Что такое астаксантин?

Астаксантин — это вид каротеноидов, который не только оказывает хорошее влияние на окраску водных животных, но и предотвращает изменение окраски и порчи, а также сохраняет пищу свежей [1]. Астаксантин имеет такие функции, как высокоэффективное противоокисление, противораковое лечение, укрепление иммунитета, защита глаз и защита центральной нервной системы, и в настоящее время широко используется в производстве лекарств, кормов, продуктов питания и косметики [2]. AstaxanthВ случае необходимостиисточники включают искусственный синтез и естественную экстракцию. В настоящее время общераспространенные природные продукты астаксантина в стране и за рубежом производятся главным образом из отходов водных продуктов, микроорганизмов и генетически измененных растений. В аквакультуре астаксантин в основном используется в качестве новой и высокоэффективной кормовой добавки и широко используется.

1 введение в астаксантин

AstaxanthВ случае необходимостиимеет молекулярную формулу C40H52O4. Это жирорастворимый и водорастворимый пигмент. Кристаллический астаксантин имеет температуру плавления 224 градуса. Это темно-коричневый порошок розового цвета. Она нерастворима в воде, но растворима в органических растворителях, таких как ацетон, бензол и хлороформ. Астаксантин широко встречается в живых организмах, особенно в рыбе, креветках, крабах и перьях птиц, таких как фламинго и ибисы, а также в мякоти лосося и форели, раковинах креветок и крабов. Животные не могут синтезировать астаксантин самостоятельно, и хотя некоторые ракообразные могут преобразовать другие каротеноиды в астаксантин, они не могут встретиться со своим телом и#39;s потребности, так что они должны быть поглощены от пищи. Большинство морских рыб и ракообразных содержат астаксантин, который, как правило, получают из фитопланктона и зоопланктона через пищевую цепь [3-4]. Астаксантин не только придает водным животным хороший внешний вид, но и является важным питательным веществом для роста и развития животных.

Молекулы астаксантина имеют одну гидроксиловую группу (- o) на каждом конце циклической структуры, которая может образовывать моноэфиры и диестеры с жирными кислотами. Группы эстерифицированных организмов служат мостом для астаксантина, связывающим его с белками. Свободное или эстерифицированное состояние влияет на стабильность астаксантина в организме, степень связывания белков и скорость метаболизма. Например, поверхность живых здоровых креветок и крабов зеленая, а при приготовлении она становится оранжево-красной, что вызвано отделением эстерифицированного астаксантина от белка.

2 формы и источники астаксантина

2.1 формы астаксантина

Астаксантин по-разному распределяется среди различных животных и тканей и более устойчив при хранении в живых организмах. Неокисляемый астаксантин-это эстерифицированный астаксантин. Кожа, Весы и Весы рыб в основном содержат эстерифицированный астаксантин, в то время как мышцы, плазма крови и внутренние органы в основном содержат свободный астаксантин. У ракообразных, таких как крабов и креветок, эстерифицированный астаксантин в основном осаждается на скорлупе, гонадах и гепатопанкреях.

2.2 астаксантинские источники

В настоящее времяЗрелые производственные процессы астаксантинаВключить биологическую экстракцию и химический синтез. Обычный природный астаксантин образуется главным образом из отходов водных продуктов, микроорганизмов и генетически измененных растений. Молекулярная структура астаксантина (рис. 1): четыре единицы изопрена соединены в виде конфузированной ненасыщенной двойной связи. Длительная кондуцированная ненасыщенная двойная структура облигаций очень чувствительна к свету, теплу, кислотам, щелочкам, оксидам и ферзимам [5]. Таким образом, оптимизация процесса извлечения природного астаксантина с максимальной эффективностью стала международным исследовательским очагом.

2.2.1 метод химического синтеза

Существует два метода синтеза астаксантина: прямой и косвенный синтез. Метод прямого синтеза обычно использует синтетические мономеры каротеноидов для прямого синтеза, в то время как метод косвенного синтеза получает астаксантин путем окисления других каротеноидов. Процессы синтеза обоих методов очень сложны, полученный астаксантин является 100% свободным, и в основном в СНГ конфигурации (природный астаксантин в основном в транс конфигурации).

