Что такое астаксантин?

- астаксантинis A/данные отсутствуют.type Соединенные Штаты америкиcarotenoid that not only hПо состоянию на 31 декабряa good coloring Воздействие на окружающую средуПо состоянию наaquatic animals, but also has В настоящее времяeffect Соединенные Штаты америкиpreventing discoloratiПо состоянию наиdeterioration иkeeping the - продукты питанияfresh[1]. AstaxanthВ случае необходимостиhas functions such as high-efficiency anti-oxidation, anti-cancer, immune enhancement, eye protection иcentral nervous system protection, иis currently widely used В случае необходимостиthe Производство и продажаСоединенные Штаты америкиmedicine, feed, food иcosmetics[2]. - астаксантинsources include artificial synthesis and По окружающей средеextraction. At present, the common natural astaxanthВ случае необходимостиproducts at home and abroad are mainly derived from aquatic product waste, microorganisms and genetically modified plants. In the aquaculture industry, - астаксантинis mainly used as a new and highly effective feed additive and is widely used.

1 введение в астаксантин

AstaxanthВ случае необходимостиhas the molecular formula C40H52O4. It is a fat-soluble and water-soluble pigment. Crystalline - астаксантинhas a melting point Соединенные Штаты америки224°C. It is a dark purple-brown powder with a pink color. It is insoluble in water, but soluble in organic solvents such as acetone, benzene and chloroform. Astaxanthin is widely found in living organisms, especially in fish, shrimp, crab, and the feathers Соединенные Штаты америкиbirds such as flamingos and ibises, as well as in the flesh Соединенные Штаты америки- лосось, лосось.and trout, and the shells Соединенные Штаты америкиshrimp and crab. Animals cannot synthesize astaxanthin on their own, and although some crustaceans can convert other carotenoids inПо адресу:astaxanthin, they cannot meet their body's потребности, так что они должны быть поглощены от пищи. Большинство морских рыб и ракообразных содержат астаксантин, который, как правило, получают из фитопланктона и зоопланктона через пищевую цепь [3-4]. Астаксантин не только придает водным животным хороший внешний вид, но и является важным питательным веществом для роста и развития животных.

Молекулы астаксантина имеют одну гидроксиловую группу (- o) на каждом конце циклической структуры, которая может образовывать моноэфиры и диестеры с жирными кислотами. Группы эстерифицированных организмов служат мостом для астаксантина, связывающим его с белками. Свободное или эстерифицированное состояние влияет на стабильность астаксантина в организме, степень связывания белков и скорость метаболизма. Например, поверхность живых здоровых креветок и крабов зеленая, а при приготовлении она становится оранжево-красной, что вызвано отделением эстерифицированного астаксантина от белка.

2 формы и источники астаксантина

2.1 формы астаксантина

Астаксантин по-разному распределяется среди различных животных и тканей и более устойчив при хранении в живых организмах. Неокисляемый астаксантин-это эстерифицированный астаксантин. Кожа, Весы и Весы рыб в основном содержат эстерифицированный астаксантин, в то время как мышцы, плазма крови и внутренние органы в основном содержат свободный астаксантин. У ракообразных, таких как крабов и креветок, эстерифицированный астаксантин в основном осаждается на скорлупе, гонадах и гепатопанкреях.

2.2 астаксантинские источники

Currently, the mature astaxanthin production processes include biological extraction and chemical synthesis. Common natural astaxanthin is mainly derived from aquatic product waste, microorganisms and genetically modified plants. Molecular structure - астаксантина(Figure 1): four isoprene units are linked in the form Соединенные Штаты америкиa conjugated unsaturated double bond. The long conjugated unsaturated double bond structure is very sensitive to light, heat, acids, alkalis, oxides and enzymes [5]. Therefore, how to optimize the extraction process to extract natural astaxanthin with maximum efficiency has become an international research hotspot.

2.2.1 метод химического синтеза

Существует два метода синтеза астаксантина: прямой и косвенный синтез. Метод прямого синтеза обычно использует синтетические мономеры каротеноидов для прямого синтеза, в то время как метод косвенного синтеза получает астаксантин путем окисления других каротеноидов. Процессы синтеза обоих методов очень сложны, полученный астаксантин является 100% свободным, и в основном в СНГ конфигурации (природный астаксантин в основном в транс конфигурации).

