Использование астаксантина в аквакультуре

Астаксантин — естественный красный каротеноидный пигмент, встречающийся в основном у ракообразных (крабов, раков, омаров и криля), лосося и других морских организмов и организмов, включая микроводоросли [1 — 3]. Рыба, как и другие животные, не имеет возможности синтезировать астаксантин де ново и должна получать его из пищи. Дикая рыба получает астаксантин от добычи, в то время как разведенная рыба получает его от корма. Природный астаксантин обладает противовоспалительными, антиоксидантными, окрашивающими, повышающими иммунитет, антиатеросклеротическими, антистареющими и другими эффектами и широко используется в функциональных пищевых продуктах, пищевой добавке, напитках, косметике и здравоохранении [4-6].

In recent years, astaxanthВ случае необходимостиhПо состоянию на 31 декабряnot only been used В случае необходимостиhuman health products, but also as A/данные отсутствуют.feed additive in animal farming. The use Соединенные Штаты америкиastaxanthin in aquaКультура и искусствоcan improve animal immunity, reduce mortality, иreduce В настоящее времяabuse Соединенные Штаты америкиantibiotics [7]. In addition, astaxanthin plays a key role in the pigmentatiПо состоянию наСоединенные Штаты америкиsome aquatic animals, such as rainbow trout иornamental fish [8]. This paper reviews the sources, physical иchemical properties, иapplications Соединенные Штаты америкиastaxanthin in aquaculture.

1 источник астаксантина

На главную страницуsources Соединенные Штаты америкиastaxanthin are simple microorganisms, especially algae, yeasts, fungi иbacteria. Astaxanthin cannot be synthesized biochemically По запросу:animals, but can accumulate in animal tissues По запросу:eating organisms containing astaxanthin. Natural astaxanthin extracts usually contain other types of - каротеноиды (β-carotene, canthaxanthin иlutein) that are associated with biological activity. Different microorganisms иmarine animals, including microalgae, yeast, the muscles of wild and farmed salmon, trout, krill and crayfish, complex plants, and some birds are natural sources of astaxanthin. Commercial astaxanthin is usually chemically synthesized or produced by Xanthophyllomyces dendrorhous or - гематококкPluvialis [9-11]. The astaxanthin content in wild salmПо состоянию наmeat is 3–38 mg·kg-1, while the astaxanthin content in rainbow trout meat is 12–25 mg·kg-1 [12]. Therefore, fillets Из российской федерацииwild and farmed salmon can be used as a dietary source of astaxanthin.

Под влиянием рыночного спроса и экологических выгод производство астаксантина из микроводорослей и практическое применение астаксантина в аквакультуре стали в последние годы научно-исследовательскими очагами. Исследователи изучили изоляцию богатых астаксантином микроводорослей и механизм, с помощью которого водоросли синтезируют астаксантин. В настоящее время гематококкокк плювиалис, хлорелла зофингиенс и Scenedesmus obliquus были определены как водоросли, способные производить естественные астаксантин (см. таблицу 1). Астаксантин или астаксантин-богатые микроводоросли широко используются в качестве кормовых добавок для лосося, креветок и декоративных рыб в целях повышения иммунитета животных, предотвращения злоупотребления антибиотиками и увеличения пигментации. Использование водорослей астаксантина для выращивания Рыбы считается жизнеспособным способом достижения устойчивого развития в аквакультуре.

2 физико-химические свойства астаксантина

Astaxanthin — каротеноид с молекулярной формулой C40H52O4 (относительная молекулярная масса 596.84), плотностью 1,071 г ·mL-1, температурой плавления 216 °C и температурой кипения 774 °C. Астаксантин имеет низкую растворимость в воде и легко растворяется в органических растворителях. Его растворимость в дихлорметане, хлороформе, диметилсульфоксиде и ацетоне составляет соответственно 30 мг ·mL-1, 10 мг ·mL-1, 0,5 мг ·mL-1 и 0,2 мг ·mL-1 [20].

Молекулярная структура астаксантина показана на рис. 1а. Она состоит из конъюгированной двойной связи в середине, состоящей из четырех изопреновых единиц, и гравюро-гидроксикантахсантинской кольцевой структуры с обоих концов. C-3 и C-3 &#- 39; У нас есть чиральные центры. Так как хиральный центр может иметь два конформации, два хиральных атомов углерода C-3 и C-3&#- 39; Astaxanthin может существовать в форме B. Р.или - с,поэтому astaxanthin имеет три изомера: (3S, 3S&)#39;, (3R, 3R&)#39; и (3R, 3S&)#39; (см. рис. 1B~D), где (3S, 3С. S&)#39; и (3R, 3R ' являются энантиомерами, каждая пара энантиомеров имеет противоположное оптическое вращение, которое приводит к плоскости поляризованного света вращаться влево или вправо, в то время как (3R, 3S &)#39; изомер не имеет оптического вращения.

