Что такое родола роси полисахарид?

Rhodiola as a perennial herb or subshrub in the family Crassulaceae has tonic, invigorating and anti-stress effects similar to those of ginseng and Siberian ginseng [1-2]. Currently, 96 species of Rhodiola are known worldwide, most of which are distributed in the limestone and granite mountains of the northern hemisphere at an altitude of 3,500–5,000 m in the alpine zone. A small number grow at an altitude of about 2,000 m in alpine meadows, undergrowth in forests or near rocks along ditches[3]. The species of Rhodiola in China include 73 species, 2 subspecies, and 7 varieties, accounting for about 85% of the world' с родиола ресорсиз. В основном распространены на юго-западе, северо-западе, севере и северо-востоке китая, на цинхай-тибетском плато обитает 55 видов [4].

Основной лечебной частью родиолы роси является ризом, который содержит различные активные ингредиенты, такие как полисахариды, гликозиды, тиросол, родиолозид, фенолы, флавоноиды, аминокислоты, кумарины, органические кислоты, минеральные элементы, стероидные соединения и алкалоиды [5]. Рододиола полисахариды обладают действием антиусталости, антистарения, антивируса, гипогликемии, иммунного регулирования, антибактериального, антиоксидантного, гипогликемического, регулирования гликолипидного обмена веществ, антиповреждений, антидефективной стимуляции и др. [6-10].

1 химический состав родольских полисахаридов

Luo Lipan et al. [11] and Teng Fei et al. [12] used gas chromatography-mass spectrometry to analyze the monosaccharide composition and ratio of Rhodiola polysaccharides extracted with water and alkali. The results showed that the monosaccharides of crude polysaccharides extracted from Rhodiola from different origins were all composed of rhamnose, mannose,arabinose, glucose and galactose, but the proportions of the monosaccharides that make up the polysaccharides are different; the monosaccharide composition of the crude polysaccharides extracted from Rhodiola rosea from different origins is different. Therefore, the composition and content of the polysaccharides in Rhodiola rosea from different origins vary greatly, and the differences in the composition of the monosaccharides may lead to certain differences in biological activity. Jiang Kainian et al. [13] found that rhodiola polysaccharides contain uronic acid, which is a water-soluble acidic heteropolysaccharide. The weight-average molecular weight of the polysaccharide was measured to be 27.876 kDa by high-performance gel permeation chromatography.

2 методы экстракции и очистки родовых полисахаридов

2.1 извлечение полисахаридов

В настоящее время известные методы экстракции полисахаридов включают экстракцию воды, кислотную экстракцию, щелочную экстракцию, гидролиз протеазы, экстракцию сверхкритической жидкости, экстракцию этанола, ультразвуковую микроволновую экстракцию, ультразвуковую экстракцию, микроволновую экстракцию и т.д. [14-19]. Общие методы экстракции полисахаридов родиолы включают экстракцию воды, экстракцию с помощью микроволн и ультразвуковое экстракцию. Метод экстракции воды не повреждает структуру полисахаридов. Он имеет преимущества простого оборудования, низкую стоимость и отсутствие загрязнения окружающей среды, но он также имеет недостатки: требует много времени и многократной экстракции [20].

Bona Nina et al. [21] обнаружили, что при 80 градусах и соотношении материалов к жидкости 1:30 г/мл, скорость экстракции родола полисахаридов с использованием метода экстракции воды составила 5,76% после 2,5 ч экстракции. Экстракция с помощью микроволн использует микроволны для облучения растворителя и проникновения через стенки клетки внутрь клетки, повышая температуру и давление внутри клетки, разрывая клетку и высвобождая активные ингредиенты внутри клетки, которые затем растворяются растворителем и извлекаются из растворителя для достижения эффекта экстракции [22]. Экстракция с помощью микроволны обладает такими преимуществами, как экологичность, высокая чистота продукта, короткий срок экстракции и высокая избирательность растворителей.