2.2.2 извлечение из отходов водной переработки

В 2022 году#39; годовой объем производства водных продуктов достигнет 68,69 млн. тонн. Отходы водных продуктов являются богатым ресурсом, и извлечение астаксантина из отходов водных продуктов может принести огромные экономические выгоды и способствовать устойчивому развитию China'. Аквакультура. Традиционные методы экстракции астаксантина включают в себя экстракцию щелочи, растворение нефти, экстракцию сокшлета и экстракцию органических растворителей. В последние годы для извлечения астаксантина с низким потреблением и высокой эффективностью используются такие новые методы, как ферментативная экстракция, кавитация отрицательного давления, гомогенизация высокого давления, ионические жидкости, импульсные электрические поля и сверхкритическая экстракция жидкости.

Zu Yuangang et - эл. - привет.[6] провели предварительное исследование различных технологических условий экстракции астаксантина методом кавитации отрицательного давления и получили оптимальные параметры экстракционного процесса: экстракционный растворитель 80% этанола по массе, время экстракции 35 мин и объем аэродирования 0,2 м3 / ч. Мартинес и др. [7] сравнили показатели извлечения астаксантина из гематококковой плувиалиса путем пульсированной обработки электрическим полем, шлифования, оттепели, термической обработки и ультразвуковой обработки. Результаты показали, что коэффициент извлечения астаксантина после обработки импульсного электрического поля составил 96%, а самый высокий коэффициент извлечения других методов извлечения — 80%.

Чжанг е и др. Было установлено, что при соотношении активности фермента целлюлазы и пектиназы 1:1 (U/ U), объем фермента 7 000 U/mL, pH 4.9, температура 49 ℃, время 6 ч, скорость экстракции астаксантина 71.08%, а метод композитного фермента прост, мягкий, зеленый, безопасный и эффективный. Кроме того, постоянно разрабатываются методы очистки астаксантина, такие как колоннохроматография, высокопроизводительная жидкостная хроматография, рекристаллизация, высокоскоростная противотоковая хроматография. Содержание астаксантина в отходах водных продуктов относительно низкое, а процесс извлечения является сложным и дорогостоящим. Поэтому рентабельная добыча астаксантина стала актуальной проблемой для производственной отрасли.

2.2.3 производство микробов

Многие типы естественных микроорганизмов (водоросли, грибы, бактерии и т.д.) могут синтезировать природный астаксантин. В настоящее время наиболее широко изученными и используемыми для производства являются ксантофилломицисы дендрорхоус и гематококковая плавиалиса [9-10]. Хороший Xanthophyllomyces дендроргный штамм может аккумулировать astaxanthin, составляя около 0,5% сухого веса, и процесс ферментации является зрелым, так что продукт может быть получен в короткий срок [11]. Однако она в значительной степени зависит от условий ферментации, таких, как источник углерода, источник азота, температура, pH и растворенный кислород, и стоимость ферментации высока. Производимый astaxanthВ случае необходимостиявляется декстрорзным изомером с низкой антиоксидантной активностью, поэтому Xanthophyllomyces dendrorhous не может быть использован как лучший натуральный инструмент производства astaxanthin.

Основным производственным инструментом в настоящее время являетсяHaematoКокк (coccus)pluvialis, который может аккумулировать астаксантинСоставляет от 4% до 5% сухого веса штамма. Тем не менее, условия роста гематококковой плавиалисы чрезвычайно суровы, с высокими требованиями к качеству воды, свету и культурной среде требуют, культурный цикл длинный, технические требования строгие, а накопление астаксантина в организме происходит в стрессовых условиях, которые не подходят для накопления клеточной биомассы. Поэтому масштабное производство затруднено [12-13].

2.2.4 производство генетически измененных растений

Прекурсоры "грау-каротин" и "грау-каротин гидроксилаза", необходимые для синтеза астаксантина, широко распространены на более высоких растениях, однако они не содержат грау-каротин кетолазы и поэтому не могут синтезировать астаксантин. В настоящее время успешно проводятся исследования по внедрению граватно-каротеновой кетолазы в растениях по производству астаксантина в табаке [14-15], картофеле [16], арабидопсе [17], лотосе [18], кукурузе [19] и других растениях. Однако содержание астаксантина, получаемое трансгенными растениями, является нестабильным, и существуют такие проблемы, как накопление промежуточных метаболитов. Таким образом, открытие и использование plant'. Собственные гены астаксантина, связанные с синтезом (например, лепестки маригольдового завода содержат астаксантин, содержание которого составляет около 1% сухого веса лепестков [20]), станут важным направлением исследований генной инженерии астаксантина.