Астаксантин существует в двух состояниях: свободном и эстерифицированном. Синтетический астаксантин в основном находится в свободном состоянии (3S, 3R&)#39;), whileПриродный астаксантин is mainly in the esterified state (3S, 3S' и (3R, 3R&)#39.... Astaxanthin, производимая компанией Rhodopseudomonas palustris, в основном относится к странам СНГ (3R, 3R&)#39; дистер [21], и астаксантин, содержащийся в Haematococcus pluvialis, в основном все-транс (3S, 3S&)#39.) моноэстер [22]. Как член семейства жирорастворимых каротеноидов, особая структура астаксантина может привести к следующим недостаткам в применении:

(1) гидрофобия. Астаксантин является нефтелюбимым веществом с низкой растворимостью в неполярных растворителях. Астаксантин имеет две гидроксиловые группы на каждом конце, и каждая гидроксиловая группа может взаимодействовать с жирной кислотой, чтобы сформировать эфир. Эстерифицированный астаксантин является более гидрофобным, чем свободный астаксантин [23].

(2) нестабильность: из-за структуры ненасыщенных конфузированных двойных облигаций мономеры астаксантина крайне нестабильны. Во время обработки и хранения они подвержены деградации и обесцвечиванию в результате изменения света, температуры и содержания кислорода, что приводит к потере ими своей первоначальной биологической активности и к ухудшению качества и цвета конечного продукта.

3 применение астаксантина в аквакультуре

For a long time, astaxanthin has been added По адресу:fish feed as a natural pigment for the cultivation of salmon, bream and some ornamental fish. In recent years, more and more studies have found that astaxanthin has a Положительное сальдо (в процентах)effect on the weight gain and Иммунитет от болезнейresponse of aquatic animals, and the application of astaxanthin has been expanded По адресу:crustaceans and some economic fish species. Carotenoids are closely related to a large number of physiological functions in plants and animals. The color of most aquatic animals and animal tissues is attributed to the presence of various carotenoids [24-25]. As the main carotenoid in aquatic animal tissues, astaxanthin has the functions of pigmentation, anti-oxidation and anti-stress.

3.1 влияние астаксантина на функцию окраски водных животных

Пигментация является важным процессом в выращивании лосося, форели, морского дна, декоративной Рыбы и ракообразных, и потребители предпочитают розовый лосось с высоким содержанием астаксантина. Кроме того, рыночная стоимость декоративной Рыбы частично зависит от цвета кожи или цвета мышц. Цвет водных животных играет важную роль в принятии потребителя, воспринимаемом качестве и цене. Выращиваемые ракообразные со светло-желтыми снарядами, как правило, имеют более низкую рыночную цену, чем ракообразные с красными или темно-оранжевыми снарядами. В большинстве случаев рыба не может синтезировать пигменты в своем организме, но может поглощать экзогенные пигменты. Таким образом, добавление астаксантина в корм может повысить красочность рыб и ракообразных и концентрацию астаксантина в их тканях [26-27].

Salmon, trout and sea bream are widely distributed in the Pacific and Atlantic Oceans, and are rich in protein, lipids,Естественные пигменты and minerals, as well as other essential nutrients for the human body. In the market, the 3. Пигментацияin the skin and muscles of salmon, trout and sea bream to a certain extent determines their quality. However, in the wild, the decline of fishery resources has severely limited the markВ то же времяsupply of these - высокий уровеньvalue-added fish. In order to provide humans with high-quality aquatic products, the aquaculture of salmon, trout and sea bream has developed rapidly, increasing the market demand for fish feed.

Sigurgisladottir И др.[28]добавлено 88,6 мг · кг -1 астаксантина к корму атлантического лосося. Результаты показали, что содержание астаксантина в мышцах лосося экспериментальной группы составляет 2,0 ~ 2,5 градиента · кг -1, в то время как контрольная группа имеет 0,5 ~ 0,8 градиента · кг -1, что указывает на то, что добавление астаксантина увеличивает пигментацию в мышцах лосося. При выращивании радужной форели содержание астаксантина в корме для рыб было увеличено с 0 до 27,6 мг · кг -1, что привело к увеличению общего содержания каротеноидов и значения хрома в мышцах. При содержании астаксантина от 27,6 мг · кг -1 до 46,1 мг · кг -1 существенного увеличения общего содержания каротеноидов и значения хрома отмечено не было [29]. Основной причиной этого явления может быть то, что избыточный астаксантин не может быть полностью поглощен водными животными.

Zhang Chunyan et - эл. - привет.[30] added 1.0 g·kg-1 synthetic astaxanthin (Ast group) and 4.4 g·kg-1 Haematococcus 6. Плювиалис (pluvialis)extract (HE group, astaxanthin content 100 mg·kg-1) to rainbow trout feed, and the control group was the basal diet. After feeding for 6 weeks, it was found that the 1. Мышцыredness and yellow were significantly higher than those in the control group. A. Kurnia et al. [31]showed that the astaxanthin content in the tissues of bream Федеральный резервный фондwith synthetic and natural astaxanthin reached 7.76 mg·kg-1 and 12.7 mg·kg-1 , respectively. C. Georges et al. [32]Федеральный резервный фондrainbow trout with synthetic astaxanthin (AST group) and natural astaxanthin derived from Haematococcus pluvialis (ALG group), and the results showed that the plasma and muscle astaxanthin concentrations, muscle color saturation (C*), redness (a*) and yellowness (b*) of the AST group rainbow trout were higher than those of the ALG group, indicating that astaxanthin from different sources has different effects on the pigmentation of different aquatic animals.

