммунную реакцию в ChannA/данные отсутствуют.argus и пришли к выводу, что астаксантин может увеличить экспрессию белков теплового удара HSP70 и HSP90 и генов-рецепторов глюкокортикоидных рецепторов.

Другое исследование также показало, что астаксантин препятствует производству провоспалительных цитокинов, препятствуя сигнальной дорожке NF-κB и 1. MAPKs[64]. Xie J. J. et al. [65]добавляют порошок гематококкового плувиалиса в рацион золотого помфрета (Trachinotus Оварис (ovatus)с порохом гематококкового плувиалиса в течение 8 недель, а затем подвергают острой гипоксии стресс-тесту (1,2 мг · л -1). Было установлено, что группа, дополненная порошковым гематококковым плувиалисом, смягчила воспалительную реакцию, активировав неф2, сигнализирует о Том, что путь противостояния NF-κB сигнализирует путь.

4. Резюме

Астаксантин является одним из важнейших каротиноидов в природе и привлекает внимание животныхдиетологов из-за его широкого спектра воздействия на здоровье водных животных. Добавление астаксантина в рацион водных животных не только улучшает цвет тела животных, но и обладает сильными антиоксидантными, антистрессовыми и антиболезнетворными функциями, а также защищает клетки и ткани водных животных от стресса и окислительных повреждений. С крупномасштабным и интенсивным развитием China'. В аквакультуре применение астаксантина будет становиться все более и более распространенным.

Ссылка:

[1]    Бегум х, юсофф ф м, банерджи с и др. Наличие и использование В виде пигментов Из российской федерации Микроводоросли [J]. В важнейших проблемных областях Отзывы о компании in  - продукты питания Наука и питание, 2016, 56: 2209-2222.

[2]   Трин и сергей а, бенте р и др. Транскриптомея и функциональные передышки к отсутствию астаксантина в атлантическом лососе скармливают низкоморские рационы питания [J]. Сравнительная биохимия и физиология-часть D: Ge⁃ nomics иProteomics, 2021, 39: 110841.

[3]   Барредой л, гарсия-эстрада с, косалкова к и др. Биосинтез astax⁃ anthin в качестве основного каротеноида в гетеробазидиомицетных дрожжей Xanthophyllomyces dendrorhous[J]. Журнал грибов, 2017, 3: 44.

[4]   Йошими к, хироши, казуо к. потенциальные антиатеросклеротические свойства астаксантина [J]. Морские лекарства, 2016, 14: 35.

[5]   Келли F, Mi B K, норка уB, и др. Astaxanthin оказывает антиинфламное параметрическое и антиоксидантное воздействие на макрофаги в NRF2-depen⁃ dent и independent ⁃ [J]. Журнал пищевой биохимии, 2018, 62: 202 — 209.

[6]   Bilge E, SakineTT, Fadime A K, и др. Оценка антиоксидантных свойств актуальных составов астаксантина как антистареющих продуктов [J]. Вестник косметической дерматологии, 2019, 18(1): 242-250.

[7]   Алишахи м, карамифарм, месбах м. влияние астаксантина и дуналиеля ⁃ la salina на каротеноидные ткани кожи, показатели роста и иммунную реакцию Соединенные Штаты америки Астеронот (Astronotus)  Оцеллятус [J]. 3. Аквакультура Международный, 2015, 23: 1239-1248.

[8]   Д/дС. О.R, Sanaz K, Kyung H C, и др. Влияние включения астакса гравантина в рацион питания на рост, пигментацию мышц и антиоксидантную способность ювенальной радужной форели (Oncorhynchus)mykiss) [J]. Профилактика и лечение Пищевая наука, 2016, 21(3): 281 — 288.

[9]   Derya D, Ali C D. оптимизация биопроцесса пигмента астаксантина путем градирования четырех различных дрожжевых видов с использованием пшеничных отходов [J]. Биокатальный парадиз и сельскохозяйственная биотехнология, 2016, 7: 1 — 6.