3 применение астаксантина в аквакультуре

- астаксантиниспользуется в пищевой, фармацевтической и кормовой промышленности, но в настоящее время в основном используется в аквакультуре в качестве новой и высокоэффективной кормовой добавки.

3.1 цветовое воздействие

Астаксантин может сочетаться с различными видами белка для производства красного, оранжевого, желтого, зеленого, синего, фиолетового и других цветов.

3.1.1 содействие окраске выпасной Рыбы

Добавление астаксантина в корм может сделать кожу и мышцы разводной Рыбы, такой как лосось и осетры, кажутся ярко красными, а мясо вкуснее [21]. Nickell et al. [22] обнаружили, что степень окраски и эффективность астаксантина повышаются с увеличением содержания липидных веществ в кормах путем подачи радужной форели с кормом различных уровней жира. Чжанг чуньян и др. [23] обнаружили, что значения покраснения и желтости мышц Oncorhynchus mykiss были значительно выше в группе сыт 1,0 г/кг синтетического - астаксантини группе сыт 0,1 г/кг astaxanthinus pluvialis экстракта, чем в контрольной группе.

NogueirA/данные отсутствуют.et al. [24] установили, что пищевые добавки с астаксантином (50 или 80 мг/кг в течение 6 месяцев); Или 50 мг/кг в течение 3 месяцев, затем 80 мг/кг в течение 3 месяцев) оказали положительное влияние на тонус кожи и хрома спинного плавника и хвоста красного мозоли, а тонус и значения хрома были близки к значениям дикого человека. Li Yao-peng et al. [25] выбрали более 170 000 триплоидных радужных форель (Oncorhynchus mykiss) со средним весом около 1 кг для проведения экспериментального испытания на воздействие уровней астаксинтина в рационе питания на показатели роста, урожайность и окраску мышц.

Было установлено, что добавление 40 мг/л и 30 мг/л астаксантина в корм, соответственно, и подача его за 7 и 9 месяцев до продажи радужной форели, цвет мяса может соответствовать стандартам. Ван хуню и др. [26] кормили гексаграмму отаки (гексаграммос отаки) добавкой астаксантина. Результаты через 60 дней показали, что при присадке 0,10% - 0,20% яркость, покраснение и желтость спинной поверхности Рыбы, покраснение и желтость брюшной полости, а также яркость и желтость хвоста были значительно выше, чем у контрольной группы. Когда количество добавки составляло 0,05%0,20%, осаждение астаксантина на спинной, брюшной и каудальной коже Рыбы было значительно выше, чем в контрольной группе. Были значительно выше, чем в контрольной группе. Когда содержание присадки составляло 0,05% - 0,20%, осаждение астаксантина на коже спины, живота и хвоста Рыбы было значительно выше, чем в контрольной группе.

3.1.2 содействие окраске декоративной Рыбы

Цвет тела декоративной Рыбы обусловлен накоплением в организме пигментов астаксантина и кантаксантина, которые производят панхроматический цвет. Декоративная рыба не может синтезировать эти два пигмента и должна получать их из корма. Корм для декоративных рыб должен отвечать потребностям как роста и развития Рыбы, так и необходимости поддержания ее яркого цвета тела. Astaxanthin, как лучший доступный краситель, может помочь декоративной рыбе сохранить свой яркий цвет тела. Чэнь сяомин и др. [27] обнаружили после 60- дневного эксперимента, что добавление 60 мг/кг астаксантина в корм может сделать окраску золотых рыб более естественной и живой. Ван руй и др. [28] пришли к выводу, что добавление 30 мг/кг астаксантина в корм может значительно улучшить воздействие осаждения пигмента на гуппиев, красных мечей и золотых рыб.

Sun Xueliang et al. [29] изучали сочетание астаксантина с различными носителями (фосфолипидами, витамином е) и обнаружили, что сочетание астаксантина с двумя носителями витамина е и фосфолипидами значительно улучшает цвет тела попугаев. Ван юньхуй и др. [30] изучили влияние астаксантина на цвет тела кои карпа (Cyprinus carpio L.) и обнаружили, что значения красности и желтости в цвете тела достигли максимума, когда добавление астаксантина составило 400 мг/кг.