Jiang J. F. et al. [33]добавляют астаксантин различных источников и концентраций (20, 50, 75 и 100 мг · кг -1) в корм клубники красного моря (Pseudochromis fridma⁃ nii) и проводят 42- дневный испытательный период для изучения воздействия астаксантина на окраску клубники красного моря. Результаты показали, что яркость Рыбы в группах кормила 75 мг · кг -1 и 100 мг · кг -1 натуральный астаксантин и 100 мг · кг -1 синтетический астаксантин был значительно ниже, чем у контрольной группы, а насыщенность цвета кожи была значительно выше, чем у контрольной группы, и оттенок всех групп (за исключением 25 мг · кг -1 натуральный астаксантин группы) значительно отличался от яркости контрольной группы.

N. A. Bell et al. [34]added astaxanthin-rich and protein-rich lobster powder to the feed of goldfish (Carassius auratus), and found that the brightness, redness and yellowness of the goldfish increased. Wang Junhui et al. [35] studied the effect of different astaxanthin addition levels on the body color of koi carp (Cyprinus carpio L.), and found that the addition of astaxanthin had no effect on the brightness of the body color, and that the redness (a*) and yellowness (b*) of the body color tended to increase first and then decrease with the increase of astaxanthin addition. In addition to affecting the pigmentation of ornamental fish, the addition of astaxanthin to the feed can also affect the color-based behavior of ornamental fish. E. Lewis et al. [36]found that the addition of astaxanthin to the feed of red rose fish (Puntius titteya) can reduce their mirror attack behavior and mate selection behavior.

Многие виды ракообразных, такие как крабов-отшелов, красных крабов-королей, крабов, когтей, лобстеров-шпионов и креветок травы, потеряют или не получат пигментации, если они не будут потреблять достаточно каротиноидов [37-41]. Доказано, что пигментация банановых креветок наследуется [42], что позволяет предположить, что может существовать генетическая основа для удержания каротеноидных пигментов. Long X. W. et al. [43]обнаружили, что, когда взрослым китайским крабов-мышей (эриошейр синенсиз) скармливают диету, содержащую порошок Haematococcus pluvialis, насыщенный естественным астаксинтином, покраснение (a*) яичников и ракушек китайских крабов-мышей значительно возрастает с увеличением количества порошка Haematococcus pluvialis в рациона питания, в то время как светлость (L*) и желтость (b*) демонстрируют понижательную тенденцию. Этот результат соответствует хан т Haematococcus pluvialis порошок был добавлен в рацион питания, покраснение (a*) яичников и карапезов китайского краба-котенка значительно увеличился, в то время как яркость (L*) и желтость (b*) показали понижательную тенденцию. Этот результат соответствует результатам исследования хан т. и др. [44]на плавучем крабе (- портунус.trituberculatus).

3.2 влияние астаксантина на антиоксидантную функцию водных животных

Reactive oxygen species (ROS) are a natural product of aerobic metabolism in living organisms and are a type of free radical necessary for survival. Reactive oxygen species play an important role in regulating certain cellular activities, apoptosis, the immune system, gene transcription, etc., but they are highly harmful to cells. To deal with the constantly generated reactive oxygen species, the body relies on an antioxidant defence system that includes both enzymatic and non-enzymatic antioxidants. Enzymatic antioxidants include peroxidase (POX), superoxide dismutase (SOD) and catalase (CAT); non-enzymatic antioxidants include vitamin E, vitamin C, C,trace elements and carotenoids. ROS is highly reactive towards lipids, proteins and nucleotides. The reaction of ROS with polyunsaturated fatty acids (PUFA) leads to - липид.peroxidation. This reaction produces a new ROS, which continues to react with new PUFA, leading to a cycle of Окислительное средствоreactions. Aquatic animals are rich in n-3 PUFA/данные отсутствуют.and are extremely vulnerable to attacks by oxygen and other free radicals.

В последние годы астаксантин, эффективный антиоксидант, обнаруженный в некоторых морских организмах, привлекает все большее внимание исследователей [45 — 46]. Поскольку астаксантин содержит в своей молекулярной структуре соединенные двойные связи, гидроксильные группы и группы кето, он может реагировать на свободные от кислорода радикалы, чтобы собирать свободные радикалы и оказывать антиоксидантный эффект. Доказано, что астаксантин обладает высокой антиоксидантной активностью, в 10 раз превышающей уровень каротиноидов (таких как кантаксантин, грау-каротин и лютейн), в 65 раз превышающей уровень витамина с и в 100 раз превышающей уровень витамина е [47]. Антиоксидантная активность астаксантина проявляется в его способности улавливать единичный кислород, супероксид и гидроксильные радикалы, а также другие химически активные виды кислорода (ROS), химически активные виды азота (RNS) и ингибировать пероксирование липидов [48]. Астаксантин реагирует с жиром, чтобы сформировать астаксантин эфиры, которые могут эффективно ингибировать химическую реакцию между внутриклеточными кислородными свободными радикалами и ненасыщенными жирными кислотами, тем самым снижая окислительные повреждения ДНК и воспалительные реакции, улучшая организм 's иммунная реакция, и легко проникающие биологические мембраны таким образом, что минимизирует повреждения мембраны, тем самым защищая мембраны и жирные кислоты от липидного пероксирования.