[10]   - фатима, - г,с, анимеш Д, махендра т и др. Интенсивный зеленый pro⁃ tiПо состоянию наСоединенные Штаты америкиastaxanthin from Haematococcus pluvialis[J]. Переработка пищевых продуктов и биопродуктов, 2016, 99: 1-11.

[11]   Шанг м м, дин в, чжао и др. Улучшенный astaxanthin pro⁃ ductiПо состоянию наот Haematococcu spluvialis с использованием butylated hydroxyani⁃ sole[J]. Журнал биотехнологии, 2016, 236: 199-207.

[12]   Джеймс а, Филипп б, Пол б и др. Обзор исследований генотоксичности и канцерогенности крыс с помощью астаксантина [J]. Нормативная токсикология и фармакология, 2016, 75: 5-19.

[13]    Мао (фр.) X X X X - м, У т, Солнце и Солнце D. Д. - Z, et al.  Дифференциальные реакции зеленой микроводорослей Chlorella zofingiensisПо адресу:голодание различных питательных веществ для нефти и astaxanthinproduction[J]. Биоресурсная технология «⁃ nology», 2018, 249: 791 — 798.

[14]   Chen J H, Liu L, Wei D. увеличение производства астаксантина хромохлором зофингиенсизином a  На базе микросхем Культура и искусство В рамках системы - высокий уровень 1. Свет  Облучение [J]. 1. Биоресурсы - технологии,  2017, 245: 518 — 529.

[15]   Chen J H, Wei D, Lim P E. усиленное совместное производство астаксантина и Организация < < липидс > > По состоянию на 31 декабря - зеленый цвет Организация < < микроалга > > Хромохлорис зофингиенсис: выбран - фитогормоны as  Положительное сальдо (в процентах) Стимуляторы [J]. Технология биоресурсов, 2020 год,295: 122 — 242.

[16]   Чжан з, хуан дж х, сун д з и др. Двухступенчатая обработка для pro⁃ duction Соединенные Штаты америкиastaxanthin в Chlorella zofingiensisusing запатентованный безэнергосвободный вращающийся плавающий фотобиореактор (RFP)[J]. Технология биоресурсов, 2017, 224: 515 — 522.

[17]   Li 1. О- м,Chen Z, Huang Q. экзогенная гравитационная аминобутиновая кислота pro γ motes биомасса и производство astaxanthin в Haematococcus plu⁃ vialis[J]. Исследования водорослей, 2020, 52: 102089.

[18]   Одер H C R, ана G I, леонардо R, и др. Добавлена оценка биосинтеза астаксинтина Haematococcus pluvialis, выращенного в культурной среде Соединенные Штаты америки А. кассава Сточные воды [J]. Международная организация труда Биологическое ухудшение и Биодеградация, 2021, 163: 105269.

[19]   Ё н э кей, ибрагим а м, накён л и др. Расширение производства астаксана методом гравитационного гематококкового плувиалиса с использованием магниевого ами гравитаноклая  Наночастицы [J].  1. Биоресурсы  - технологии,   2020,   307:123270.

[20]   Pan L, Wang H Y, Gu К. К.R. Nanoliposomes as vehicles for astax⁃ anthin: ization, in vitro release assessment иstructure [J]. Молекулы, 2018, 23: 2822.

[21]   Ван дж., лю ш., ван г., и др. Xanthophyllomyces dendrorhous de⁃ rivedastaxanthin регулирует липидный обмен веществ и микробиоты кишечнике у тучных мышей, вызванных высоким содержанием жиров [J]. Морские наркотики, 2019, 17: 337.

[22]    Md  С. О. R  S,  Лианг (Liang) Y  M,  - джей джей. C,  et  al.  Astaxantin-производство зеленых микроводорослей Haematococcus Pluvialis: от одноклеточных до высокоценных коммерческих продуктов [J]. Наука о растениях, 2016, 7: 531.

[23]   Сусуму х, сачико у, асако и др. Удаление гидроксил рад гравиталов в водном растворе астаксантином, инкапсулированным в липосомах [J]. Биологического оружия и * * * * В фармацевтической промышленности [электронный ресурс] 2012 год, 35(12): 2238-2242.