3.1.3 цветовое воздействие на креветок и крабов

Цвет тела креветок и крабов определяет их рыночную стоимость. Астаксантин сочетается с читином в креветках и крабах, чтобы выглядеть зеленовато-синим. После нагрева при высокой температуре протеин отделяется от исходного астаксантина, а цвет меняется на оранжево-красный. Джин женгю и др. [31] кормили макробрахием розенбергии 60 мг/кг астаксантина в течение 35 дней. Результаты показали, что общее содержание каротеноидов в креветках было самым высоким (119,38 г/кг), что на 40% выше, чем в контрольной группе. Chien et al. [32] добавляют 50 и 100 мг/кг астаксантина в корм японских креветок тигра, и через 63 дня было установлено, что скорость осаждения астаксантина в скорлупе и мышцах креветок значительно возросла.

Long et al. [33] добавлено порошок - гематококкpluvialis, который богат естественным астаксинтином, к корму взрослых китайских крабов-мышей (Eriocheir sinensis), и обнаружили, что покрасненность крабовых яичников и карапесов значительно возросла с увеличением количества порошка Haematococcus pluvialis. Это было также подтверждено Su Fang's [34] эксперименты, в ходе которых было установлено, что питание китайских крабов-мышей питанием Haematococcus pluvialis может значительно улучшить цвет и качество крабовых продуктов, со значительным увеличением астаксинтина содержания яичников, гепатопанкрей, карапачей и эпидермисов крабов. Существует значительное соотношение доза-эффект, и чем выше добавление гематококковой плювиалис, тем выше накопление астаксантина в организме. Ma Nan et al. [35] предположили, что добавление синтетического астаксантина к корму для откорма может значительно увеличить общее содержание каротеноидов, цвет и антиоксидантную способность головы и грудной клетки, печени и поджелудочной железы, а также яичников китайского крабов-мышей, и предположили, что синтетический астаксантин, добавляемое к корму для откорма крабов-женщин, должен составлять около 90 мг/кг.

3.2 сильный антиоксидантный эффект

Shimidzu et al. [36] обнаружили в исследовании В случае необходимостиvitro, что астаксантин имеет более высокую способность гасить синглет кислорода и собирать свободные радикалы, чем лютейн и зеаксантин, и это было также подтверждено ли и др. [37]. Ван цзицяо и др. [38] кормили юного апостишопуса джапоника кормом, содержавшим 30, 60 и 90 мг/кг грава-каротина и астаксинтина, соответственно, в лабораторных условиях температуры воды 11,0-20,0 грава, солености 35 и pH 7,5. После кормления в течение 80 д было установлено, что средняя общая антиоксидантная емкость жидкости полости тела групп, дополненных астаксантином (12,77 у/мл), была выше, чем у групп, дополненных гравом-каротином (8,7). Через 80 дней было установлено, что среднее значение общей антиоксидантной способности (12,77 U/ мл) жидкости полости тела каждой группы Apostichopus japonicus, питаемой астаксантином, было на 45,61% выше среднего значения (8,77 U/ мл) каждой группы, питаемой грау-каротином, что указывает на то, что антиоксидантная способность астаксантина выше, чем грау-каротин.

Feng Minglei et al. [39] добавляют 31,50 мг/кг красного дрожжевого рис - астаксантин(P-AST) и 32,96 мг/кг синтетического astaxanthin (S-AST) в корм для корма, соответственно, и скармливают радужную форель в течение 112 дней. Они обнаружили, что как S-AST, так и P-AST могут регулировать функцию антиоксидантной системы и генов обмена липидов в красной мышце радужной форели. После кормления радужной форели 31,50 мг/кг P-AST и 32,96 мг/кг S-AST в течение 112 дней было установлено, что как S-AST, так и P-AST могут регулировать функцию антиоксидантной системы в красной мышцах радужной форели и выражение генов, связанных с липидным метаболизмом.