2.2.2 извлечение из отходов водной переработки

В 2022 году#39; годовой объем производства водных продуктов достигнет 68,69 млн. тонн. Отходы водных продуктов являются богатым ресурсом, и извлечение астаксантина из отходов водных продуктов может принести огромные экономические выгоды и способствовать устойчивому развитию China'. Аквакультура. Традиционные методы экстракции астаксантина включают в себя экстракцию щелочи, растворение нефти, экстракцию сокшлета и экстракцию органических растворителей. В последние годы для извлечения астаксантина с низким потреблением и высокой эффективностью используются такие новые методы, как ферментативная экстракция, кавитация отрицательного давления, гомогенизация высокого давления, ионические жидкости, импульсные электрические поля и сверхкритическая экстракция жидкости.

Zu Yuangang et - эл. - привет.[6] провели предварительное исследование различных технологических условий экстракции астаксантина методом кавитации отрицательного давления и получили оптимальные параметры экстракционного процесса: экстракционный растворитель 80% этанола по массе, время экстракции 35 мин и объем аэродирования 0,2 м3 / ч. Мартинес и др. [7] сравнили показатели извлечения астаксантина из гематококковой плувиалиса путем пульсированной обработки электрическим полем, шлифования, оттепели, термической обработки и ультразвуковой обработки. Результаты показали, что коэффициент извлечения астаксантина после обработки импульсного электрического поля составил 96%, а самый высокий коэффициент извлечения других методов извлечения — 80%.

Чжанг е и др. Было установлено, что при соотношении активности фермента целлюлазы и пектиназы 1:1 (U/ U), объем фермента 7 000 U/mL, pH 4.9, температура 49 ℃, время 6 ч, скорость экстракции астаксантина 71.08%, а метод композитного фермента прост, мягкий, зеленый, безопасный и эффективный. Кроме того, постоянно разрабатываются методы очистки астаксантина, такие как колоннохроматография, высокопроизводительная жидкостная хроматография, рекристаллизация, высокоскоростная противотоковая хроматография. Содержание астаксантина в отходах водных продуктов относительно низкое, а процесс извлечения является сложным и дорогостоящим. Поэтому рентабельная добыча астаксантина стала актуальной проблемой для производственной отрасли.

2.2.3 производство микробов

Многие типы естественных микроорганизмов (водоросли, грибы, бактерии и т.д.) могут синтезировать природный астаксантин. В настоящее время наиболее широко изученными и используемыми для производства являются ксантофилломицисы дендрорхоус и гематококковая плавиалиса [9-10]. Хороший Xanthophyllomyces дендроргный штамм может аккумулировать astaxanthin, составляя около 0,5% сухого веса, и процесс ферментации является зрелым, так что продукт может быть получен в короткий срок [11]. Однако она в значительной степени зависит от условий ферментации, таких, как источник углерода, источник азота, температура, pH и растворенный кислород, и стоимость ферментации высока. Производимый astaxanthin является декстрорзным изомером с низкой антиоксидантной активностью, поэтому Xanthophyllomyces dendrorhous не может быть использован как лучший натуральный инструмент производства astaxanthin.

Основным производственным инструментом в настоящее время является HaematoКокк (coccus)pluvialis, который может аккумулировать astaxanthin составляет от 4% до 5% сухого веса штамма. Тем не менее, условия роста гематококковой плавиалисы чрезвычайно суровы, с высокими требованиями к качеству воды, свету и культурной среде требуют, культурный цикл длинный, технические требования строгие, а накопление астаксантина в организме происходит в стрессовых условиях, которые не подходят для накопления клеточной биомассы. Поэтому масштабное производство затруднено [12-13].

2.2.4 производство генетически измененных растений

Прекурсоры "грау-каротин" и "грау-каротин гидроксилаза", необходимые для синтеза астаксантина, широко распространены на более высоких растениях, однако они не содержат грау-каротин кетолазы и поэтому не могут синтезировать астаксантин. В настоящее время успешно проводятся исследования по внедрению граватно-каротеновой кетолазы в растениях по производству астаксантина в табаке [14-15], картофеле [16], арабидопсе [17], лотосе [18], кукурузе [19] и других растениях. Однако содержание астаксантина, получаемое трансгенными растениями, является нестабильным, и существуют такие проблемы, как накопление промежуточных метаболитов. Таким образом, открытие и использование plant'. Собственные гены астаксантина, связанные с синтезом (например, лепестки маригольдового завода содержат астаксантин, содержание которого составляет около 1% сухого веса лепестков [20]), станут важным направлением исследований генной инженерии астаксантина.