[24]   Ясмен и др., мехмет с, махмут и др. Сезонные изменения общего содержания каротеноидов диких морских креветок (Penaeus semisul⁃ catus и Metapenaeus monoceros), обитающих в восточной части ⁃ ranean[J]. Пищевая химия, 2004, 88: 267 — 269.

[25]   Райан джей ю, брайсон кей джи, Скотт р. с., и др. Красная окраска в граукьялинишрипе:  - каротеноиды,  В генетическом плане  - вариация,  и  Гены кандидатов [J]. Биологический вестник, 2020, 238: 119 — 130.

[26]   Ногейра н, Канада - п,кабоз J, и др. Влияние различных уровней синтетического астаксантина на рост, цвет кожи и липидный метаболизм коммерческого размера red pory(Pagruspagrus)[J]. Корм и технологии для животных, 2021, 276: 114916.

[27]   Wu X G, Zhao L, Long X W, et al. Влияние диетических добавок гравюры порошка Haematococcu spluvialis на развитие гонадаля, окраску и антиоксидантную способность взрослых китайских комаров-кров (эриохир синенсис)[J]. Исследования аквакультуры, 2017: 1-10.

[28]    Sigurgisladottir S, Parrish C C, Lall S P, et al. Последствия astaxan⁃ thin ⁃ natural tocopherolsandon Atlantic salmon (Salvo sal ar) fillet quality[J]. Международная организация по исследованию проблем продовольствия, 1994 год, 27. : 23-32.

[29]   Md M R, Sanaz K, Kyung H C, и др. Влияние включения астаксантина в рацион питания on  Экономический рост, 1. Мышцы 3. Пигментация и Антиоксидантная способность Соединенные Штаты америки По делам несовершеннолетних - радуга! Форель (форель) (Oncorhynchus  Мой поцелуй (J). Пред. ПТН, 2016, 21(3): 281-288.

[30] чжан с, Дэн X, яо W и др. Влияние астаксантина из различных источников на показатели роста, цвет мяса и антиоксидантную способность радужной форели [J]. Журнал питания животных, 2021, 33(2):1008-1029.

[31]     Курния а, сато с, курамото д и др. Влияние различных astaxan⁃ thinsources на пигментацию кожи красного моря Bream (Pagrus ma⁃ jor)[J]. Икв аквакультуры, 2007, 55(3): 441-447.

[32]    Жорж с, Мария м м, руй м. пигментирующая эффективность астаксана гравитационного корма радужной форели Oncorhynchus mykiss: эффект диетического астаксантинанда - липид. Источники [J]. Аквакультура, 2006 год, 257. : 429- 436.

[33]    Цзян дж ф, вальдо н о, алекс а, и др. Повышение окраски морской декоративной Рыбы псевдохромифридмани с использованием природных и синтетических источников астаксантина [J]. Исследование водорослей, 2019, 42:101596.

[34]   Белл н а, Джеффри с, маисаак джей л и др. Влияние лангуста на показатели роста и пигментации обыкновенной золотистой Рыбы (Carassiusauratus)[J]. Аквакультура отчеты, 2019, 13: 100187.

[35] ван цзюньхуэй, сян цзяньли, чжан дуньян и др. Влияние астаксантина в кормах на рост, цвет тела, антиоксидантную способность и иммунитет кои карпа [J]. Журнал питания животных, 2019, 31(9): 4144-4151.

[36]    Льюис и, Кристиан с, Донна с и др. Поведенческое воздействие sup⁃ pleдиеты с синтетическим и естественным источником astaxanthin в декоративной рыбе (Puntius titteya)[J]. Наука о животных, 2016, 182: 94 — 100.

[37]   Рене с, женевьева н с. влияние различных диетических каротиноидов на пигментированную структуру краба-отшелуха Clibanariuserythropus Латрей (ракообразные: декапода) [J]. Лагерь биохимиол, 1995, 11(4): 533-538.

[38]   Daly B, Swingle J S, Eckert G. Питание аквакультуры, 2013, 19(3): 312 — 320.