Ван чжаоксин и др. [40] разработали три вида корма с различными концентрациями астаксантина, добавив астаксантин плюс (содержащий 10% астаксантина) к изонитрогенному и изольцовому корму и скормировали его литопенаю ваннамею. Через 112 дней исследование показало, что добавление соответствующего количества астаксантина в корм может улучшить антиоксидантную способность и иммунную функцию креветок. Что касается сохранения продуктов питания, хан цингу [41] пришел к выводу, что астаксантин может быть использован не только для сохранения фруктов и продуктов питания, но и служить научной основой для продления срока годности фруктов. Ли ниан и др. [42] показали, что составное покрытие креветок-астаксантин-карбоксиметилчитосан в размере 60 и 90 мг/л является безопасным, эффективным и практически осуществимым методом сохранения литопенаея россенса. Это может замедлить снижение сенсорного качества литопеноза розенца во время охлаждения, задержать липидное окисление и продлить срок годности литопеноза розенза на 3-4 дня.

3.3 антистрессовое воздействие

Jyonouchi et al. [43] показали, что астаксантин может повысить активность Th1 (T helper cell 1) и Th2 (T helper cell 2) в гумно-иммунной реакции, а также увеличить производство иммуноглобулинов IgA, IgM и IgG, чтобы животные имели более высокую иммунную регулирующую активность. Чжан и др. [44]пришли к выводу, что добавление 125-150 мг/кг астаксантина в рацион креветок ванамея может повысить антиоксидантную способность креветок и их устойчивость к гипоксическому стрессу. Цзян и др. [45] обнаружили, что добавление порошка Haematococcus pluvialis в рацион питания молодых китайских крабов-мышей может снизить смертность молодых крабов во время стресса аммиака. Xie et al. [46] обнаружили, что добавление гематококковой плювиалисы снижает воспалительную реакцию в golden pomfret (Trachinotus ovatus) после 80 дней кормления и острого гипоксического стресс-теста (1,2 мг/л). Тискар и др. [47] показали, что после 70 дней кормления рациона, содержащего астаксантин (50-150 мг/кг), японские креветки пруда (Макробрачий (макробрачий)nipponense) могут выдерживать различные физические и химические нагрузки, такие как гипоксия, аммиак и холодный стресс.

3.4 содействует росту, воспроизводству и развитию

Добавление астаксантина в корм может значительно улучшить рост и репродуктивную функцию радужной форели, повысить выживаемость молодых креветок, плавучесть и выживаемость рыбных яиц, а также увеличить скорость оплодотворения, выживаемость и рост лососновых яиц. Джин женгю и др. [31] показали, что астаксантин может значительно увеличить прирост веса литопенаея ваннамея. Ли ченлу [48] показал, что астаксантин оказывает значительное смягчающее воздействие на реакцию окислительного стресса и окислительные повреждения, вызванные микроцистином в зебрафише (Barchydanio rerio var.), и чем выше концентрация астаксантина, тем лучше эффект на улучшение окислительного стресса в организме. Ван чжаоксин и др.

4 безопасность и перспективы применения астаксантина

Astaxanthin встречается в больших количествах в повседневной пище. Креветки и крабовые продукты содержат 80-100 мг/кг астаксантина, дикий сокеев лосось содержит 30-58 мг/кг, средняя концентрация астаксантина у рыб около 40 мг/кг и средняя концентрация астаксантина у моллюсков около 10 мг/кг. В последние годы результаты многих токсикологических исследований на животных и людях также показали, что астаксантин является безопасным и нетоксичным [49 — 50].

Благодаря своим важным физиологическим функциям и экономической ценности астаксантин имеет большой потенциал применения в аквакультуре, пищевых добавках, косметике и фармацевтической продукции. С развитием различных отраслей внутри страны и за рубежом спрос на астаксантин будет продолжать расти. В настоящее время синтез и извлечение астаксантина на международном уровне, как правило, имеют недостатки, связанные со сложными методами синтеза и извлечения, низкой урожайностью и высокой стоимостью, и не могут удовлетворить потребности крупномасштабного коммерческого производства. Использование современной биотехнологии для проведения исследований по разведению высокоурожайных штаммов астаксантина имеет широкие перспективы развития и применения и должно быть включено в ключевые исследовательские планы.

Ссылка:

[1] ли янян, чжай чжанцзюнь, чжан йинфа и др. Применение астаксантина в аквакультуре [J]. Журнал пекинского сельскохозяйственного колледжа, 2009, 24 (2): 78-80.

[2] сюй хайян, као бин, чэнь цзин и др. Биологические функции и применение астаксантина [J]. Угол подачи широкий, 2012 (11): 23-25.