3 применение астаксантина в аквакультуре

Astaxanthin используется в пищевой, фармацевтической и кормовой промышленности, но в настоящее время в основном используется в аквакультуре в качестве новой и высокоэффективной кормовой добавки.

3.1 цветовое воздействие

Астаксантин может сочетаться с различными видами белка для производства красного, оранжевого, желтого, зеленого, синего, фиолетового и других цветов.

3.1.1 содействие окраске выпасной Рыбы

Добавление 1Астаксантин на кормcan make the skin and muscles Соединенные Штаты америкиfarmed fish such as salmon and sturgeon appear bright red, and the meat tastes more delicious [21]. Nickell et al. [22] found that the coloring degree and efficiency of astaxanthin increased with the increase of the content of lipid substances in the feed by feeding rainbow trout with feed of different fat levels. Zhang Chunyan et al. [23] found that the redness and yellowness values of the muscle of Oncorhynchus mykiss were significantly higher in the group Федеральный резервный фонд1.0 g/kg Синтетические продукты (синтетические продукты)astaxanthin and the group fed 0.1 g/kg astaxanthin-containing - гематококкpluvialis extract than in the control group.

Nogueira et al. [24] установили, что пищевые добавки с астаксантином (50 или 80 мг/кг в течение 6 месяцев); Или 50 мг/кг в течение 3 месяцев, затем 80 мг/кг в течение 3 месяцев) оказали положительное влияние на тонус кожи и хрома спинного плавника и хвоста красного мозоли, а тонус и значения хрома были близки к значениям дикого человека. Li Yao-peng et al. [25] выбрали более 170 000 триплоидных радужных форель (Oncorhynchus mykiss) со средним весом около 1 кг для проведения экспериментального испытания на воздействие уровней астаксинтина в рационе питания на показатели роста, урожайность и окраску мышц.

Было установлено, что добавление 40 мг/л и30 mg/L astaxanthin to the feed, respectively, and feeding it 7 months and 9 months before the rainbow trout is marketed, the meat color can meet the standards. Wang Hongyu et al. [26] fed hexagramma otakii (Hexagrammos otakii) with astaxanthin-added feed. The results after 60 days showed that when the additive amount was 0.10%-0.20%, the brightness, redness, and yellowness of the dorsal surface of the fish, the redness and yellowness of the abdomen, and the brightness and yellowness of the tail were significantly higher than those of the control group. When the additive amount was 0.05%-0.20%, the astaxanthin deposition on the dorsal, abdominal, and caudal skin of the fish was significantly higher than that of the control group. were significantly higher than those of the control group. When the additive content was 0.05% to 0.20%, the astaxanthin deposition on the skin of the back, abdomen and tail of the fish was significantly higher than that of the control group.

3.1.2 содействие окраске декоративной Рыбы

Цвет тела декоративной Рыбы обусловлен накоплением в организме пигментов астаксантина и кантаксантина, которые производят панхроматический цвет. Декоративная рыба не может синтезировать эти два пигмента и должна получать их из корма. Корм для декоративных рыб должен отвечать потребностям как роста и развития Рыбы, так и необходимости поддержания ее яркого цвета тела. Astaxanthin, как лучший доступный краситель, может помочь декоративной рыбе сохранить свой яркий цвет тела. Чэнь сяомин и др. [27] обнаружили после 60- дневного эксперимента, что добавление 60 мг/кг астаксантина в корм может сделать окраску золотых рыб более естественной и живой. Ван руй и др. [28] пришли к выводу, что добавление 30 мг/кг астаксантина в корм может значительно улучшить воздействие осаждения пигмента на гуппиев, красных мечей и золотых рыб.

Sun Xueliang et al. [29] изучали сочетание астаксантина с различными носителями (фосфолипидами, витамином е) и обнаружили, что сочетание астаксантина с двумя носителями витамина е и фосфолипидами значительно улучшает цвет тела попугаев. Ван юньхуй и др. [30] изучили влияние астаксантина на цвет тела кои карпа (Cyprinus carpio L.) и обнаружили, что значения красности и желтости в цвете тела достигли максимума, когда добавление астаксантина составило 400 мг/кг.