Вместе с тем из-за ограничений, связанных с оборудованием, его трудно извлекать в больших масштабах. Sun Ping et al. [23] использовали микроволновую экстракцию воды и алкогольные осадкиextract polysaccharides from Rhodiola crassifolia. The polysaccharide content in the Rhodiola extract was measured to be 3.9%. Ultrasonic extraction uses cavitation, mechanical, and thermodynamic effects to extract polysaccharides. It has the advantages of not destroying physiological activity, being time-saving, and having a high extraction rate. However, it is not suitable for large-scale extraction due to equipment limitations [20]. Wang Li et al. [24] used an ultrasonic extraction method to extract polysaccharides from Rhodiola sachalinensis at a temperature of 69 °C, an ultrasonic power of 240 W, and a material-to-liquid ratio of 1:30 g/mL. The extraction time was 39 min, and the extraction yield was 4.305%.

2.2 очистка полисахаридов

Полисахариды, извлекаемые из растений, обычно содержат большое количество примесей, в основном белков. Большое количество заряда, переносимого белком, приводит к тому, что полисахарид адсорбирует больше примесей. Для получения полисахарида с более высокой чистотой белок должен быть удален. В настоящее время методы удаления белка включают севаж, трихлоруксусную кислоту, энзиматический гидролиз и трифтортрихлорэтан [25]. Севаж метод является наиболее распространенным методом удаления свободного белка. По сравнению с методом трифторуксусной кислоты и методом ферзиматического гидролиза севажный метод может содержать больше полисахаридных компонентов. Кроме того, севаж реагент относительно недорогой, прост в хранении и удобен в подготовке [26]. Ma Yinghui et al. [10] использовали севажный метод для удаления примесей белка из сырых полисахаридов родиолы роси с горы чанбай. Содержание очищенных родолевых полисахаридов роси было определено методом фенол-серной кислоты, а также проведены проверки оптимальных условий очистки. В оптимальных условиях очистки уровень содержания полисахаридов в очищенных полисахаридах родола роси составил 68%.

3 биологические функции родольных полисахаридов

3.1 антиоксидант

Антиоксидантный механизм полисахаридов характеризуется множественными путями, множественными целями и множественными эффектами. Антиоксидантный эффект полисахаридов достигается главным образом тремя путями: ликвидацией свободных радикалов, регулированием деятельности антиоксидантных ферментов, антагонизирующим оксидом азота [27]. Xu et al. [28] использовано Метиляция, чтобы доказать, что родиола полисахариды могут собирать DPPH, гидроксил и супероксид анионных радикалов, и поддерживать тело ' уровень свободных радикалов стабилен. Чжан юй [29] провел сравнительное исследование активных веществ в полисахаридах родиолы роси и обнаружил, что полисахариды родиолы роси оказывают сильное влияние на накопление DPPH ·. Лин сяойуэ и др. [30] использовали антиоксидантную модель in vitro для демонстрации того, что полисахариды родиолы обладают определенной способностью к отходу для OH ·, DPPH · и ·O2-. Гуо менг [31] провел проверку способности родиола полисахаридов к выпасу для гидроксильных радикалов и сверхоксидных анионов и обнаружил, что антиоксидантная способность родиола полисахаридов увеличивается с увеличением концентрации полисахаридов.

3.2 защита от травм

Ксу яо [32] использовал модель острой травмы печени, вызванной тетрахлорметаном у мышей, для исследования гепатозащитного воздействия полисахаридных липосом родиолы роси. Результаты показали, что в тканях печени увеличилась активность водорода пероксидазы в печени, сверхоксида дисмутазы и понизилось содержание глутатиона, а в тканях печени снизилась активность глютамической пировичной транзаминазы в сыворотке крови и глютамической оксилоуксусной транзаминазы и малодиалдегида в сыворотке крови. Сонг сяойонг и др. [33] пришли к выводу, что добавление полисахаридов родиолы повышает активность дисметазы супероксида и глутатиона пероксидазы в легочных тканях крыс и снижает уровни реактивного кислорода и малодиалдегида, что указывает на то, что полисахариды родиолы оказывают антиразрушающее воздействие на легочные клетки мышей, подвергающихся воздействию вторичного дыма. Полисахариды родиолы также оказывают определенное защитное действие от повреждений, вызванных радиацией. Huang Bingyang et al. [34] использовали полисахариды родиолы для вмешательства в ува-облученных крыс с целью наблюдения за защитным эффектом полисахаридов родиолы. Результаты показали, что родиола полисахариды могут восстанавливать повреждения, вызванные облучением уф.