- о, да. Z. Barim et al. [49]added vitamin E (VE), vitamin C (VC), vitamin A (VA), astaxanthin (AST) and β-carotene (βC) to the diet of Danube crayfish (Astacus leptodactylus). During the experiment, The number and size of eggs were measured during the experiment, and the contents of VE, VC, VA, AST, βC and malondialdehyde (MDA) in the tissues were determined. The results showed that the number and size of eggs in the VE and AST groups were the best in each group. In the AST group, the MDA content in the liver, ovary, gill and muscle tissues was the lowest, indicating that the astaxanthin group had the - сопротивление;was the highest. Yi X. et al. [50]showed that adding astaxanthin to the diet of yellow croaker could increase the activity of SOD. Д.and GSH-Px in the yellow croaker liver, thereby increasing the overall antioxidant level of the yellow croaker body.

- п. Ма с. л. и др. [51]изучили влияние добавления астаксантина в рацион Hali otus discus hannai на его антиоксидантную способность и обнаружили, что по сравнению с контрольной группой астаксантин группы Haliotis discus hannai сыворотки дерн и содержание кошек значительно возросло, в то время как содержание MDA значительно сократилось. Дерн и кошка отражают тело и#39;s способность компенсировать свободные радикалы, и чем выше содержание, тем выше антиоксидантная способность.

3.3 влияние астаксантина на устойчивость к стрессам и болезням водных животных

Высокоплотные аквакультурные операции часто подвергают животных различным физическим нагрузкам. Эти стрессы возникают в результате таких факторов, как ранжирование, транспортировка, обработка, вакцинация и скопление, которые приводят к тому, что животные находятся в состоянии сильного стресса и подавления иммунной системы, что может нарушить динамический баланс между водными животными и окружающей их средой, вызывая тем самым реакцию на стресс. Чрезмерный стресс приводит к физиологической дисфункции, снижению темпов роста, подавлению иммунной системы, подверженности болезням и даже смерти у водных животных [52 — 53]. Поэтому важно смягчить неблагоприятные условия, вызванные стрессом в исследованиях в области аквакультуры.

An early study showed that a daily intake of a diet containing 230–810 mg·kg-1 of astaxanthin for 4 weeks could improve the tolerance of - пеней? - да.1. Монодонto a high salt environment [54]. Y. H. Chien et al. [55]noted that a diet Дополнительная информацияwith 360 mg·kg-1 astaxanthin for 1 week could induce tolerance to low dissolved oxygen levels in - п.1. Монодонlarvae. After being tested with different 3. Стрессfactors, Penaeus monodon fed an astaxanthin-containing diet (80 mg·kg-1) for 8 weeks showed higher antioxidant defense capacity (lower SOD levels) and better liver function (lower AST and ALT), as well as improved - сопротивление;to hyperosmotic and thermal stress.

Аналогичным образом, при питании 71,5 мг · кг -1 астаксантина в течение 8 недель монодон пенея демонстрировал поразительный антиоксидантный статус и устойчивость к стрессу аммиака на различных уровнях (0,02, 0,2, 2, 20 мг · л -1) [56].

Lower SOD, AST and ALT indicate that various antioxidant enzymes in the tissues of P. monodon are consumed after biological - стресс,Повышение эффективности управленияАнтиоксидантная способностьand liver function. The above studies show that astaxanthin is a very important nutrient for P. vannamei under physiological stress caused by external pressure. K. Supamattaya et al. [57]fed P. vannamei with a feed containing 200–300 mg·kg-1 of Dunaliella salina extract, could tolerate low oxygen environments of 0.8–1 mg·L-1 and significantly resist viral Цвет: белыйМесто на картеС синдромом приобретенного иммунодефицита(WSSV). It was also found that the tissue of Penaeus monodon fed with Dunaliella salina extract had a higher astaxanthin content, indicating that they could quickly convert β-carotene into astaxanthin.

Аналогичные результаты были получены в ходе многочисленных исследований по литопенаю ваннамею и другим ракообразным. Чжанг дж. И др. [58]обнаружили, что литопенаеус ваннамей (с пищевой добавкой 125-150 мг · кг -1 astaxanthin, в дополнение к упрегуляции экспрессионных уровней гипоксийно-индуцируемого фактора (HIF-1α), цитозолического марганцевого супероксида dismutase (cMnSOD) и mRNA CAT, также увеличил общую антиоксидантную способность и устойчивость к гипоксическому стрессу (0,8 мг · л -1). В связанном с этим исследовании Niu J. et al.

Ван х. и др. [60]далее обнаружили, что после приема 80 мг · кг -1 астаксантина в течение 4 недель пеней ваннамей имел высокую устойчивость к вирусу синдрома белого мета (ВВСМ), что было связано с улучшением гемолимфоиммунных показателей, таких как фагоцитная активность, общее количество клеток крови, фенолоксидазная активность сыворотки, антиоксидная активность сыворотки, лизозимовая активность сыворотки и антибактериальная активность сыворотки. После 10 недель кормления в рационе, содержащей различные дозы астаксантина (50-150 мг · кг -1), японские креветки (Macrobrachium nipponense) могут выдерживать различные физические и химические нагрузки, такие как аноксическое питание (0,5 мг · л -1), аммиачное напряжение (0,75 мг · л -1) и холодное напряжение (0 ℃) [61]. Jiang X. D. et al. [62]добавлено 30-120 мг · кг -1   В отношении порошка гематококка плювиалиса и было установлено, что по сравнению с контрольной группой (без добавления порошка гематококка плювиалиса) смертность каждой добавленной группы значительно снижается при возникновении стресса аммиака. Было также установлено, что выражение антиоксидантных ферментов генов в каждой группе с добавленными Haematococcus pluvialis значительно улучшилось, что может быть связано с его низкой смертностью.