3.1.3 цветовое воздействие на креветок и крабов

The body color of shrimp and crab determines their market value. Astaxanthin combines with chitin in shrimp and crab to appear greenish-blue. After high-temperature heating, the protein is separated from the original astaxanthin, and the color changes to orange-red. Jin Zhengyu et al. [31] fed Макробрачий (макробрачий)rosenbergii with 60 mg/kg astaxanthin для35 days. The results showed that the total carotenoid content in the shrimp was the highest (119.38 g/kg), which was 40% higher than that of the control group. Chien et al. [32] added 50 and 100 mg/kg astaxanthin in the feed of Japanese tiger prawns, and after 63 days, it was found that the deposition rate of astaxanthin in the shell and muscle of the prawns had significantly increased.

Long et al. [33] добавлено порошок Haematococcus pluvialis, который богат естественным астаксинтином, к корму взрослых китайских крабов-мышей (Eriocheir sinensis), и обнаружили, что покрасненность крабовых яичников и карапесов значительно возросла с увеличением количества порошка Haematococcus pluvialis. Это было также подтверждено Su Fang's [34] эксперименты, в ходе которых было установлено, что питание китайских крабов-мышей питанием Haematococcus pluvialis может значительно улучшить цвет и качество крабовых продуктов, со значительным увеличением астаксинтина содержания яичников, гепатопанкрей, карапачей и эпидермисов крабов. Существует значительное соотношение доза-эффект, и чем выше добавление гематококковой плювиалис, тем выше накопление астаксантина в организме. Ma Nan et al. [35] предположили, что добавление синтетического астаксантина к корму для откорма может значительно увеличить общее содержание каротеноидов, цвет и антиоксидантную способность головы и грудной клетки, печени и поджелудочной железы, а также яичников китайского крабов-мышей, и предположили, что синтетический астаксантин, добавляемое к корму для откорма крабов-женщин, должен составлять около 90 мг/кг.

3.2 сильный антиоксидантный эффект

Shimidzu et al. [36] обнаружили в исследовании in vitro, что астаксантин имеет более высокую способность гасить синглет кислорода и собирать свободные радикалы, чем лютейн и зеаксантин, и это было также подтверждено ли и др. [37]. Ван цзицяо и др. [38] кормили юного апостишопуса джапоника кормом, содержавшим 30, 60 и 90 мг/кг грава-каротина и астаксинтина, соответственно, в лабораторных условиях температуры воды 11,0-20,0 грава, солености 35 и pH 7,5. После кормления в течение 80 д было установлено, что средняя общая антиоксидантная емкость жидкости полости тела групп, дополненных астаксантином (12,77 у/мл), была выше, чем у групп, дополненных гравом-каротином (8,7). Через 80 дней было установлено, что среднее значение общей антиоксидантной способности (12,77 U/ мл) жидкости полости тела каждой группы Apostichopus japonicus, питаемой астаксантином, было на 45,61% выше среднего значения (8,77 U/ мл) каждой группы, питаемой грау-каротином, что указывает на то, что антиоксидантная способность астаксантина выше, чем грау-каротин.

Feng Minglei et al. [39] добавляют 31,50 мг/кг красного дрожжевого рис astaxanthin (P-AST) и 32,96 мг/кг синтетического astaxanthin (S-AST) в корм для корма, соответственно, и скармливают радужную форель в течение 112 дней. Они обнаружили, что как S-AST, так и P-AST могут регулировать функцию антиоксидантной системы и генов обмена липидов в красной мышце радужной форели. После кормления радужной форели 31,50 мг/кг P-AST и 32,96 мг/кг S-AST в течение 112 дней было установлено, что как S-AST, так и P-AST могут регулировать функцию антиоксидантной системы в красной мышцах радужной форели и выражение генов, связанных с липидным метаболизмом.