3.3 регулирование гликолипидного метаболизма

Ling Yuesheng et al. [9] used streptozotocin + high-fat diet to induce a mouse diabetes model, and compared the liver glycogen content of mice at different polysaccharide concentrations. The results showed that rhodiola polysaccharides can promote glycogen synthesis and increase glucose utilization. Wang Suhua et al. [35] used a model of male rats intervened with rhodiola polysaccharides after intravenous injection of 4-hydroxy-2-oxopyrimidine to detect fasting blood glucose in diabetic rats and found that rhodiola polysaccharides can reduce lipid oxidative damage in pancreatic tissue, thereby reducing blood glucose in rats. Ding Wenfang [36] injected a certain amount of Rhodiola polysaccharide into the abdominal cavity of diabetic mice for 3 consecutive weeks, and detected the fasting tail vein blood glucose. It was found that Rhodiola polysaccharide can lower blood glucose levels. Shuihao Jie [37] used rhodiola polysaccharide to intervene in a diabetic rat model and measured the rats&#- 39; Голодая глюкозу крови, инсулин, гликоген печени и мышечный гликоген, и обнаружили, что полисахарид родиолы достиг гипогликемического эффекта, увеличив уровни инсулина, гликогена и мышечного гликогена. Мао [38] использовал полисахариды родиолы для отвода мышей и обнаружил, что полисахариды родиолы имеют высокий уровень глюкозы в крови и понижение липидов в крови.

3.4 антибактериальные и антивирусные средства

Qi Xiaoni et al. [39] исследовали ингибиторное воздействие полисахаридов родиолы на стафилококковый ауреус, эшерихию коли и бациллы и обнаружили, что полисахариды родиолы обладают определенной антибактериальной активностью и специфической селективностью для ингибирования различных бактериальных видов. Чжан йонг и др. [40] обнаружили, что полисахариды родиолы могут эффективно препятствовать повреждению клеток и размножению вирусов, вызываемых вирусом CVB3. Sun Fei et al. [8] использовали полисахариды родиолы для вмешательства в модель вирусного миокарда и анализировали активность антиоксидантных ферментов с помощью иммунологических показателей. Они обнаружили, что родиола полисахариды могут восстанавливать повреждения клеточных мембран, вызванные вирусом, повышать активность нк-клеток в селезенке, а также увеличивать показатель стимуляции лимфоцитов селезенки. Ян ци и др. [41] использовали сульфированные полисахариды альпийской родолы для лечения мышей, инфицированных вирусом CVB5. После того, как мыши приняли сульфаты альпийской родиолы полисахариды, активность супероксида крови значительно возросла, повреждения свободных радикалов клеткам тела уменьшились, а функции сердечной мышцы и различных органов были восстановлены и улучшены.

4 применение родольных полисахаридов в животноводстве

4.1 повышение эффективности производства

Добавление полисахаридов в рацион может способствовать абсорбции питательных веществ в animal'. Кишечник препятствует росту вредной кишечной флоры, снижает соотношение кормов к весу, повышает эффективность использования кормов и способствует росту животных. Li Jing et al. [42] пришли к выводу, что добавление полисахарида соединения растений в рацион отнятых свиней может значительно увеличить ежедневный прирост веса обычных отнятых свиней и уменьшить коэффициент преобразования кормов. Для тонких и слабых отнятых свиней и откормочных свиней, комбикормовый полисахарид растения может значительно увеличить ежедневный прирост веса и снизить коэффициент преобразования кормов, без существенного эффекта. Ченг [43] добавил полисахариды родиолы в рацион красных болотных раков и кормил их 8 недель. Было установлено, что красные болотные раки набирают вес, а эффективность кормления, выживаемость, общее количество кровяных клеток и количество гиалиновых клеток значительно выше, что указывает на то, что прием раков в пищу с полисахаридами родиолы может улучшить показатели роста раков.