[3] бегум х, юсофф ф м, банерджи с и др Износостойкость и использование пигментов микроводорослей [J]. В важнейших проблемных областях Отзывы о компании in  - продукты питания Наука и техника и Питание,2016,56(13): 2209-2222.

[4] 3. Итрестой - ти, афанасьев  - с, руйтер  B,et Al. Расшифровка и Функциональные возможности системы  Ответы на вопросы По адресу: Отсутствие на рабочем месте - астаксантина in  В атлантическом океане - лосось, лосось. Федеральный резервный фонд Низкий уровень дохода Морская пехота Диета [J]. Сравнительная биохимия и физиология часть D: геном адуикс и протеомика,2021(39):100841.

[5] хуан вэньвэнь, хон бихон, и руижао и др. Научный прогресс по методу производства и биологической активности астаксантина [J]. Пищевые добавки китая, 2012 (6): 214-218.

[6] цу юанган, лю лина, сюэ яньхуа и др. Экстракция астаксантина методом кавитации отрицательного давления [J]. Журнал северо-восточного лесного университета, 2007, 35 (2): 59-60.

[7] MARTINEZ - J.M,GOJKOVIC Z,FERRO L,et al. Использование пропитывания импульсного электрического поля для извлечения astaxan⁃ thin из скандинавского микроалга Haematococcus pluvialis [J]. Биоресурсная технология,2019(289):121694.

[8] чжан е, лю чживей, тан синхе. Методика поверхностной реакции для оптимизации экстракции астакзантина из плювиалиса alga Haematococcus с использованием композитного фермента [J]. Наука и технологии пищевой промышленности, 2019, 40 (22): 87 — 92.

[9] Господин боканегра A/данные отсутствуют. R, ponсе-noyola T, торрес-муньос J   - A. Astaxanthin  Производство и продажа Автор: фаффия родозима И Haematococcus pluvialis:a Com ⁃ parative Исследование [J]. Применение на практике 1. Микробиология и Biotechnol ⁃ ogy,2007,75(4):783-791.

[10] HAQUE F,DUTTA/данные отсутствуют.A,THIMMANAGARI M,et al. In⁃ Тензифицированное зеленое производство астаксантина от Haemato⁃ coccus  Плювиалис [J]. - продукты питания и 1. Биопродукты Переработка, 2016(99):1-11.

[11] VISSER H,VAN OOYEN A J J, verdo J C. Meta⁃ bolic engineering Соединенные Штаты америкиВ настоящее времяastaxantin -bioСинтетические продукты (синтетические продукты)path⁃ way Соединенные Штаты америкиXanthophyllomyces dendrorhous[J]. FEMС. Sдрожжевые исследования,2003,4(3):221-231.

[12] LORENZ R T,CYSEWSKI G R. Commercial potential для Haematococcus  - микроводоросли По состоянию на 31 декабря a  По окружающей среде Источник: Соединенные Штаты америки Astaxanthin [J]. Тенденции в области биотехнологии,2000 год,18(4): 160-167.

[13] OROSA M,TORRES E,FIDALGO P,et al. Производство и анализ вторичных каротеноидов в зеленых водорослях [J]. Журнал прикладной филологии,2000,12(3-5):553-556.

[14] GERJETS T,SANDMANN M,ZHU C F,et al. Метаболизм Проектирование биосинтеза кетокаротеноидов в листьях и - цветы, цветы. Соединенные Штаты америки 3. Табак Вид [J]. B. биотехнология Журнал, 2007,2(10):1263-1269.

[15] Хасунума т, миядзава S  Я-йошимура S,et al. Биосинтез астаксантина в табачных листьях методом трансгравитационной пластики [J]. Журнал растений: для клеточной и молекулярной биологии,2008,55(5):857-868.

[16] MORRIS W L,DUCREUX L J M,FRASER P D,et al. Engineering ketocarotenoid biosynthesis in potato tubers [J]. Метаболическая инженерия,2006,8(3):253-263.

[17] стальберг к, линдгрен о, эк б, и др. синтез - кетокаротеноиды in  the  - семенной картофель Соединенные Штаты америки Арабидопсис (арабидопсис) Тальяна [дж]. Журнал растений: для клеточной и молекулярной биологии,2003, 36(6):771-779.