Wang Zhaoxin et al. [40] designed three kinds of feed with different concentrations of astaxanthin by adding Astaxanthin Plus (containing 10% astaxanthin) to an isonitrogenous and isoleucine-rich feed, and fed it to Litopenaeus vannamei prawns. After 112 days, the study showed that adding an appropriate amount of astaxanthin to the feed can improve the antioxidant capacity and immune function of the prawns. In terms of food preservation, Han Qingyou [41] found that astaxanthin can not only be used in the preservation of fruits and foods, but also provide a scientific basis for extending the shelf life of fruits. Li Nian et al. [42] showed that a shrimp-astaxanthin-carboxymethylchitosan composite coating of 60 and 90 mg/L is a safe, effective, and feasible method for preserving Litopenaeus rossensis. It can inhibit the decline in sensory quality of Litopenaeus rossensis during refrigeration, delay lipid oxidation, and extend the shelf life of Litopenaeus rossensis by 3–4 days.

3.3 антистрессовое воздействие

Jyonouchi et al. [43] показали, что астаксантин может повысить активность Th1 (T helper cell 1) и Th2 (T helper cell 2) в гумно-иммунной реакции, а также увеличить производство иммуноглобулинов IgA, IgM и IgG, чтобы животные имели более высокую иммунную регулирующую активность. Чжан и др. [44]пришли к выводу, что добавление 125-150 мг/кг астаксантина в рацион креветок ванамея может повысить антиоксидантную способность креветок и их устойчивость к гипоксическому стрессу. Цзян и др. [45] обнаружили, что добавление порошка Haematococcus pluvialis в рацион питания молодых китайских крабов-мышей может снизить смертность молодых крабов во время стресса аммиака. Xie et al. [46] обнаружили, что добавление гематококковой плювиалисы снижает воспалительную реакцию в golden pomfret (Trachinotus ovatus) после 80 дней кормления и острого гипоксического стресс-теста (1,2 мг/л). Тискар и др. [47] показали, что после 70 дней кормления рациона, содержащего астаксантин (50-150 мг/кг), японские креветки пруда (Macrobrachium nipponense) могут выдерживать различные физические и химические нагрузки, такие как гипоксия, аммиак и холодный стресс.

3.4 содействует росту, воспроизводству и развитию

Adding astaxanthin to the feed can significantly improve the growth and reproductive performance of rainbow trout, increase the survival rate of young shrimp, the buoyancy and survival rate of fish eggs, and increase the fertilization rate, survival rate and growth rate of salmon eggs. Jin Zhengyu et al. [31] showed that astaxanthin can significantly increase the weight gain rate of Litopenaeus vannamei. Li Chenlu [48] showed that astaxanthin has a significant alleviating effect on the oxidative stress response and oxidative damage caused by microcystin in zebrafish (Barchydanio rerio var.), and the higher the astaxanthin concentration, the better the effect on improving oxidative stress in the body. Wang Zhaoxin et al. [40] showed that adding the right amount of astaxanthin to the feed can increase the ovary yolk protein content, fertilized egg hatch rate, larval metamorphosis rate, and the number of amoeboid larvae and copepod larvae, thereby improving the reproductive performance of the parent shrimp.

4 безопасность и перспективы применения астаксантина

Astaxanthin встречается в больших количествах в повседневной пище. Креветки и крабовые продукты содержат 80-100 мг/кг астаксантина, дикий сокеев лосось содержит 30-58 мг/кг, средняя концентрация астаксантина у рыб около 40 мг/кг и средняя концентрация астаксантина у моллюсков около 10 мг/кг. В последние годы результаты многих токсикологических исследований на животных и людях также показали, что астаксантин является безопасным и нетоксичным [49 — 50].

Благодаря своим важным физиологическим функциям и экономической ценности астаксантин имеет большой потенциал применения в аквакультуре, пищевых добавках, косметике и фармацевтической продукции. С развитием различных отраслей внутри страны и за рубежом спрос на астаксантин будет продолжать расти. В настоящее время синтез и извлечение астаксантина на международном уровне, как правило, имеют недостатки, связанные со сложными методами синтеза и извлечения, низкой урожайностью и высокой стоимостью, и не могут удовлетворить потребности крупномасштабного коммерческого производства. Использование современной биотехнологии для проведения исследований по разведению высокоурожайных штаммов астаксантина имеет широкие перспективы развития и применения и должно быть включено в ключевые исследовательские планы.

Ссылка:

[1] ли янян, чжай чжанцзюнь, чжан йинфа и др. Применение астаксантина в аквакультуре [J]. Журнал пекинского сельскохозяйственного колледжа, 2009, 24 (2): 78-80.