4.2 повышение иммунитета

Родиола полисахариды имеют фармакологические функцииТакие как антибактериальные и антиоксидантные свойства, которые могут улучшить иммунитет и антиоксидантную функцию животных. Luo Wenzhe et al. [44] обнаружили, что родиола полисахариды могут увеличить долю CD4+ поднабора и соотношение CD4+/CD8+ у стареющей группы мышей модели, тем самым увеличив уровень интерлейкина сыворотки и содержание G иммуноглобулина у стареющих мышей, вернув их к нормальным уровням. Цай и др. [45] Разработаны in vitro и in vivo эксперименты, чтобы обнаружить, что родиола полисахариды могут способствовать производству интерлейкона -2, некроза опухоли фактор-альфа (TNF-α) и интерферон-гамма (IFN-γ) в сыворотке, и увеличить соотношение CD4+/CD8+ периферической крови T лимфоцитов у мышей, несущих опухоли. Парк и др. [46] обнаружили в эксперименте in vitro, что родиола полисахариды могут значительно увеличить количество конкретных клеток мышей, выделяющих антитела. Эксперименты In vivo показали, что родиола полисахариды при определенной концентрации могут усилить фагоцитную функцию макрофагов и снизить активность интерлейкона. Li Haixia et al. [47] использовали внутрибрюшинную и акциллярную прививки клеток U14 для создания мышей усиков U14 и модели твердых опухолей, а также продемонстрировали, что очищенные полисахариды горной родолы чанбаи могут значительно способствовать распространению мышей макрофагов и увеличить селекцию TNF-α и IL-1β макрофагов. Родола полисахариды могут препятствовать росту опухоли у мышей модели U14 с раком шейки матки, и механизм связан с улучшением иммунной системы мышей.

4.3 повышение устойчивости к напряжению

Высокогорная среда обитания может легко вызвать у животных стрессовую реакцию. Родола полисахариды обладают эффектом сопротивления холоду, гипоксии и неблагоприятному стрессу и могут эффективно улучшить стресс, вызываемый животными в высокогорных средах. Liu Yongqi et al. [48] показали, что холодный стресс и высокогорная гипоксия могут привести к снижению индекса тимуса и индекса сеплеенки мышей, а также к снижению распространенческой способности лимфоцитов сеплеенки. Использование родиолы роси для отлова мышей в гипоксической высокогорной среде может замедлить аномальное снижение индекса тимуса и индекса селезенки, а также аномальное снижение распространенческой способности лимфоцитов селезенки, что указывает на то, что родиола роси может уменьшить воздействие высокогорной среды на животных.

Рен вейхе [49] использовал родиолу роси для лечения мышей в течение 10 дней и обнаружил, что это может улучшить mice's терпимость к гипоксии, подавляет окислительный стресс в сердце, легких и мозговых тканях, вызванный гипоксией, и смягчает ущерб, причиненный гипоксией. Чжан чэнь и др. [50] добавляют сырую сухое сухое альпийскую родиолу в рацион тилапии, выращиваемый в условиях низких температур, и обнаруживают, что тилапиа' значительно повысилась способность s выдерживать низкие температуры. Ши сяофенг [51] наблюдал гипоксию и холодную переносимость мышей после того, как они получали смешанный экстракт родиолы перорально в течение 10 дней подряд, и обнаружил, что полисахариды родиолы обладают очевидными антистрессовыми возможностями. Таким образом, добавление полисахаридов родиолы в рацион может помочь животным преодолеть тяжелые условия гипоксии и низких температур в высокогорных средах.

4.4 повышение репродуктивной способности

При криоконсервации спермы, воздействии света и высоких уровней кислорода образуется большое количество свободных радикалов, которые повредит клеточные мембраны и сперму [52]. Длительное хранение вызывает перекисление липидов в кабарной сперме, снижение активности димутазы супероксида и увеличение содержания малодиалдегида. Необходимо добавить антиоксидантные компоненты во время криоконсервации спермы [53]. Родола полисахариды могут защитить качество спермы в сперме во время замораживания и оттаивания процесса. Cao et al. [54] обнаружили, что расширитель, дополненный полисахаридами родиолы, может улучшить деятельность дисметазы супероксида, лактата дегидрогеназы и трансаминазы оксалоацетата глютамата после того, как сперма заморожена и сохраняется, что указывает на то, что полисахариды родиолы могут дать быку более высокую криоконсервацию спермы во время процесса замораживания и оттаивания.