Астаксантин также оказывает благотворное влияние на рыбу. Лю ф. и др. [53]изучили последствияДиетический астаксантин intake on the stress resistance of Pelteobagrus fulvidraco. When fed at a dose of 80 mg·kg-1 for 60 days, it can increase the content of liver HSP70, liver SOD, and serum total protein (TP) and tolerance to acute crowding stress. Subsequent tests of attack by Proteus mirabilis showed that astaxanthin can significantly reduce the mortality of Pelteobagrus fulvidraco under crowding stress. dose for 60 days, it can increase the content of liver HSP70, liver SOD, serum total protein (TP), and tolerance to acute crowding stress. The subsequent attack test by Proteus mirabilis showed that the resistance of the astaxanthin group was significantly enhanced. Li M. Y. et al. [63]studied the effects of astaxanthin supplementation on lipopolysaccharide-induced oxidative stress and immune Ответ на вопросin Channa argus, and found that astaxanthin can increase the expression of heat shock proteins HSP70 and HSP90 and glucocorticoid receptor genes.

Другое исследование также показало, что астаксантин препятствует производству провоспалительных цитокинов, препятствуя сигнальной дорожке NF-κB и 1. MAPKs[64]. Xie J. J. et al. [65]добавляют порошок гематококкового плувиалиса в рацион золотого помфрета (Trachinotus Оварис (ovatus)с порохом гематококкового плувиалиса в течение 8 недель, а затем подвергают острой гипоксии стресс-тесту (1,2 мг · л -1). Было установлено, что группа дополнила егоПорошок плавиалиса гематококкаСмягчили воспалительную реакцию, активировав неф2, сигнализируют о возможности антагонизировать NF-κB сигнальный путь.

4. Резюме

Астаксантин является одним из важнейших каротиноидов в природе и привлекает внимание животныхдиетологов из-за его широкого спектра воздействия на здоровье водных животных. Добавление астаксантина в рацион водных животных не только улучшает цвет тела животных, но и обладает сильными антиоксидантными, антистрессовыми и антиболезнетворными функциями, а также защищает клетки и ткани водных животных от стресса и окислительных повреждений. С крупномасштабным и интенсивным развитием China'. В аквакультуре применение астаксантина будет становиться все более и более распространенным.

Ссылка:

[1]    Бегум х, юсофф ф м, банерджи с и др. Наличие и использование В виде пигментов from  Микроводоросли [J]. В важнейших проблемных областях Отзывы о компании in  - продукты питания Наука и питание, 2016, 56: 2209-2222.

[2]   Трин и сергей а, бенте р и др. Транскриптомея и функциональные передышки к отсутствию астаксантина в атлантическом лососе скармливают низкоморские рационы питания [J]. Сравнительная биохимия и физиология-часть D: Ge⁃ nomics and Proteomics, 2021, 39: 110841.

[3]   Барредой л, гарсия-эстрада с, косалкова к и др. Биосинтез astax⁃ anthin в качестве основного каротеноида в гетеробазидиомицетных дрожжей Xanthophyllomyces dendrorhous[J]. Журнал грибов, 2017, 3: 44.

[4]   Йошими к, хироши, казуо к. потенциальные антиатеросклеротические свойства астаксантина [J]. Морские лекарства, 2016, 14: 35.

[5]   Келли F, Mi B K, норка уB, и др. Astaxanthin оказывает антиинфламное параметрическое и антиоксидантное воздействие на макрофаги в NRF2-depen⁃ dent и independent ⁃ [J]. Журнал пищевой биохимии, 2018, 62: 202 — 209.

[6]   Bilge E, SakineTT, Fadime A K, и др. Оценка антиоксидантных свойств актуальных составов астаксантина как антистареющих продуктов [J]. Вестник косметической дерматологии, 2019, 18(1): 242-250.

[7]   Алишахи м, карамифарм, месбах м. влияние астаксантина и дуналиеля ⁃ la salina на каротеноидные ткани кожи, показатели роста и иммунную реакцию of  Астеронот (Astronotus)  Оцеллятус [J]. 3. Аквакультура Международный, 2015, 23: 1239-1248.

[8]   Д/дС. О.R, Sanaz K, Kyung H C, и др. Влияние включения астакса гравантина в рацион питания на рост, пигментацию мышц и антиоксидантную способность ювенальной радужной форели (Oncorhynchus)mykiss) [J]. Профилактика и лечение Пищевая наука, 2016, 21(3): 281 — 288.

[9]   Derya D, Ali C D. оптимизация биопроцесса пигмента астаксантина путем градирования четырех различных дрожжевых видов с использованием пшеничных отходов [J]. Биокатальный парадиз и сельскохозяйственная биотехнология, 2016, 7: 1 — 6.