[2] сюй хайян, као бин, чэнь цзин и др. Биологические функции и применение астаксантина [J]. Угол подачи широкий, 2012 (11): 23-25.

[3] бегум х, юсофф ф м, банерджи с и др Износостойкость и использование пигментов микроводорослей [J]. В важнейших проблемных областях Отзывы о компании in  food  Наука и техника and  Питание,2016,56(13): 2209-2222.

[4] 3. Итрестой - ти, афанасьев  - с, руйтер  B,et Al. Расшифровка and  Функциональные возможности системы  Ответы на вопросы to  Отсутствие на рабочем месте of astaxanthin  in  В атлантическом океане salmon  fed  Низкий уровень дохода Морская пехота Диета [J]. Сравнительная биохимия и физиология часть D: геном адуикс и протеомика,2021(39):100841.

[5] хуан вэньвэнь, хон бихон, и руижао и др. Научный прогресс по методу производства и биологической активности астаксантина [J]. Пищевые добавки китая, 2012 (6): 214-218.

[6] цу юанган, лю лина, сюэ яньхуа и др. Экстракция астаксантина методом кавитации отрицательного давления [J]. Журнал северо-восточного лесного университета, 2007, 35 (2): 59-60.

[7] MARTINEZ - J.M,GOJKOVIC Z,FERRO L,et al. Использование пропитывания импульсного электрического поля для извлечения astaxan⁃ thin из скандинавского микроалга Haematococcus pluvialis [J]. Биоресурсная технология,2019(289):121694.

[8] чжан е, лю чживей, тан синхе. Методика поверхностной реакции для оптимизации экстракции астакзантина из плювиалиса alga Haematococcus с использованием композитного фермента [J]. Наука и технологии пищевой промышленности, 2019, 40 (22): 87 — 92.

[9] Господин боканегра A/данные отсутствуют. R, ponсе-noyola T, торрес-муньос J   - A. Astaxanthin  production  Автор: фаффия родозима И Haematococcus pluvialis:a Com ⁃ parative Исследование [J]. Применение на практике 1. Микробиология and  Biotechnol ⁃ ogy,2007,75(4):783-791.

[10] HAQUE F,DUTTA/данные отсутствуют.A,THIMMANAGARI M,et al. In⁃ Тензифицированное зеленое производство астаксантина от Haemato⁃ coccus  Плювиалис [J]. - продукты питания and  1. Биопродукты Переработка, 2016(99):1-11.

[11] VISSER H,VAN OOYEN A J J, verdo J C. Meta⁃ bolic engineering of the astaxantin -biosynthetic path⁃ way of Xanthophyllomyces dendrorhous[J]. FEMС. Sдрожжевые исследования,2003,4(3):221-231.

[12] LORENZ R T,CYSEWSKI G R. Commercial potential for  Haematococcus  - микроводоросли as  a  natural  Источник: of  Astaxanthin [J]. Тенденции в области биотехнологии,2000 год,18(4): 160-167.

[13] OROSA M,TORRES E,FIDALGO P,et al. Производство и анализ вторичных каротеноидов в зеленых водорослях [J]. Журнал прикладной филологии,2000,12(3-5):553-556.

[14] GERJETS T,SANDMANN M,ZHU C F,et al. Метаболизм Проектирование биосинтеза кетокаротеноидов в листьях и - цветы, цветы. of  3. Табак Вид [J]. B. биотехнология Журнал, 2007,2(10):1263-1269.

[15] Хасунума т, миядзава S  Я-йошимура S,et al. Биосинтез астаксантина в табачных листьях методом трансгравитационной пластики [J]. Журнал растений: для клеточной и молекулярной биологии,2008,55(5):857-868.

[16] MORRIS W L,DUCREUX L J M,FRASER P D,et al. Engineering ketocarotenoid biosynthesis in potato tubers [J]. Метаболическая инженерия,2006,8(3):253-263.

[17] стальберг к, линдгрен о, эк б, и др. синтез - кетокаротеноиды in  the  - семенной картофель of  Арабидопсис (арабидопсис) Тальяна [дж]. Журнал растений: для клеточной и молекулярной биологии,2003, 36(6):771-779.