[39]   Lai V (Lai V) H,  Нгуен т. D P, Michael F T. влияние астаксантина и холестерина на рост, выживание и пигментацию взрослых лобстеров-шпинилий, Panulirus ornatus (Decapoda, Palinuridae)[J]. AACL Bio⁃ flux, 2010, 3: 261 — 268.

[40]   Катрин к, керли х, мари л и др. Воздействие двух различных кормов на рост, цвет карапеса, зрелость и смертность мартенованных раков (Procambarus fallax f. девственность)[J]. Интернациональная аквакультура, 2015, 23: 185 — 194.

[41]    3. < < бхавсар > > S  P,  Сингх (США) K  G,  - шарма. L  P.  На микробной основе Производство и продажа Из астаксантина пигмента с использованием Mrineshrimp[J]. Индийский журнал Geo- морская наука, 2016, 45(2): 352-357.

[42]   Нгуен н н, Джейн кью, даниэль п и др. Наследственность цвета тела и его генетическая связь с морфометрическими чертами банановых креветок (Fenneropenaeus merguiensis)[J]. BMC Genetic, 2014, 15: 132.

[43]    Long X W, Wu X G, Zhao L, et al. Воздействие диетических добавок с порошковыми клетками гематококка на окраску, развитие яичников и антиокислительную способность взрослых женщин ци-одува - котенок. Краб, эриохейр синенсис [J]. Аквакультура, 2017, 473:

[44]     Хан т, Ли X Y, ван джей ти и др. Влияние пищевых добавок astaxanthin (AX) на пигментацию, антиоксидантную способность и питание 1. Стоимость of  - на пляже - краб, Portunus  Trituberculatus [J]. Аквакультура, 2017, 490: 169 — 177.

[45]    Basioura A, Tsakmakidis I A, Martinez E A, и др. Эффект astax⁃ anthin в удлинители на качество спермы и функциональные переменные заморожены-оттепели  - кабан.  Сперма [J].  - на животных.  B. размножение документов  Наука, 2020, 218: 106478.

[46]   Ван л, жуанг л л. астаксантин улучшает липополища Субфертильность с помощью мыши Nrf2 / ho1 антиоксидантный путь [J]. Доза-реакция, 2019, 17(3): 1-10.

[47]   - юсри? - да. M  A  N. антиоксидантная деятельность астаксантина и связанных с ним каротеноидов [J]. Журнал сельскохозяйственной и пищевой химии, 2000, 48: 1150 — 1154.

[48]   Сорин у, амирхосейн с, Мария с с и др. Липидный профиль и изменения глюкозы после добавления астаксантина: систематическое re⁃ view И мета-анализ рандомизированных Контролируемые испытания [J]. Arch Med Sci, 2015, 11: 253-266.

[49]    Барим о з, сахин х. влияние диетических антиоксидантных онуварных яйцеклеток и уровней витамина е, с, а, астакзантина, грава-каротина и оксидатифтра в тканях Astacus leptodactylus (Eschscholtz) dur⁃ ing β [J]. Молекулярная биология, 2016, 62(14): 1-10.

[50]    Йи х, шэнь х, ли джей и др. Влияние диетического витамина е и астаксана ⁃ thin на рост, цвет кожи и антиокислительную способность большого yel⁃ low croaker Larimichthy scrocea[J]. Питание аквакультуры, 2017:

1-9.

[51]    Ма с л, ли х х, хуан д, и др. Влияние диетических хрома и астаксантина на показатели роста, анти-окислительные способности гравюра, и устойчивость к тепловому стрессу abalone Haliotis discus hannai [J]. Международная организация аквакультуры, 2021, 29: 911 — 924.

[52]   Нику м, фалахаткар б, алекхоршид м и др. Физиологические реакции стресса в кутум рутилус фрисии кутум, находившийся в плену [J]. Международные исследования водных ресурсов, 2010, 2: 55 — 60.

[53]    Лю ф, ши х з, го к и др. Влияние astaxanthin и emodin на рост, устойчивость к стрессам и болезням желтых сомов (Pelteobagrus fulvidraco) [J]. Иммуноло Рыбы и моллюсков, 2016, 51: 125 — 135.