[10]   - фатима, - г,с, анимеш Д, махендра т и др. Интенсивный зеленый pro⁃ tion of astaxanthin from Haematococcus pluvialis[J]. Переработка пищевых продуктов и биопродуктов, 2016, 99: 1-11.

[11]   Шанг м м, дин в, чжао и др. Улучшенный astaxanthin pro⁃ duction от Haematococcu spluvialis с использованием butylated hydroxyani⁃ sole[J]. Журнал биотехнологии, 2016, 236: 199-207.

[12]   Джеймс а, Филипп б, Пол б и др. Обзор исследований генотоксичности и канцерогенности крыс с помощью астаксантина [J]. Нормативная токсикология и фармакология, 2016, 75: 5-19.

[13]    Мао (фр.) X X X X - м, У т, Солнце и Солнце D  - Z, et al.  Дифференциальные реакции зеленой микроводорослей Chlorella zofingiensisto голодание различных питательных веществ для нефти и astaxanthinproduction[J]. Биоресурсная технология «⁃ nology», 2018, 249: 791 — 798.

[14]   Chen J H, Liu L, Wei D. увеличение производства астаксантина хромохлором зофингиенсизином a  На базе микросхем culture  В рамках системы high  1. Свет  Облучение [J]. 1. Биоресурсы - технологии,  2017, 245: 518 — 529.

[15]   Chen J H, Wei D, Lim P E. усиленное совместное производство астаксантина и Организация < < липидс > > По состоянию на 31 декабря - зеленый цвет Организация < < микроалга > > Хромохлорис зофингиенсис: выбран - фитогормоны as  positive  Стимуляторы [J]. Технология биоресурсов, 2020 год,295: 122 — 242.

[16]   Чжан з, хуан дж х, сун д з и др. Двухступенчатая обработка для pro⁃ duction of astaxanthin в Chlorella zofingiensisusing запатентованный безэнергосвободный вращающийся плавающий фотобиореактор (RFP)[J]. Технология биоресурсов, 2017, 224: 515 — 522.

[17]   Li 1. О- м,Chen Z, Huang Q. экзогенная гравитационная аминобутиновая кислота pro γ motes биомасса и производство astaxanthin в Haematococcus plu⁃ vialis[J]. Исследования водорослей, 2020, 52: 102089.

[18]   Одер H C R, ана G I, леонардо R, и др. Добавлена оценка биосинтеза астаксинтина Haematococcus pluvialis, выращенного в культурной среде of  А. кассава Сточные воды [J]. Международная организация труда Биологическое ухудшение и Биодеградация, 2021, 163: 105269.

[19]   Ё н э кей, ибрагим а м, накён л и др. Расширение производства астаксана методом гравитационного гематококкового плувиалиса с использованием магниевого ами гравитаноклая  Наночастицы [J].  1. Биоресурсы  - технологии,   2020,   307:123270.

[20]   Pan L, Wang H Y, Gu К. К.R. Nanoliposomes as vehicles for astax⁃ anthin: ization, in vitro release assessment and structure [J]. Молекулы, 2018, 23: 2822.

[21]   Ван дж., лю ш., ван г., и др. Xanthophyllomyces dendrorhous de⁃ rivedastaxanthin регулирует липидный обмен веществ и микробиоты кишечнике у тучных мышей, вызванных высоким содержанием жиров [J]. Морские наркотики, 2019, 17: 337.

[22]    Md  С. О. R  S,  Лианг (Liang) Y  M,  - джей джей. C,  et  al.  Astaxantin-производство зеленых микроводорослей Haematococcus Pluvialis: от одноклеточных до высокоценных коммерческих продуктов [J]. Наука о растениях, 2016, 7: 531.

[23]   Сусуму х, сачико у, асако и др. Удаление гидроксил рад гравиталов в водном растворе астаксантином, инкапсулированным в липосомах [J]. Биологического оружия и * * * * В фармацевтической промышленности [электронный ресурс] 2012 год, 35(12): 2238-2242.

[24]   Ясмен и др., мехмет с, махмут и др. Сезонные изменения общего содержания каротеноидов диких морских креветок (Penaeus semisul⁃ catus и Metapenaeus monoceros), обитающих в восточной части ⁃ ranean[J]. Пищевая химия, 2004, 88: 267 — 269.

[25]   Райан джей ю, брайсон кей джи, Скотт р. с., и др. Красная окраска в граукьялинишрипе:  - каротеноиды,  В генетическом плане  - вариация,  and   Гены кандидатов [J]. Биологический вестник, 2020, 238: 119 — 130.

[26]   Ногейра н, Канада - п,кабоз J, и др. Влияние различных уровней синтетического астаксантина на рост, цвет кожи и липидный метаболизм коммерческого размера red pory(Pagruspagrus)[J]. Корм и технологии для животных, 2021, 276: 114916.

[27]   Wu X - г,Zhao L, Long X W, et al. Влияние диетических добавок гравюры порошка Haematococcu spluvialis на развитие гонадаля, окраску и антиоксидантную способность взрослых китайских комаров-кров (эриохир синенсис)[J]. Исследования аквакультуры, 2017: 1-10.

[28]    Sigurgisladottir S, Parrish C C, Lall S P, et al. Последствия astaxan⁃ thin ⁃ natural tocopherolsandon Atlantic salmon (Salvo sal ar) fillet quality[J]. Международная организация по исследованию проблем продовольствия, 1994 год, 27. : 23-32.