[18] < < судзуки > > - с, нишихара - м, накацука T,et, Al. Изменение цвета цветов в Lotus japonicus путем изменения гравюры каротеноидного биосинтетического пути [J]. Отчеты о растительных клетках,2007,26(7):951-959.

[19] ZHU C F,NAQVI S,BREITENBACH J, и др. комбина ⁃ torial genetic transformation генерирует библиотеку мета ⁃ bolic phenotypes для каротеноидных путей в кукурузе [J]. Труды национальной академии наук США Государства-участники of  Америка,2008,105(47):18232 — 18237.

[20] маока т, этох т, кисимото с, и др. Журнал олео науки,2011,60(2):47-52.

[21] юй сяодун, яо вейчжи, луан хуини и др. Развитие астаксантина и его применение в аквакультуре [J]. Feed Expo, 2005 (4): 42-45.

[22] NICKELL D C,BROMAGE N R. влияние уровня липидов в рационе питания на изменение пигментации плоти в радужной форели (Oncorhynchus mykiss)[J]. Аквакультура,1998,161 (1-4):237-251.

[23] чжан с, Дэн X, яо W и др. Влияние астаксантина из различных источников на показатели роста, цвет мяса и антиоксидантную способность радужной форели [J]. Корм для животных, 2021, 33(2): 1008-1019.

[24] NOGUEIRA N,CANADA P,CABOZ J,et al. Влияние различных уровней синтетического астаксантина на рост, цвет кожи и липидный метаболизм коммерческих размеров red porgy (Pagrus Pagrus)[J]. Корм для животных Наука и техника Технол астрагогия,2021(276):114916.

[25] Li Y, Yang X, Gong B, et al. Обсуждение стратегии добавления астаксантина в корм триплоидной радужной форели [J]. Hebei Fisheries, 2023(1): 5-7.

[26] ван хуню, чэнь янь, чжан йивен и др. Влияние астаксантина на рост, цвет тела и антиоксидантную способность юного японского угря (ангилья японика) [J]. Сельское хозяйство юга, 2023, 17(9): 197201.

[27] чэнь сяомин, сюй сюэмин, цзинь чженю. Эффект astaxantin-богатые фавус дрожжи на цвет тела золотой рыбки [J]. Китайский журнал науки о рыболовстве, 2004, 11(1): 70-73.

[28] ван жуй, фей сяохон. Исследование по применению четырех усилителей цвета в декоративной рыбе [J]. Beijing Fisheries, 2005(4): 37-38.

[29] сун сюэлян, чжи янбин, бай дунцин и др. Влияние астаксантиновой смеси на окраску и физиологическую функцию попугаев [J]. Наука о сельском хозяйстве, 2017, 45(14): 143 — 145.

[30] ван цзюньхуэй, сян цзяньли, чжан дуньян и др. Влияние астаксантина в кормах на рост, цвет тела, антиоксидантную способность и иммунитет кои карпа [J]. Журнал питания животных, 2019, 31(9): 4144-4151.

[31] цзинь чженю, го шидун, Lv Yuhua. Эффект добавления астаксантин-богатые фавичского дрожжей питаться на цвет тела и рост литопенаев ваннамей [J]. Кормовая промышленность, 1999, 20(10): 29-31.

[32] CHIEN Y H,SHIAU W of  - водоросли and  synthetic  astaxanthin  on  Astaxanthin,survival,growth,and low ⁃ oxygen stress - сопротивление;of kuruma prawn,Marsupenaeus japoni cus Bate[J]. Журнал экспериментальной морской биологии и экологии,2005,318(2):201-211.

[33] LONG X W,WU X G,ZHAO L,et al. Эффекты пищевых добавок с Haematococcus pluvialis клеточной pow⁃ deron раскраски, развития яичников и антиокислительной способности взрослых китайских комаров-кров,Eriocheir sinensis[J]. Аквакультура,2017(473):545 — 553.

[34] су фан. Структурные характеристики распределения каротеноидов в водорослях, креветках, крабах и рыбах и изучение астаксантиновой изомеризации [D]. Циндао: университет китайской академии наук (институт океанологии китайской академии наук), 2018 год.