[18] < < судзуки > > - с, нишихара - м, накацука T,et, Al. Изменение цвета цветов в Lotus japonicus путем изменения гравюры каротеноидного биосинтетического пути [J]. Отчеты о растительных клетках,2007,26(7):951-959.

[19] ZHU C F,NAQVI S,BREITENBACH J, и др. комбина ⁃ torial genetic transformatiПо состоянию нагенерирует библиотеку мета ⁃ bolic phenotypes для каротеноидных путей в кукурузе [J]. Труды национальной академии наук США Государства-участники Соединенные Штаты америки Америка,2008,105(47):18232 — 18237.

[20] маока т, этох т, кисимото с, и др. Журнал олео науки,2011,60(2):47-52.

[21] юй сяодун, яо вейчжи, луан хуини и др. Развитие астаксантина и его применение в аквакультуре [J]. Feed Expo, 2005 (4): 42-45.

[22] NICKELL D C,BROMAGE N R. влияние уровня липидов в рационе питания на изменение пигментации плоти в радужной форели (Oncorhynchus mykiss)[J]. Аквакультура,1998,161 (1-4):237-251.

[23] чжан с, Дэн X, яо W и др. Влияние астаксантина из различных источников на показатели роста, цвет мяса и антиоксидантную способность радужной форели [J]. Корм для животных, 2021, 33(2): 1008-1019.

[24] NOGUEIRA N,CANADA P,CABOZ J,et al. Влияние различных уровней синтетического астаксантина на рост, цвет кожи и липидный метаболизм коммерческих размеров red porgy (Pagrus Pagrus)[J]. Корм для животных Наука и техника Технол астрагогия,2021(276):114916.

[25] Li Y, Yang X, Gong B, et al. Обсуждение стратегии добавления астаксантина в корм триплоидной радужной форели [J]. Hebei Fisheries, 2023(1): 5-7.

[26] ван хуню, чэнь янь, чжан йивен и др. Влияние астаксантина на рост, цвет тела и антиоксидантную способность юного японского угря (ангилья японика) [J]. Сельское хозяйство юга, 2023, 17(9): 197201.

[27] чэнь сяомин, сюй сюэмин, цзинь чженю. Эффект astaxantin-богатые фавус дрожжи на цвет тела золотой рыбки [J]. Китайский журнал науки о рыболовстве, 2004, 11(1): 70-73.

[28] ван жуй, фей сяохон. Исследование по применению четырех усилителей цвета в декоративной рыбе [J]. Beijing Fisheries, 2005(4): 37-38.

[29] сун сюэлян, чжи янбин, бай дунцин и др. Влияние астаксантиновой смеси на окраску и физиологическую функцию попугаев [J]. Наука о сельском хозяйстве, 2017, 45(14): 143 — 145.

[30] ван цзюньхуэй, сян цзяньли, чжан дуньян и др. Влияние астаксантина в кормах на рост, цвет тела, антиоксидантную способность и иммунитет кои карпа [J]. Журнал питания животных, 2019, 31(9): 4144-4151.

[31] цзинь чженю, го шидун, Lv Yuhua. Эффект добавления астаксантин-богатые фавичского дрожжей питаться на цвет тела и рост литопенаев ваннамей [J]. Кормовая промышленность, 1999, 20(10): 29-31.

[32] CHIEN Y H,SHIAU W Соединенные Штаты америки - водоросли и synthetic  astaxanthin  По состоянию на Astaxanthin,survival,growth,and low ⁃ oxygen stress - сопротивление;Соединенные Штаты америкиkuruma prawn,Marsupenaeus japoni cus Bate[J]. Журнал экспериментальной морской биологии и экологии,2005,318(2):201-211.

[33] LONG X W,WU X G,ZHAO L,et al. Эффекты пищевых добавок с Haematococcus pluvialis клеточной pow⁃ deron раскраски, развития яичников и антиокислительной способности взрослых китайских комаров-кров,Eriocheir sinensis[J]. Аквакультура,2017(473):545 — 553.

[34] су фан. Структурные характеристики распределения каротеноидов в водорослях, креветках, крабах и рыбах и изучение астаксантиновой изомеризации [D]. Циндао: университет китайской академии наук (институт океанологии китайской академии наук), 2018 год.