He Tao et al. [55] added different concentrations of rhodiola polysaccharides to the freezing dilution, and found that rhodiola polysaccharides can significantly improve the viability, plasma membrane integrity, acrosome integrity, mitochondrial activity and integrity of rooster sperm after freezing and thawing, indicating that rhodiola polysaccharides can improve the post-freezing viability of poultry sperm. Xilimeng et al. [56] measured the viability, acrosome integrity, plasma membrane integrity, mitochondrial activity, and 1. Глютатион(GSH) and malondialdehyde (MDA) levels of frozen and thawed goat sperm. They found that the addition of rhodiola polysaccharides to the dilution solution significantly improved the quality and antioxidant capacity of frozen goat sperm.

Чэнь сяойин и др. [57] обнаружили, что родиола полисахариды могут эффективно защитить сперму хранится при низких температурах и улучшить качество оттаившейся спермы. Родиола полисахариды могут защитить качество репродуктивных клеток и улучшить их потенциал развития. Yu Dongdong et al. [58] культурные сперматогониальные стволовые клетки на слое сертоли клеток и обнаружили, что добавление полисахарида родиолы к культурному слою значительно увеличило количество сперматогониальных стволовых клеток, культивируемых in vitro. Добавление полисахарида родиолы в систему культуры in vitro с клетками Sertoli, как трофоструйного слоя значительно способствовало распространению сперматогониальных стволовых клеток. Сюй ли и др. [59] пришли к выводу, что добавление надлежащей концентрации полисахаридов родиолы может повысить скорость ядерного созревания и способствовать цитоплазматическому созреванию в процессе созревания свиных оцитов. Таким образом, в животноводческом процессе родольский полисахарид может повысить репродуктивную способность животных путем содействия развитию клеток микробов.

5. Выводы

Rhodiola rosea polysaccharides can be extracted using various methods. Due to the particularity of its living environment, the chemical composition of rhodiola rosea polysaccharides is different from that of otherПолисахариды растений, and it has special pharmacological effects. Rhodiola polysaccharides have functions such as resisting cold, hypoxia, adverse stimuli, injury, lowering blood sugar, regulating glycolipid metabolism, resisting viruses and regulating immunity. Rhodiola polysaccharides have a regulatory effect on the adverse reactions of animals in high-altitude cold areas such as hypoxia, and can to a certain extent replace antibiotics and have therapeutic effects on animal diseases.

Справочные материалы:

[1] Лу липан, чжун гохуэй, тянь фай и др. Прогресс в исследованиях по родольским полисахаридам [J]. Наука и техника о лесном хозяйстве шаньдуна, 2013, 43(1): 91 — 95.

Состояние исследований родиолы [J]. Guangming традиционная китайская медицина, 2011, 26(7): 1508-1511.

[3] Li Xuetong, Wu Weilin, Quan Wurong. Исследование лекарственных растений рода родиола [J]. Журнал янбянского университета (сельское хозяйство), 2018, 40(4): 83 — 90.

[4] ван хао, лан сяочжун, Дэн хонг пин. Новый сорт родиолы из тибета: родиола джиари [J]. Acta Phytotaxonomica Sinica, 2020, 40(1): 174-180.

[5] ян вентин, чжан вэй, ян йидин и др. Исследование химического состава родиолы роси [J]. Капитал продовольствие и медицина, 2015 (22): 90-91.

[6] ган чаншэн, ван шаньшань, ли хонг и др. Исследование активности соединения родиола роси в ослаблении физической усталости [J]. Журнал продовольствия и биотехнологии, 2019, 38 (8): 134-141.