[29]   Md M R, Sanaz K, Kyung H C, и др. Влияние включения астаксантина в рацион питания on  Экономический рост, muscle  pigmentation  and  antioxidant capacity  of  По делам несовершеннолетних - радуга! Форель (форель) (Oncorhynchus  Мой поцелуй (J). Пред. ПТН, 2016, 21(3): 281-288.

[30] чжан с, Дэн X, яо W и др. Влияние астаксантина из различных источников на показатели роста, цвет мяса и антиоксидантную способность радужной форели [J]. Журнал питания животных, 2021, 33(2):1008-1029.

[31]     Курния а, сато с, курамото д и др. Влияние различных astaxan⁃ thinsources на пигментацию кожи красного моря Bream (Pagrus ma⁃ jor)[J]. Икв аквакультуры, 2007, 55(3): 441-447.

[32]    Жорж с, Мария м м, руй м. пигментирующая эффективность астаксана гравитационного корма радужной форели Oncorhynchus mykiss: эффект диетического астаксантинанда lipid  Источники [J]. Аквакультура, 2006 год, 257. : 429- 436.

[33]    Цзян дж ф, вальдо н о, алекс а, и др. Повышение окраски морской декоративной Рыбы псевдохромифридмани с использованием природных и синтетических источников астаксантина [J]. Исследование водорослей, 2019, 42:101596.

[34]    Белл н а, Джеффри с, маисаак джей л и др. Влияние лангуста на показатели роста и пигментации обыкновенной золотистой Рыбы (Carassiusauratus)[J]. Аквакультура отчеты, 2019, 13: 100187.

[35] ван цзюньхуэй, сян цзяньли, чжан дуньян и др. Влияние астаксантина в кормах на рост, цвет тела, антиоксидантную способность и иммунитет кои карпа [J]. Журнал питания животных, 2019, 31(9): 4144-4151.

[36]    Льюис и, Кристиан с, Донна с и др. Поведенческое воздействие sup⁃ pleдиеты с синтетическим и естественным источником astaxanthin в декоративной рыбе (Puntius titteya)[J]. Наука о животных, 2016, 182: 94 — 100.

[37]   Рене с, женевьева н с. влияние различных диетических каротиноидов на пигментированную структуру краба-отшелуха Clibanariuserythropus Латрей (ракообразные: декапода) [J]. Лагерь биохимиол, 1995, 11(4): 533-538.

[38]   Daly B, Swingle J S, Eckert G. Питание аквакультуры, 2013, 19(3): 312 — 320.

[39]   Lai V (Lai V) H,  Нгуен т. D P, Michael F T. влияние астаксантина и холестерина на рост, выживание и пигментацию взрослых лобстеров-шпинилий, Panulirus ornatus (Decapoda, Palinuridae)[J]. AACL Bio⁃ flux, 2010, 3: 261 — 268.

[40]   Катрин к, керли х, мари л и др. Воздействие двух различных кормов на рост, цвет карапеса, зрелость и смертность мартенованных раков (Procambarus fallax f. девственность)[J]. Интернациональная аквакультура, 2015, 23: 185 — 194.

[41]    3. < < бхавсар > > S  P,  Сингх (США) K  G,  - шарма. L  P.  На микробной основе Производство и продажа Из астаксантина пигмента с использованием Mrineshrimp[J]. Индийский журнал Geo- морская наука, 2016, 45(2): 352-357.

[42]   Нгуен н н, Джейн кью, даниэль п и др. Наследственность цвета тела и его генетическая связь с морфометрическими чертами банановых креветок (Fenneropenaeus merguiensis)[J]. BMC Genetic, 2014, 15: 132.

[43]    Long X W, Wu X G, Zhao L, et al. Воздействие диетических добавок с порошковыми клетками гематококка на окраску, развитие яичников и антиокислительную способность взрослых женщин ци-одува - котенок. Краб, эриохейр синенсис [J]. Аквакультура, 2017, 473:

[44]     Хан т, Ли X Y, ван джей ти и др. Влияние пищевых добавок astaxanthin (AX) на пигментацию, антиоксидантную способность и питание 1. Стоимость of  - на пляже - краб, Portunus  Trituberculatus [J]. Аквакультура, 2017, 490: 169 — 177.

[45]    Basioura A, Tsakmakidis I A, Martinez E A, и др. Эффект astax⁃ anthin в удлинители на качество спермы и функциональные переменные заморожены-оттепели  - кабан.  Сперма [J].  - на животных.  B. размножение документов  Наука, 2020, 218: 106478.

[46]   Ван л, жуанг л л. астаксантин улучшает липополища Субфертильность с помощью мыши Nrf2 / ho1 антиоксидантный путь [J]. Доза-реакция, 2019, 17(3): 1-10.

[47]   - юсри? - да. M  A  N. антиоксидантная деятельность астаксантина и связанных с ним каротеноидов [J]. Журнал сельскохозяйственной и пищевой химии, 2000, 48: 1150 — 1154.

[48]   Сорин у, амирхосейн с, Мария с с и др. Липидный профиль и изменения глюкозы после добавления астаксантина: систематическое re⁃ view И мета-анализ рандомизированных Контролируемые испытания [J]. Arch Med Sci, 2015, 11: 253-266.