[54]    Мерчи джи, контара е, лавенс п и др. Эффект витамина с и астаксантина on  3. Стресс и Устойчивость к заболеваниям Креветок post larval tiger, Penaeus 1. Монодон(Fabricius) [J]. Исследования в области аквакультуры, 1998, 29: 579-585.

[55]    Chien Y H, Pan C H, Hunter B. устойчивость к физическим нагрузкам По запросу: Penaeus  1. Монодон По делам несовершеннолетних Федеральный резервный фонд Питание по системе Дополнительная информация С astaxanthin[J]. Аквакультура, 2003, 216: 177 — 191.

[56]   Pan C H, Chien Y H, Hunter B. стойкость пенея к стрессу аммиака monodon  Фабрициус ювенальный Федеральный резервный фонд Питание по системе Дополнен астаксантином [J]. Журнал экспериментальной морской биологии и экологии, 2003, 297: 107 — 118.

[57]    Супаматтайя к, кириратником с, буньяратпалин м и др. Влияние экстракта дунальеллы на показатели роста, состояние здоровья, иммунитет Ответ на вопрос и По борьбе с заболеваниями - сопротивление; in  Черный цвет кожи - тигр Креветки (Penaeus monodon)[J]. Аквакультура, 2005, 248: 207 — 216.

[58]    Чжан джей, лю и джей, тянь л х и др. Влияние диетического астаксантина на рост, антиоксидантную способность и генную экспрессию у белых креветок тихого океана литопенаев ваннамей [J]. Питание аквакультуры, 2013 г. 19:917-927.

[59]   Ню-джей, тянь-л-х, лю-й-джей и др. Влияние диетического астаксантина на рост, выживание и стрессоустойчивость креветок после личинок, Litope⁃ naeus Ванамей [дж].Журнал по темеof В настоящее времяWorld Aquaculture Society, 2009, 40: 795-802.

[60]    Ван х, дай а, лю ф и др. Влияние диетического астаксантина на иммунитет - ответ: - сопротивление; По адресу: Цвет: белый Место на карте С синдромом приобретенного иммунодефицита В случае вируса И транскрипция генов антиоксидантного фермента в тихоокеанских белых креветках Litopenaeus vannamei[J].  Иран (исламская республика) Journal  of  Рыболовство и рыболовство Наука, 2015, 14: 699-718.

[61]   Тискар б, сейдави а, понсе-палафокс дж и др. Влияние астаксинтина на устойчивость ювенальных креветок Macrobrachium nipponense (Decapoda: Palaemonidae) к физическому и химическому стрессу [J]. Re: да, конечно.

[62]    Jiang X D, Zu L, Wang Z Y и др. Микроводоросль astaxanthin может улучшить антиоксидантную способность, иммунитет и рециркуляцию аммиака ⁃ of juvenile Chinese mitten crab, Eriocheir sinensis[J]. Иммунология рыб и моллюсков, 2020, 102: 499 — 510.

[63]    Ли м и, го в и, го г л и др. Влияние астаксантина на липополисахарид-индуцированный Окислительное средство - стресс, Иммунитет от болезней Реакции и генное выражение, связанное с glucocorticoid рецептором (GR) в Channa argus[J]. Аквакультура, 2020, 517: 734 — 816.

[64]   Li M Y, Sun L, Niu X T, et al. Астаксантин защищает липополисак инвазивной воспалительной реакции в чанна Аргус путем ингибирования NF-граб и MAPKs  3. Сигнализация Пути [J]. И рыбные запасы Иммунология моллюсков, 2019, 86: 280 — 286.

[65]    Се джей джей, фан х х, он х с и др. Исследование механизма синтетического астаксантина and  Haematococcus  pluvialis   По улучшению положения женщин the  Показатели роста и антиоксидантной способности под острым гипоксическим стрессом * золотой цвет * Помпано (трахинот) ovatus)  and  Повышение эффективности управления Анти -in⁃ flammatory По запросу: 3. Активация системы Nrf2-ARE Путь к успеху to  - антагонизм. Путь NF-κB [J]. Аквакультура, 2020, 518: 657 — 734.