[7] Дэн шенго, инь айву, тянь ран и др. Антистареющий эффект полисахаридов от родиолы роси [J]. Китайский журнал геронтологии, 2014, 34(8): 2161-2162.

[8] сунь фей, сяо ренся, лю чжийи и др. Влияние альпийской родолы роси полисахаридов на некоторые иммунные функции и биохимические показатели в мышечной модели вирусной инфекции [J]. Китайский журнал комплексной традиционной и западной медицины, 2001 год (дополнение 1): 149-151.

[9] лин йешенг, ю шуцзе, чжоу бин и др. Экспериментальное исследование влияния полисахарида родиолы на траекторию сигнала печени PI3K/AKT/GSK3β in diabetic mice model [J]. Китайский журнал традиционной китайской медицины наука и техника, 2018, 25(6): 812-814.

[10] ма ингуй, сюн синь, ли юэ и др. Процесс экстракции и очистки полисахаридных компонентов родиолы роси от горы чанбай и его иммунологический эффект [J]. Китайский журнал ветеринарной медицины, 2021, 57(11): 90-95.

[11] Лу липан, чжун гохуэй, тянь фай и др. Анализ моносакхаридного состава полисахаридов родола роси различного происхождения [J]. Пищевая и ферментационная промышленность, 2013, 39(4): 213 — 215.

[12] тенг фей, гу янкин, шу дышит и др. Структурные характеристики и агонистская активность тlr4 двух родольных полисахаридов. Китайский фармацевтический журнал, 2021, 56(13): 1048-1053.

[13] Jiang K N, Cui Z B, Song X W, et al. Структурные характеристики полисахаридов родиолы роси [J]. West China Journal of Pharmacy, 2009, 24(2): 123-125.

[14] чжан у, чжан у у, чжу г л и др. Экстракция полисахаридов из каштанов и их антиоксидантная активность in vitro [J]. Пищевая и ферментационная промышленность, 2022, 48(1): 104-110.

[15] ши юньлонг. Прогресс в исследовании процесса извлечения полисахаридов ганодермы лучидума [J]. Специальные экономические животные и растения, 2022, 25(7): 69-71.

[16] He Fatao, Liu Guangpeng, Zhu Fengtao и др. Оптимизация комбинированного микроволнового-ультразвукового экстракционного процесса для полисакшаридов эриция эринацея и его антиоксидентной активности [J]. Журнал продовольствия и биотехнологии, 2019, 38(1): 74-82.

[17] чжан с, чэн х, Лу кси. Исследование по экстракции полисахаридов из порфиры езоэнсис методом ультразвуковой экстракции воды и протеазы [J]. Пищевые добавки китая, 2019, 30(1): 86-91.

[18] Li L H, Liu M X, Hu C, et al. Исследование по экстракции имбирных полисахаридов ультразвуковой экстракцией спирта-щелочи [J]. Современная пища, 2020 (6): 163-165, 169.

[19] Wu Shuhui, Hu Miaomiao, Wang Wei и др. Исследование процесса микроволновой экстракции галангальского полисахарида [J]. Журнал уханского университета легкой промышленности, 2021, 40(5): 102-107.

[20] Xu H, Liu Y, Kan H. научно-исследовательский прогресс в области экстракции и очистки природных полисахаридов и их физиологических функций [J]. Журнал безопасности и качества пищевых продуктов, 2022, 13(5):1382-1390.

[21] Bao N, Yu B, Sun Y. ультразвуковая экстракция растворителей из родиолы роси [J]. Журнал университета сучжоу, 2016, 31(12): 83 — 85, 90.

[22] Lv Lingxia, Xin Lihong, Guan Renwei и др. Прогресс в исследовании фармакологических эффектов и процесса экстракции полисахаридов хоторна [J]. Оценка лекарственных средств, 2016, 39(6): 1081 — 1085.

[23] сун пин, ли ян, цуй лин. Микроволновая экстракция и определение содержания полисахаридов из родиола стрикта [J]. Китайский журнал базовой традиционной китайской медицины, 2002 год (6): 24-25.