[35] ма нан, лонг сяоуэн, чжао лей и др. Эффект синтетического астаксантина добавляется к кормам для развития гонадов, цвета кожи и антиоксидантной способности взрослых китайских комаров-мышей (Eriocheir sinensis) [J]. Acta Hydrobiologica Sinica, 2017, 41(4): 755-765.

[36] SHIMIDZU N,GOTO M,MIKI W. Carotenoids as singlet oxygen quenchers in marine организмы [J]. Sci ⁃ ence,1996,62(1):134-137.

[37] LEE S H,MIN D B. эффекты, механизмы гашения и кинетика каротеноидов в фотогравитационном окислении с повышенным содержанием хлорофилла - соевые бобы. Масло [J]. Журнал по теме of  В сельском хозяйстве И пищевая химия,1990,38(8):1630-1634.

[38] Wang JQ, Fan YY, Xu ZX и др. Влияние гравитационного каротина и астаксантина на рост и антиоксидантную способность ювенальной имитации морских огурцов [J]. Журнал далянского океанского университета, 2012, 27(3): 215 — 220.

[39] фэн минглей, ван лей, лонг сяоуэн и др. Влияние астаксантина из различных источников на антиоксидантный и липидный метаболизм красной мышцы радужной форели [J]. Китай Feed, 2023(1): 82-88.

[40] ван чжаосин, лян менгцин, вей юлян и др. Влияние астаксантина на репродуктивную функцию, антиоксидантную способность и иммунную функцию креветок ванамея (Penaeus vannamei) [J]. Журнал питания животных, 2023, 35 (2): 1195-1205.

[41] хан цинг ты. Извлечение астаксантина из корпусов креветок и его применение в консервации [D]. Шанхай: шанхайский океанский университет, 2017.

[42] ли ниан, чэнь лужу, ван чжихе. Влияние композитного покрытия астаксантин-карбоксиметил-читосан на сохранение литопенаев ваннамей. Пищевая и ферментационная промышленность, 2021, 47(16): 166-172.

[43] JYONOUCHI H,SUN S, total M. Effect of carotenoids on 3. Пробиркаиммуноглобулин production by human periph⁃ blood mononuclear клетки :astaxanthin,a carotenoid without Витамин (витамин) A  Деятельность, повышение эффективности in  vitro  Производство иммуноглобулина в ответ на t-зависимый стиму Lant и antigen[J]. Питание и Рак,1995,23(2): 171-183.

[44]  Чжан джей, лю Y J, тянь L,et, al.  Последствия для окружающей среды of  Диетический астаксантин на рост, антиоксидантной способности и генной ex⁃ pression в тихоокеанском белом Креветки Litopenaeus vannamei [J]. Питание аквакультуры,2013(19):917 — 927.

[45] JIANG X D,ZU L,WANG Z Y,et al Антин может улучшить антиоксидантную способность,immu⁃ Чистота и аммиачная стойкость юных китайских котят Краб, эриохейр синенсис [J]. Рыба и фрукты Иммунология моллюсков, 2020(102):499-510.

[46] XIE J J,FANG H H,HE X S,et al. Исследование механизма синтетических астаксинтина и Haematococcus pluvialis im⁃ ⁃ ⁃ κ the growth performance and antioxidant capacity under acute hypoxia stress of golden pompano(Trachino⁃ tus ovatus)and anti- воспалительные путем activat ing nrf2 - путь к антагонизации NF- B pathway [J]. Аквакультура,2020(518):734657.

[47] TIZKAR B,SEIDAVI A, pone-palafox J T,et al  effect   of  astaxanthin   on   resistance   of  Детские креветки Macrobrachium  Ниппоненсе (Decapoda:Palae⁃ monidae) до физического и химического стресса [J]. Revista de biologia tropical,2014,62(4):1331 — 1341.

[48] ли ченлу. Исследование защитного воздействия астакзантина, получаемого из гематококкового плювиалиса, на эмбрионы зебрафиш под напряжением MC-LR [D]. Синьсян: нормальный университет хэнань, 2020.

[49] лю мин, ху цзянь, цинь гуань и др. Токсикологическая оценка безопасности астаксантина [J]. Журнал токсикологии, 2008, 22 (3): 244-246.

[50] Лили ши, чао хан, джинпенг чжао и др. Исследования по токсикологической оценке безопасности астаксантина [J]. Китайская еда и питание, 2019, 25 (1): 31-35.