[35] ма нан, лонг сяоуэн, чжао лей и др. Эффект синтетического астаксантина добавляется к кормам для развития гонадов, цвета кожи и антиоксидантной способности взрослых китайских комаров-мышей (Eriocheir sinensis) [J]. Acta Hydrobiologica Sinica, 2017, 41(4): 755-765.

[36] SHIMIDZU N,GOTO M,MIKI W. Carotenoids as singlet oxygen quenchers in marine организмы [J]. Sci ⁃ ence,1996,62(1):134-137.

[37] LEE S H,MIN D B. эффекты, механизмы гашения и кинетика каротеноидов в фотогравитационном окислении с повышенным содержанием хлорофилла - соевые бобы. Масло [J]. Журнал по теме Соединенные Штаты америки В сельском хозяйстве И пищевая химия,1990,38(8):1630-1634.

[38] Wang JQ, Fan YY, Xu ZX и др. Влияние гравитационного каротина и астаксантина на рост и антиоксидантную способность ювенальной имитации морских огурцов [J]. Журнал далянского океанского университета, 2012, 27(3): 215 — 220.

[39] фэн минглей, ван лей, лонг сяоуэн и др. Влияние астаксантина из различных источников на антиоксидантный и липидный метаболизм красной мышцы радужной форели [J]. Китай Feed, 2023(1): 82-88.

[40] ван чжаосин, лян менгцин, вей юлян и др. Влияние астаксантина на репродуктивную функцию, антиоксидантную способность и иммунную функцию креветок ванамея (Penaeus vannamei) [J]. Журнал питания животных, 2023, 35 (2): 1195-1205.

[41] хан цинг ты. Извлечение астаксантина из корпусов креветок и его применение в консервации [D]. Шанхай: шанхайский океанский университет, 2017.

[42] ли ниан, чэнь лужу, ван чжихе. Влияние композитного покрытия астаксантин-карбоксиметил-читосан на сохранение литопенаев ваннамей. Пищевая и ферментационная промышленность, 2021, 47(16): 166-172.

[43] JYONOUCHI H,SUN S, total M. Effect of carotenoids on 3. Пробиркаиммуноглобулин production by human periph⁃ blood mononuclear клетки :astaxanthin,a carotenoid without Витамин (витамин) A  Деятельность, повышение эффективности in  vitro  Производство иммуноглобулина в ответ на t-зависимый стиму Lant и antigen[J]. Питание и Рак,1995,23(2): 171-183.

[44]  Чжан джей, лю Y J, тянь L,et, al.  Последствия для окружающей среды of  Диетический астаксантин на рост, антиоксидантной способности и генной ex⁃ pression в тихоокеанском белом Креветки Litopenaeus vannamei [J]. Питание аквакультуры,2013(19):917 — 927.

[45] JIANG X D,ZU L,WANG Z Y,et al Антин может улучшить антиоксидантную способность,immu⁃ Чистота и аммиачная стойкость юных китайских котят Краб, эриохейр синенсис [J]. Рыба и фрукты Иммунология моллюсков, 2020(102):499-510.

[46] XIE J J,FANG H H,HE X S,et al. Исследование механизма синтетических астаксинтина и Haematococcus pluvialis im⁃ ⁃ ⁃ κ the growth performance and antioxidant capacity under acute hypoxia stress of golden pompano(Trachino⁃ tus ovatus)and anti- воспалительные путем activat ing nrf2 - путь к антагонизации NF- B pathway [J]. Аквакультура,2020(518):734657.

[47] TIZKAR B,SEIDAVI A, pone-palafox J T,et al  Воздействие на окружающую среду  of  astaxanthin   on   resistance   of  Детские креветки Macrobrachium  Ниппоненсе (Decapoda:Palae⁃ monidae) до физического и химического стресса [J]. Revista de biologia tropical,2014,62(4):1331 — 1341.

[48] ли ченлу. Исследование защитного воздействия астакзантина, получаемого из гематококкового плювиалиса, на эмбрионы зебрафиш под напряжением MC-LR [D]. Синьсян: нормальный университет хэнань, 2020.

[49] лю мин, ху цзянь, цинь гуань и др. Токсикологическая оценка безопасности астаксантина [J]. Журнал токсикологии, 2008, 22 (3): 244-246.

[50] Лили ши, чао хан, джинпенг чжао и др. Исследования по токсикологической оценке безопасности астаксантина [J]. Китайская еда и питание, 2019, 25 (1): 31-35.