[24] ван ли, чжао хуа, ма ингли и др. Исследование по оптимизации ультразвукового экстракционного процесса полисахаридов из родиола сакалиненсис методом поверхностной реакции [J]. Наука и технологии пищевой промышленности, 2014, 35(14): 315 — 320.

[25] лю яньхун, тан сян, ли ялин и др. Научно-исследовательский прогресс в области извлечения и очистки активных полисахаридов и структурного анализа [J]. Китайская этнонародная медицина, 2020, 29(3): 67-73.

[26] Ding XJ, Pu ZH, Xiong L, et al. Оптимизация процесса очистки аконитного полисахарида и его токсичности [J]. Патентная медицина китая, 2019, 41(11):2737 — 2740.

[27] Dong C, Liu N, Wang Y и др. Прогресс в исследовании антиоксидантных повреждений полисахаридов растений и их применения в животноводстве [J]. Кормовые исследования, 2021, 44(14): 145-148.

[28] сюй й, цзян н, сунь с и др. Антиоксидантное и гепатозащитное действие очищенных полисахаридов родиолы роси [J]. Международный журнал биологических макромолекул, 2018, 117: 167 — 178.

[29] чжан ю. Исследование химического состава и антиоксидантной активности родиолы роси [D]. Чанчунь: цзилинский университет, 2021.

[30] линь сяоюэ, ци цзяру, ван дандан и др. Экстракция и in vitro антиоксидантная активность родиолы роси полисахариды [J]. Журнал бейхуа университета: естествознание издание, 2016, 17(3): 330-334.

[31] го м. исследование по экстракции и антиоксидантной активности родиола роси полисахаридов [д]. Фучжоу: фуцзянский университет сельского и лесного хозяйства, 2014.

[32] сюй ю. исследование гепатозащитной активности родиола роси полисахаридов и подготовки его липосамов [г]. Чженцзян: университет цзянсу, 2018.

[33] сон сяоюн, хуан биньян, ли синмин и др. Защитное действие полисахарида родола роси на окислительные повреждения легких крыс, вызванные пассивным курением [J]. Медицина окружающей среды и труда, 2015, 32(11):1062 — 1066.

[34] Huang B Y, Wei H, Zhou Q M, et al. Защитное действие полисахарида родола роси на окислительные повреждения, вызванные длинноволновым ультрафиолетовым излучением у крыс [J]. Экология и гигиена труда, 2012, 29(1): 31 — 33.

[35] Wang Suhua, Lu Jing' э. Защитное действие полисахарида родиолы на поджелудочную железу крыс гипергликемией, вызванной аллоксаном [J]. Китайский журнал традиционной китайской медицины, 2013, 31(5): 1176-1177, 1225.

[36] динь W F. воздействие полисахаридов родиолы на гликолипидный метаболизм у мышей, вызываемых стрептозотоцином [J]. Журнал гуанси колледжа традиционной китайской медицины, 2011, 14(2): 4-5.

[37] шуй H J. влияние полисахаридов родиолы на метаболизм глюкозы и инт-индозионные крысы типа 2 [J]. Китайский журнал традиционной китайской медицины, 2012, 30(12): 2759 — 2761.

[38] мао и м. гипогликемическая и гиполипидаемическая деятельность полисахаридов из родиолы роси у мышей кей. Журнал пищевой промышленности и консервации, 2017, 41(6): 13219.

[39] ци сяони, ма цзянюань, ся шийи и др. Подготовка антибактериальной съедобной пленки на основе полисахаридов родиолы роси [J]. Тонкие химикаты, 2019, 36(10): 2034 — 2039.

[40] чжан ё н, лю сяолей, лю сяолей. In vitro антиcvb3 - вирусная активность родиолы роси полисахариды [J]. Китайский журнал Hospital Pharmacy, 2009, 29(20): 1749 — 1753.

[41] янь к, юй к ф, рен г ф и др. Эффект сульфатного альпийского полисахарида родола на сод и лпо в крови мышей, зараженных вирусом [J]. Китайский журнал базовой медицины в традиционной китайской медицине, 1997 год (6): 30-32.