[49]    Барим о з, сахин х. влияние диетических антиоксидантных онуварных яйцеклеток и уровней витамина е, с, а, астакзантина, грава-каротина и оксидатифтра в тканях Astacus leptodactylus (Eschscholtz) dur⁃ ing β [J]. Молекулярная биология, 2016, 62(14): 1-10.

[50]    Йи х, шэнь х, ли джей и др. Влияние диетического витамина е и астаксана ⁃ thin на рост, цвет кожи и антиокислительную способность большого yel⁃ low croaker Larimichthy scrocea[J]. Питание аквакультуры, 2017:

1-9.

[51]    Ма с л, ли х х, хуан д, и др. Влияние диетических хрома и астаксантина на показатели роста, анти-окислительные способности гравюра, и устойчивость к тепловому стрессу abalone Haliotis discus hannai [J]. Международная организация аквакультуры, 2021, 29: 911 — 924.

[52]   Нику м, фалахаткар б, алекхоршид м и др. Физиологические реакции стресса в кутум рутилус фрисии кутум, находившийся в плену [J]. Международные исследования водных ресурсов, 2010, 2: 55 — 60.

[53]    Лю ф, ши х з, го к и др. Влияние astaxanthin и emodin на рост, устойчивость к стрессам и болезням желтых сомов (Pelteobagrus fulvidraco) [J]. Иммуноло Рыбы и моллюсков, 2016, 51: 125 — 135.

[54]     Мерчи джи, контара е, лавенс п и др. Эффект витамина с и астаксантина on  stress  and  Устойчивость к заболеваниям Креветок post larval tiger, Penaeus monodon (Fabricius) [J]. Исследования в области аквакультуры, 1998, 29: 579-585.

[55]    Chien Y H, Pan C H, Hunter B. устойчивость к физическим нагрузкам by  Penaeus  monodon  По делам несовершеннолетних fed  Питание по системе supplemented  С astaxanthin[J]. Аквакультура, 2003, 216: 177 — 191.

[56]   Pan C H, Chien Y H, Hunter B. стойкость пенея к стрессу аммиака monodon  Фабрициус ювенальный fed  Питание по системе Дополнен астаксантином [J]. Журнал экспериментальной морской биологии и экологии, 2003, 297: 107 — 118.

[57]    Супаматтайя к, кириратником с, буньяратпалин м и др. Влияние экстракта дунальеллы на показатели роста, состояние здоровья, иммунитет response  and  По борьбе с заболеваниями resistance  in  Черный цвет кожи - тигр Креветки (Penaeus monodon)[J]. Аквакультура, 2005, 248: 207 — 216.

[58]    Чжан джей, лю и джей, тянь л х и др. Влияние диетического астаксантина на рост, антиоксидантную способность и генную экспрессию у белых креветок тихого океана литопенаев ваннамей [J]. Питание аквакультуры, 2013 г. 19:917-927.

[59]   Ню-джей, тянь-л-х, лю-й-джей и др. Влияние диетического астаксантина на рост, выживание и стрессоустойчивость креветок после личинок, Litope⁃ naeus Ванамей [дж].Журнал по темеof the World Aquaculture Society, 2009, 40: 795-802.

[60]    Ван х, дай а, лю ф и др. Влияние диетического астаксантина на иммунитет - ответ: resistance  to  white  spot  syndrome  В случае вируса И транскрипция генов антиоксидантного фермента в тихоокеанских белых креветках Litopenaeus vannamei[J].  Иран (исламская республика) Journal  of  Рыболовство и рыболовство Наука, 2015, 14: 699-718.

[61]   Тискар б, сейдави а, понсе-палафокс дж и др. Влияние астаксинтина на устойчивость ювенальных креветок Macrobrachium nipponense (Decapoda: Palaemonidae) к физическому и химическому стрессу [J]. Re: да, конечно.

[62]    Jiang X D, Zu L, Wang Z Y и др. Микроводоросль astaxanthin может улучшить антиоксидантную способность, иммунитет и рециркуляцию аммиака ⁃ of juvenile Chinese mitten crab, Eriocheir sinensis[J]. Иммунология рыб и моллюсков, 2020, 102: 499 — 510.

[63]    Ли м и, го в и, го г л и др. Влияние астаксантина на липополисахарид-индуцированный oxidative  stress,  immune  Реакции и генное выражение, связанное с glucocorticoid рецептором (GR) в Channa argus[J]. Аквакультура, 2020, 517: 734 — 816.

[64]   Li M Y, Sun L, Niu X T, et al. Астаксантин защищает липополисак инвазивной воспалительной реакции в чанна Аргус путем ингибирования NF-граб and  MAPKs  3. Сигнализация Пути [J]. И рыбные запасы Иммунология моллюсков, 2019, 86: 280 — 286.

[65]    Се джей джей, фан х х, он х с и др. Исследование механизма синтетического астаксантина and  Haematococcus  pluvialis   По улучшению положения женщин the  Показатели роста и антиоксидантной способности под острым гипоксическим стрессом * золотой цвет * Помпано (трахинот) ovatus)  and  enhancing  Анти -in⁃ flammatory by  3. Активация системы Nrf2-ARE Путь к успеху to  - антагонизм. Путь NF-κB [J]. Аквакультура, 2020, 518: 657 — 734.