[42] Li J, Zhao J, Dai Y H, et al. Исследование влияния сложных полисахаридов растений на потребление кормов и увеличение веса свиней [J]. Шаньдун животноводство и ветеринария, 2021, 42(6): 8-10.

[43] чэнг Y X. показатели роста и неспецифический иммунитет красноболотных раков прокамбаруса кларкии, страдающих от родоларозейской полисахаридной диеты [J]. Иммунология рыб и моллюсков, 2019, 93: 796-800.

[44] Лу вэньчжэ, ван цзяньцзе, руан ян и др. Влияние полисахарида родиолы роси на иммунную функцию у старых мышей [J]. Китайский журнал геронтологии, 2009, 29(11): 1360 — 1361.

[45] цай з, ли у, ван х и др. Антиопухолевые эффекты очищенного полисахарида от родиолы роси и его механизма действия. Углеводы полимеры, 2012, 90(1): 296-300.

[46] пу хуа, ли юншен, ли хонхуа и др. Иммунопатологический эффект альпийской родолы роси полисахарида на мышей [J]. Янбийский университетский медицинский журнал, 2000 (4): 251-254.

[47] ли хайся, чжан вэй. Экспериментальное исследование терапевтического эффекта и механизма родольского полисахарида у мышей модели U14 с раком шейки матки [J]. Китайская материя медика, 2017, 40(6): 1453 — 1456.

[48] лю юнци, Лу яли, ан фаню и др. Влияние полисахарида ангелики и родиолы роси на функции лимфоцитов у мышей с холодным стрессом и высотными моделями гипоксии [C]//9 - я национальная конференция иммунологии. Цзинань: китайское общество иммунологии, 2014.

[49] рен вейхе. Исследование механизма экстракта родиолы роси повышение толерантности мышей к высокогорной гипоксии [D]. Ланьчжоу: северо-западный университет национальностей, 2022.

[50] чжан чэнь, ян чангенг, вэнь хуа и др. Эффект добавления родиолы роси для питания на низкую температурную толерантность тилапии [J]. Пресноводные рыбные промыслы, 2016, 46(5): 75-80.

[51] ши хф. Экспериментальное исследование антистрессовых эффектов экстракта соединения родиола [J]. Медико-санитарное профессиональное образование, 2003 год (7):135.

[52] махфуз р, шарма р, тиягараджан а и др. Характеристики спермы и фрагментация ДНК спермы у бесплодных мужчин с низким и высоким уровнем семенного реактивного кислорода видов [J]. Рождаемость и здоровье Бесплодие, 2010, 94(6): 2141-2146.

[53] чжу линвей. Исследование влияния гш и ДСП на сохранение комнатной температуры свиной спермы [D]. Янглинг: северо-западный университет A&F, 2015.

[54] цао H, Sun X, Li Q, et al. Тестирование родиоласачалинensissaccharide в качестве криопротестанта для сперматозоидов крупного рогатого скота. J молочные продукты Sci, 2013, 96(11): 6965-6972.

[55] хэ тао, чжао на, го лян и др. Влияние добавления трех полисахаридов к разбавлению спермы курицы на выводимость яиц [J]. Животноводство и птицеводство, 2020, 31(12): 34 — 35.

[56] СИ лимен, Лу цзюнь, ван вэй и др. Исследование о защитном воздействии полисахарида родиолы роси на сперму коз во время криоконсервации [J]. Китайский журнал Animal Science, 2014, 50(19): 32-36.

[57] чэнь сяоин, ма цзиньё, сон тяньцзинь и др. Исследование влияния полисахарида родиолы на сохранение тибетской свиной спермы в 4 грава. Свиноводство, 2016(6): 33 — 36.

[58] ю д, генг г, чжан с и др. Влияние полисахаридов родиолы на распространение in vitro молодых мышей сперматогониальных стволовых клеток. Журнал Animal Science and Biotechnology, 2013, 4(7): 54-57.

[59] сюй ли, дай цзянцзюнь, чжан тингю и др. Воздействие полисахаридов родиолы на созревание in vitro и потенциал развития свинины oocytes [J]. Журнал ветеринарии и ветеринарии, 2013, 44(4): 557-561.